Modèle de transplantation inguinal Subcutaneous De tissu adipeux blanc (ISWAT) des îlots de Murine
Summary
Dans ce protocole, une méthode d’isolement et de transplantation d’îlot de murine dans le tissu sous-cutané sous-cutané inguinale d’adipeux est décrite. Des îlots murines syngénéiques isolés sont transplantés dans un récipient de murine utilisant un hydrogel de membrane de sous-sol. Le taux de glucose sanguin des receveurs est surveillé, et l’analyse histologique des greffes d’îcles est effectuée.
Abstract
La transplantation d’îlot pancréatique est un traitement thérapeutique bien établi pour le diabète de type 1. La capsule rénale est le site le plus couramment utilisé pour la transplantation d’îlots dans les modèles de rongeurs. Cependant, la capsule rénal serrée limite la transplantation d’îlots suffisants chez les grands animaux et les humains. Le tissu adipeux blanc sous-cutané inguinal (ISWAT), un nouvel espace sous-cutané, s’est avéré être un site potentiellement valable pour la transplantation d’îlots. Ce site a un meilleur approvisionnement en sang que d’autres espaces sous-cutanés. En outre, l’ISWAT accueille une plus grande masse d’îlot que la capsule rénale, et la transplantation en elle est simple. Ce manuscrit décrit la procédure de l’isolement et de la transplantation d’îlots de souris dans le site ISWAT des destinataires diabétiques syngénétiques de souris. Utilisant ce protocole, les îlots pancréatiques murines ont été isolés par la digestion standard de collagène et un hydrogel de matrice de membrane de sous-sol a été employé pour fixer les îlots purifiés dans le site d’ISWAT. Les niveaux de glucose sanguin des souris destinataires ont été surveillés pendant plus de 100 jours. Des greffes d’îlot ont été récupérées au jour 100 après transplantation pour l’analyse histologique. Le protocole de transplantation d’îlots dans le site ISWAT décrit dans ce manuscrit est simple et efficace.
Introduction
L’incidence et la prévalence mondiales du diabète sucré de type 1 (T1DM) augmentent rapidement, selon les données statistiques de la Fédération internationale du diabète (FDI)1. La transplantation d’îlots est l’une des approches les plus prometteuses pour le traitement du T1DM4. Puisque la grande percée faite dans la transplantation clinique d’îlot utilisant le protocole2 d’Edmonton a été rapportée, la survie fonctionnelle de greffe d’îlot dans des destinataires de T1DM après 5 ans atteint maintenant environ 50%3.
Dans le passé, plusieurs sites de transplantation, tels que le foie, la capsule rénale, la rate, la région intramusculaire, l’espace sous-cutané, la moelle osseuse et la poche mentale ont été explorés pour la transplantation expérimentale d’îlots5,6,7. Certains des sites ci-dessus ont été testés dans des milieux cliniques8. Bien que la transplantation d’îlot dans le foie reste la méthode la plus largement utilisée dans l’application clinique à l’heure actuelle9, il ya plusieurs problèmes importants à traiter lors de l’utilisation de ce site. Par exemple, comment réduire la perte précoce des îlots transplantés causée par la réaction inflammatoire instantanée de médiation sanguine (IBMIR) et l’approvisionnement en oxygène pauvre10,11 et comment récupérer les greffes d’îlots si nécessaire, parce qu’elles localisent diffusement dans le foie. La capsule rénale peut être un site idéal pour les receveurs de rongeurs. Cependant, la capsule rénaux serrée limite la transplantation d’îlots allogéniques suffisants chez l’homme, bien qu’il puisse être un meilleur ajustement pour la xénotransplantation d’îlot due aux préparations fortement purifiées d’îlot porcin employée médicalement5,12. Par conséquent, la recherche d’un site plus approprié pour la transplantation d’îlots est en cours.
L’espace sous-cutané peut être utilisé comme site cliniquement applicable pour la transplantation d’îlots en raison de son accessibilité. Cependant, l’efficacité de la transplantation d’îlots dans l’espace sous-cutané est extrêmement faible, ce qui nécessite un nombre relativement important d’îlots pour inverser l’hyperglycémie13. Récemment, une équipe de recherche japonaise a trouvé l’ISWAT, un nouveau site sous-cutané supérieur pour la transplantation d’îlots dans un modèle murine par rapport au foie14. L’ISWAT contient l’artère épigastrique et la veine, de sorte que l’approvisionnement en sang riche peut assurer la revascularisation de greffe d’înet. Dans ce manuscrit, nous proposons une méthode d’implantation facile utilisant un hydrogel de matrice de membrane de sous-sol pour fixer des îlots murines syngénéiques dans l’ISWAT. Ce protocole s’avère efficace pour la transplantation d’îlots.
Protocol
Representative Results
Discussion
La transplantation d’îlot de pancréas est une thérapie prometteuse pour traiter T1DM. L’effet de cette thérapie est affecté par de nombreux facteurs et le choix d’un site optimal pour l’implantation des îîaux est extrêmement important. Le site anatomique idéal pour la transplantation d’îlots devrait avoir les caractéristiques suivantes : accessibilité pour la transplantation simple, la biopsie, et les procédures de récupération de greffe ; complications réduites; taux de réussite élevé du con…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Ce travail a été soutenu par des subventions du National Key R-D Program of China (2017YFC1103704)Fonds spéciaux pour la construction d’hôpitaux de haut niveau dans la province du Guangdong (2019), Sanming Project of Medicine à Shenzhen (SZSM201412020), Fonds pour le haut niveau Medical Discipline Construction of Shenzhen (2016031638), Shenzhen Foundation of Science and Technology (JCJY20160229204849975, GJHZ20170314171357556), Shenzhen Foundation of Health and Family Planning Commission (SZXJ2017021SZ Fondation de recherche scientifique de la province du Guangdong en Chine (A2019218), China Postdoctoral Science Foundation (2018M633218).
Materials
| 0.22 μm Syringe-driven Filter Unit | Merck Millipore | SLHV033RB | |
| 1.5 mL centrifuge tube | Axygen | MCT-150-C | |
| 5 mL Pasteur pipette | JingAn Biological, China | J00085 | |
| 5 mL syringe | Szboon, China | 20170829 | |
| 50 mL conical tube | Corning | 430829 | |
| 5-0 surgical suture | sh-Jinhuan, China | CR537 | |
| 60 mL syringe | Szboon, China | 20170623 | |
| 75% Ethanol | LIRCON, China | 9180527 | |
| Alexa Fluor 488 donkey anti-mouse IgG(H+L) | Invitrogen | A21202 | Dilution (1:200) |
| anti-mouse Glucagon antibody | Abcam | ab10988 | Dilution (1:100) |
| anti-mouse insulin antibody | Cell Signaling Technology | 3014s | Dilution (1:100) |
| blunt-pointed perfusion needle | Oloey, China | 005 | 32G, yellow |
| BSA | Meilune, China | MB4219 | |
| C57BL/6 Mice | Medical Animal Center of Guangdong Province | 8~10 weeks | |
| cell culture dish | BIOFIL, China | TCD000100 | General,Non-treated,87.8 mm diameter |
| centrifuge | Thermo Scientific | ST16R | |
| cephalosporin | Lukang medical, China | 150303 | |
| CMRL-1066 | Sigma-Aldrich | C0422 | |
| Codos Pet Clipper | Szcodos, China | CP-8000 | |
| collagenase Type V | Sigma | C9262 | |
| DAPI | Thermo Fisher | D1306 | |
| D-hank's buffer | Coolaber, China | PM5140-10 | |
| dithizone | Sigma-Aldrich | D5130 | |
| Dnase I | Sigma-Aldrich | D4263 | |
| Eosin staining media | Beyotime Biotech, China | C0109 | |
| FBS | GE Healthcare Life Sciences | SH30084 | |
| fluorescein diacetate (FDA) | Thermo Fisher | F1303 | |
| fluorescent microscope | Leica | DMIL | |
| gel-loading pipet tips | Corning | CLS4884 | |
| HBSS | Coolaber, China | PM5150-10 | |
| hematoxylin staining media | Cell Signaling Technology | 14166S | |
| HISTOPAQUE-1077 | Sigma-Aldrich | RNBG0522 | |
| HISTOPAQUE-1119 | Sigma-Aldrich | RNBG0536 | |
| Hydrogel | BD Biosciences | 356234 | Basement Membrane Matrix |
| Iodophor | LIRCON, China | 5190313 | |
| light-tight culture dish | DVS, China | AN-5058548 | self-made, glass dish sprayed with black paint |
| Medical Adhesive Tape | Cofoe, China | K12001 | |
| non-invasive microtweezers | RWD Life Science | F11033-11 and F12016-15 | |
| One Touch ultraeasy Basic blood glucose monitoring system | Johnson & Johnson | 33391713 | |
| ophthalmic scissors | RWD Life Science | S12012-12 and S11001-08 | |
| P/S (penicillin / streptomycin) | Gibco | 15140-122 | |
| pentobarbital sodium | Sigma-Aldrich | P-010 | |
| Propidium iodide | Sigma-Aldrich | P4864 | |
| STZ (streptozotocin) | Sigma-Aldrich | S0130 | |
| Test Strip | GenUltimate | 100-50 | |
| TRITC-conjugated Goat anti-Rabbit IgG(H+L) | proteintech | SA00007-2 | Dilution (1:200) |
| vascular clamp | RWD Life Science | R31006-04 |
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