Neste protocolo, um método de isolamento e transplante de isto de murina no tecido adiposo branco subcutâneo inguinal é descrito. Ishotas singeneicas isoladas são transplantadas em um receptor de murina usando um hidrogel de membrana do porão. O nível de glicemia dos receptores é monitorado, e a análise de histologia dos enxertos de lumiçal é realizada.
O transplante de lélete pancreática é um tratamento terapêutico bem estabelecido para diabetes tipo 1. A cápsula renal é o local mais usado para transplante de ilhotas em modelos de roedores. No entanto, a cápsula renal apertada limita o transplante de ilhotas suficientes em animais de grande porte e humanos. O tecido adiposo branco subcutâneo inguinal (ISWAT), um novo espaço subcutâneo, foi encontrado como um local potencialmente valioso para o transplante de lélete. Este local tem melhor suprimento de sangue do que outros espaços subcutâneos. Além disso, a ISWAT acomoda uma massa de ilhota maior que a cápsula renal, e o transplante nela é simples. Este manuscrito descreve o procedimento de isolamento e transplante de lélete de camundongos no local da ISWAT de receptores de camundongos diabéticos sinódicos. Usando este protocolo, ilhotas pancreáticas de murina foram isoladas pela digestão colagenase padrão e um hidrogel de matriz de membrana do porão foi usado para fixar as ilhotas purificadas no local da ISWAT. Os níveis de glicose no sangue dos camundongos receptores foram monitorados por mais de 100 dias. Enxertos de lélete foram recuperados no dia 100 após transplante para análise histológica. O protocolo para transplante de lélete no site da ISWAT descrito neste manuscrito é simples e eficaz.
A incidência mundial e a prevalência de diabetes mellitus tipo 1 (T1DM) estão aumentando rapidamente, de acordo com os dados estatísticos da Federação Internacional de Diabetes (IDF)1. O transplante de lélete é uma das abordagens mais promissoras para o tratamento do T1DM4. Uma vez que o grande avanço feito no transplante de lélete clínica usando o protocolo Edmonton2 foi relatado, a sobrevivência do enxerto de islet em funcionamento em receptores T1DM depois de 5 anos agora atinge cerca de 50%3.
No passado, foram explorados vários locais de transplante, como fígado, cápsula renal, baço, região intramuscular, espaço subcutâneo,medula óssea e bolsa omental5,6,7. Alguns dos locais acima foram testados em configurações clínicas8. Embora o transplante de lita no fígado continue sendo o método mais utilizado na aplicação clínica atualmente9,há vários problemas importantes a serem enfrentados ao usar este local. Por exemplo, como reduzir a perda precoce das léletas transplantadas causadas pela reação inflamatória mediada pelo sangue instantâneo (IBMIR) e pelo suprimento de oxigenação ruim10,11 e como recuperar os enxertos de luma, se necessário, porque eles se localizam difusamente no fígado. A cápsula renal pode ser o local ideal para os receptores de roedores. No entanto, a cápsula renal apertada limita o transplante de ilhotas alogênicas suficientes em humanos, embora possa ser um ajuste melhor para o xenotransplante ilhota devido aos preparos altamente purificados da ilhota suína utilizadas clinicamente5,12. Portanto, a busca por um local mais adequado para transplante de lélete está em andamento.
O espaço subcutâneo pode ser usado como local clinicamente aplicável para transplante de ilhotas devido à sua acessibilidade. No entanto, a eficiência do transplante de islet no espaço subcutâneo é extremamente baixa, exigindo assim um número relativamente grande de lésitas para reverter a hiperglicemia13. Recentemente, uma equipe de pesquisa japonesa encontrou o ISWAT, um novo local subcutâneo superior ao transplante de islet em um modelo de murina quando comparado com o fígado14. A ISWAT contém a artéria etiátrica e veia, de modo que o rico suprimento de sangue pode garantir a revascularização do enxerto de ilhota. Neste manuscrito, propomos um método fácil de implantação usando um hidrogel de matriz de membrana do porão para corrigir ishotas singeneic murina na ISWAT. Este protocolo se mostra eficaz para transplante de lélete.
O transplante de lélete de pâncreas é uma terapia promissora para tratar o T1DM. O efeito dessa terapia é afetado por muitos fatores e escolher um local ideal para implantação de léletes é extremamente importante. O local anatômico ideal para transplante de lélete deve ter as seguintes características: acessibilidade para simples transplante, biópsia e procedimentos de recuperação de enxerto; complicações reduzidas; alta taxa de sucesso do controle de glicose no sangue; e sobrevivência a longo prazo dos …
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado por subsídios do Programa Nacional de P&D da China (2017YFC11103704)Fundos Especiais para a Construção de Hospitais de Alto Nível na província de Guangdong (2019), Projeto de Medicina de Sanming em Shenzhen (SZSM201412020), Fundo para Alto Nível Disciplina Médica Construção de Shenzhen (2016031638), Fundação Shenzhen de Ciência e Tecnologia (JCJY20160229204849975, GJHZ20170314171357556), Shenzhen Foundation of Health and Family Planning Commission (SZXJ2017021SZXJ2018059), Medical Scientific Research Foundation da Província de Guangdong da China (A2019218), China Postdoctoral Science Foundation (2018M633218).
0.22 μm Syringe-driven Filter Unit | Merck Millipore | SLHV033RB | |
1.5 mL centrifuge tube | Axygen | MCT-150-C | |
5 mL Pasteur pipette | JingAn Biological, China | J00085 | |
5 mL syringe | Szboon, China | 20170829 | |
50 mL conical tube | Corning | 430829 | |
5-0 surgical suture | sh-Jinhuan, China | CR537 | |
60 mL syringe | Szboon, China | 20170623 | |
75% Ethanol | LIRCON, China | 9180527 | |
Alexa Fluor 488 donkey anti-mouse IgG(H+L) | Invitrogen | A21202 | Dilution (1:200) |
anti-mouse Glucagon antibody | Abcam | ab10988 | Dilution (1:100) |
anti-mouse insulin antibody | Cell Signaling Technology | 3014s | Dilution (1:100) |
blunt-pointed perfusion needle | Oloey, China | 005 | 32G, yellow |
BSA | Meilune, China | MB4219 | |
C57BL/6 Mice | Medical Animal Center of Guangdong Province | 8~10 weeks | |
cell culture dish | BIOFIL, China | TCD000100 | General,Non-treated,87.8 mm diameter |
centrifuge | Thermo Scientific | ST16R | |
cephalosporin | Lukang medical, China | 150303 | |
CMRL-1066 | Sigma-Aldrich | C0422 | |
Codos Pet Clipper | Szcodos, China | CP-8000 | |
collagenase Type V | Sigma | C9262 | |
DAPI | Thermo Fisher | D1306 | |
D-hank's buffer | Coolaber, China | PM5140-10 | |
dithizone | Sigma-Aldrich | D5130 | |
Dnase I | Sigma-Aldrich | D4263 | |
Eosin staining media | Beyotime Biotech, China | C0109 | |
FBS | GE Healthcare Life Sciences | SH30084 | |
fluorescein diacetate (FDA) | Thermo Fisher | F1303 | |
fluorescent microscope | Leica | DMIL | |
gel-loading pipet tips | Corning | CLS4884 | |
HBSS | Coolaber, China | PM5150-10 | |
hematoxylin staining media | Cell Signaling Technology | 14166S | |
HISTOPAQUE-1077 | Sigma-Aldrich | RNBG0522 | |
HISTOPAQUE-1119 | Sigma-Aldrich | RNBG0536 | |
Hydrogel | BD Biosciences | 356234 | Basement Membrane Matrix |
Iodophor | LIRCON, China | 5190313 | |
light-tight culture dish | DVS, China | AN-5058548 | self-made, glass dish sprayed with black paint |
Medical Adhesive Tape | Cofoe, China | K12001 | |
non-invasive microtweezers | RWD Life Science | F11033-11 and F12016-15 | |
One Touch ultraeasy Basic blood glucose monitoring system | Johnson & Johnson | 33391713 | |
ophthalmic scissors | RWD Life Science | S12012-12 and S11001-08 | |
P/S (penicillin / streptomycin) | Gibco | 15140-122 | |
pentobarbital sodium | Sigma-Aldrich | P-010 | |
Propidium iodide | Sigma-Aldrich | P4864 | |
STZ (streptozotocin) | Sigma-Aldrich | S0130 | |
Test Strip | GenUltimate | 100-50 | |
TRITC-conjugated Goat anti-Rabbit IgG(H+L) | proteintech | SA00007-2 | Dilution (1:200) |
vascular clamp | RWD Life Science | R31006-04 |