Protokol, özelleştirilmiş bir perfüzyon biyoreaktöründe flep vaskülatürü boyunca sodyum dodesil sülfat deterjanının perfüzyonu ile vaskülarize domuz fleplerinin cerrahi tedarikini ve ardından desellülarizasyonunu açıklamaktadır.
Büyük hacimli yumuşak doku defektleri fonksiyonel eksikliklere yol açar ve hastanın yaşam kalitesini büyük ölçüde etkileyebilir. Cerrahi rekonstrüksiyon otolog serbest flep transferi veya vaskülarize kompozit allotransplantasyon (VCA) kullanılarak yapılabilse de, bu tür yöntemlerin dezavantajları da vardır. Donör bölge morbiditesi ve doku mevcudiyeti gibi sorunlar otolog serbest flep transferini sınırlarken, immünsüpresyon VKA’nın önemli bir sınırlamasıdır. Rekonstrüktif cerrahide desellülarizasyon/resellülarizasyon yöntemleri kullanılarak tasarlanmış dokular olası bir çözümü temsil eder. Desellülarize dokular, altta yatan hücre dışı matriks (ECM) mikromimarisini korurken doğal hücresel materyali uzaklaştıran yöntemler kullanılarak üretilir. Bu asellüler iskeleler daha sonra alıcıya özgü hücrelerle yeniden hücreselleştirilebilir.
Bu protokol, bir domuz modelinde asellüler iskeleler elde etmek için kullanılan tedarik ve desellülarizasyon yöntemlerini detaylandırır. Ek olarak, perfüzyon biyoreaktör tasarımının ve kurulumunun bir tanımını da sağlar. Flepler domuz omentumu, tensör fascia lata ve radyal önkolu içerir. Desellülarizasyon, düşük konsantrasyonlu sodyum dodesil sülfat (SDS) deterjanın ex vivo perfüzyonu ile gerçekleştirilir, ardından DNaz enzim tedavisi ve özelleştirilmiş bir perfüzyon biyoreaktöründe perasetik asit sterilizasyonu gerçekleştirilir.
Başarılı doku desellülarizasyonu, makroskopik olarak fleplerin beyaz-opak görünümü ile karakterizedir. Asellüler flepler, histolojik boyamada çekirdek bulunmadığını ve DNA içeriğinde önemli bir azalma olduğunu gösterir. Bu protokol, korunmuş ECM ve vasküler mikromimariye sahip desellülarize yumuşak doku iskeleleri üretmek için verimli bir şekilde kullanılabilir. Bu tür iskeleler daha sonraki resellülarizasyon çalışmalarında kullanılabilir ve rekonstrüktif cerrahide klinik çeviri potansiyeline sahiptir.
Travmatik yaralanma ve tümörün çıkarılması büyük ve karmaşık yumuşak doku defektlerine yol açabilir. Bu kusurlar hastanın yaşam kalitesini bozabilir, fonksiyon kaybına neden olabilir ve kalıcı sakatlığa neden olabilir. Otolog doku flebi transferi gibi teknikler yaygın olarak uygulanmakla birlikte, flep mevcudiyeti ve donör bölge morbiditesi ile ilgili sorunlar önemli sınırlamalardır 1,2,3. Vaskülarize kompozit allotransplantasyon (VCA), kas, deri, vaskülatür gibi kompozit dokuları alıcılara tek bir ünite olarak aktaran umut verici bir alternatiftir. Bununla birlikte, VCA, ilaç toksisitesine, fırsatçı enfeksiyonlara ve malignitelere yol açan uzun süreli immünsüpresyon gerektirir 4,5,6.
Doku mühendisliği asellüler iskeleler bu sınırlamalara potansiyel bir çözümdür7. Asellüler doku iskeleleri, altta yatan hücre dışı matriks (ECM) mikromimarisini korurken hücresel materyali doğal dokulardan uzaklaştıran desellülarizasyon yöntemleri kullanılarak elde edilebilir. Doku mühendisliğinde sentetik malzemelerin kullanılmasının aksine, biyolojik olarak türetilmiş iskelelerin kullanımı, biyouyumluluğa ve klinik translasyon potansiyeline izin veren biyomimetik bir ECM substratı sunmaktadır8. Desellülarizasyonu takiben, alıcıya özgü hücrelere sahip iskelelerin daha sonra yeniden hücreselleştirilmesi, daha sonra immünojenisitesi çok az olan veya hiç olmayan işlevsel, vaskülarize dokular üretebilir 9,10,11. Perfüzyon desellülarizasyon tekniklerini kullanarak asellüler dokuları elde etmek için etkili bir protokol geliştirerek, çok çeşitli doku tipleri tasarlanabilir. Buna karşılık, bu teknik üzerine inşa etmek, daha karmaşık dokulara uygulamaya izin verir. Bugüne kadar, vaskülarize yumuşak dokuların perfüzyon desellülarizasyonu, kemirgen12, domuz13 ve insan modelleri14’te tam kat fasyokutanöz flep ve domuz rektus abdominis iskelet kası15 gibi basit vaskülarize dokular kullanılarak araştırılmıştır. Ek olarak, kompleks vaskülarize dokular da domuz ve insan kulağı16,17 modellerinde ve insan tam yüz grefti modellerinde 18 gösterildiği gibi perfüzyondan arındırılmıştır.
Burada protokol, biyolojik olarak türetilmiş ECM iskeleleri kullanılarak vaskülarize serbest fleplerin desellülarizasyonunu açıklamaktadır. Klinik olarak ilgili üç flebin desellülarizasyonunu sunuyoruz: 1) omentum, 2) tensor fascia lata ve 3) radyal önkol, hepsi rekonstrüktif cerrahide rutin olarak kullanılan ve doku desellülarizasyonu bağlamında hayvan çalışmalarında daha önce incelenmemiş olan iş gücü fleplerini temsil etmektedir. Bu biyomühendislik ürünü flepler, büyük yumuşak doku defekti onarımı ve rekonstrüksiyonu alanında kullanılmak üzere klinik uygulamalar için potansiyele sahip çok yönlü ve hazır bir platform sunar.
Önerilen protokol, bir dizi domuz kaynaklı flebi hücresellikten arındırmak için düşük konsantrasyonlu SDS’nin perfüzyonunu kullanır. Bu prosedürle, asellüler omentum, tensör fasya lata ve radyal önkol flepleri, düşük konsantrasyonlu SDS’yi destekleyen bir protokol kullanılarak başarılı bir şekilde hücreselden arındırılabilir. Ön optimizasyon deneyleri, 2 gün ila 5 gün arasında düşük konsantrasyonda (%0.05) SDS’nin, histolojik tekniklerle analiz edildiğinde omentum, tensör fasyası lata…
The authors have nothing to disclose.
Hiç kimse
0.2 µm pore Acrodisk Filter | VWR | CA28143-310 | |
0.9 % Sodium Chloride Solution (Normal Saline) | Baxter | JF7123 | |
20 L Polypropylene Carboy | Cole-Parmer | RK-62507-20 | |
3-0 Sofsilk Nonabsorbable Surgical Tie | Covidien | LS639 | |
3-way Stopcock | Cole-Parmer | UZ-30600-04 | |
Adson Forceps | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Antibiotic-Antimycotic Solution, 100X | Wisent | 450-115-EL | |
Atropine Sulphate 15 mg/30ml | Rafter 8 Products | 238481 | |
BD Angiocath 20-Gauge | VWR | BD381134 | |
BD Angiocath 22-Gauge | VWR | BD381123 | |
BD Angiocath 24-Gauge | VWR | BD381112 | |
Calcium Chloride | Sigma-Aldrich | C4901 | DNAse Co-factor |
DNase I from bovine pancreas | Sigma-Aldrich | DN25 | |
DNA assay (Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay Kit) | Invitrogen | P7589 | |
DPBS, 10X | Wisent | 311-415-CL | without Ca++/Mg++ |
Halsted-Mosquito Hemostat | Fine Science Tools | 13008-12 | |
Heparin, 1000 I.U./mL | Leo Pharma A/S | 453811 | |
Ketamine Hydrochloride 5000 mg/50 ml | Bimeda-MTC Animal Health Inc. | 612316 | |
Ismatec Pump Tygon 3-Stop Tubing | Cole-Parmer | RK-96450-40 | Internal Diameter: 1.85 mm |
Ismatec REGLO 4-Channel Pump | Cole-Parmer | 78001-78 | |
Ismatec Tubing Cassettes | Cole-Parmer | RK-78016-98 | |
Isoflurane 99.9%, 250 ml | Pharmaceutical Partners of Canada Inc. | 2231929 | |
LB Agar Lennox | Bioshop Canada | LBL406.500 | Sterility testing agar plates |
Magnesium Sulfate | Sigma-Aldrich | M7506 | DNAse Co-factor |
Masterflex L/S 16 Tubing | Cole-Parmer | RK-96410-16 | |
Midazolam 50 mg/10 ml | Pharmaceutical Partners of Canada Inc. | 2242905 | |
Monopolar Cautery Pencil | Valleylab | E2100 | |
Normal Buffered Formalin, 10% | Sigma-Aldrich | HT501128 | |
N°11 scalpel blade | Swann Morton | 303 | |
Papain from papaya latex | Sigma-Aldrich | P3125 | |
Peracetic Acid | Sigma-Aldrich | 269336 | |
Plastic Barbed Connector for 1/4" to 1/8" Tube ID | McMaster-Carr | 5117K61 | |
Plastic Barbed Tube 90° Elbow Connectors | McMaster-Carr | 5117K76 | |
Plastic Quick-Turn Tube Plugs | McMaster-Carr | 51525K143 | Male Luer |
Plastic Quick-Turn Tube Sockets | McMaster-Carr | 51525K293 | Female Luer |
Punch Biopsy Tool | Integra Miltex | 3332 | |
Potassium Chloride 40 mEq/20 ml | Hospira Healthcare Corporation | 37869 | |
Povidone-Iodine, 10% | Rougier | 833133 | |
Serological Pipet, 2mL | Fisher Science | 13-678-27D | |
Snap Lid Airtight Containers | SnapLock | 142-3941-4 | |
Sodium Dodecyl Sulfate Powder | Sigma-Aldrich | L4509 | |
Surgical Metal Ligation Clips, Small | Teleflex | 001200 | |
Stevens Tenotomy Scissors, 115 mm, straight | B. Braun | BC004R | |
TruWave Pressure Monitoring Set | Edwards Lifesciences | PX260 |