Summary

Une méthode évolutive basée sur des cellules pour l’évaluation fonctionnelle des variantes d’Ube3a

Published: October 10, 2022
doi:

Summary

Une méthode simple et évolutive a été développée pour évaluer la signification fonctionnelle des variantes faux-sens dans Ube3a, un gène dont la perte et le gain de fonction sont liés à la fois au syndrome d’Angelman et au trouble du spectre autistique.

Abstract

L’utilisation accrue du séquençage en médecine a permis d’identifier des millions de variantes codantes dans le génome humain. Beaucoup de ces variantes se produisent dans les gènes associés aux troubles neurodéveloppementaux, mais la signification fonctionnelle de la grande majorité des variantes reste inconnue. Le présent protocole décrit l’étude des variantes de Ube3a, un gène qui code pour une ubiquitine ligase E3 liée à la fois à l’autisme et au syndrome d’Angelman. La duplication ou la triplication d’Ube3a est fortement liée à l’autisme, alors que sa délétion provoque le syndrome d’Angelman. Ainsi, la compréhension de la valence des changements dans l’activité de la protéine UBE3A est importante pour les résultats cliniques. Ici, une méthode rapide basée sur les cellules qui associe les variantes Ube3a avec un rapporteur de voie Wnt est décrite. Ce test simple est évolutif et peut être utilisé pour déterminer la valence et l’ampleur des changements d’activité dans n’importe quelle variante d’Ube3a . De plus, la facilité de cette méthode permet la génération d’une mine d’informations structure-fonction, qui peuvent être utilisées pour obtenir des informations approfondies sur les mécanismes enzymatiques d’UBE3A.

Introduction

Les progrès technologiques récents ont rendu le séquençage des exomes et des génomes systématique en milieu clinique 1,2. Cela a conduit à la découverte d’un grand nombre de variantes génétiques, y compris des millions de variantes faux-sens qui modifient généralement un acide aminé dans une protéine. Comprendre la signification fonctionnelle de ces variantes reste un défi, et seule une petite fraction (~2%) des variantes faux-sens connues ont une interprétation clinique 1,3.

Un exemple frappant de ce problème est Ube3a, un gène qui code pour une ubiquitine ligase E3 qui cible les protéines substrat pour la dégradation4. Ube3a réside dans le chromosome 15q11-13 et est exprimé exclusivement à partir de l’allèle maternel 5,6,7. Les observations de la génétique de la maladie suggèrent fortement qu’une activité insuffisante ou excessive de l’enzyme UBE3A provoque des troubles neurodéveloppementaux distincts. La délétion du chromosome maternel 15q11-13 provoque le syndrome d’Angelman (SA)8, un trouble caractérisé par une déficience intellectuelle sévère, des déficiences motrices, des convulsions, un comportement heureux avec des sourires fréquents et des traits du visage dysmorphiques 8,9,10. En revanche, la duplication ou la triplication du chromosome maternel 15q11-13 provoque le syndrome Dup15q, une maladie hétérogène reconnue comme l’une des formes syndromiques les plus répandues de l’autisme11,12,13. En outre, il existe des centaines de variantes faux-sens identifiées dans Ube3a, dont la majorité sont considérées comme des variantes de signification incertaine (VUS) car leur signification fonctionnelle et clinique est inconnue. Ainsi, il existe un intérêt considérable pour le développement de méthodes permettant d’évaluer empiriquement les variantes d’Ube3a afin de déterminer si elles contribuent à la maladie neurodéveloppementale.

L’enzyme UBE3A appartient à la famille de domaines HECT (homologue à E6-AP C-terminus) des ligases d’ubiquitine E3 qui possèdent toutes le domaine HECT éponyme, qui contient la machinerie biochimique nécessaire pour accepter l’ubiquitine activée des enzymes E2 et la transférer aux protéines substrat14. Historiquement, la caractérisation des enzymes E3 s’est appuyée sur des systèmes in vitro reconstitués qui nécessitent un ensemble de protéines purifiées 4,15,16. Ces méthodes sont lentes et laborieuses et ne se prêtent pas à l’évaluation de l’activité d’un grand nombre de variantes. Dans des travaux antérieurs, UBE3A a été identifié pour activer la voie Wnt dans les cellules HEK293T en modulant la fonction du protéasome pour ralentir la dégradation de la β-caténine17. Cet aperçu permet l’utilisation des rapporteurs de trajectoire Wnt comme méthode efficace et rapide pour identifier les variantes de perte et de gain de fonction d’Ube3a18. Le protocole ci-dessous décrit en détail une méthode pour générer des variantes Ube3a ainsi qu’un rapporteur basé sur la luciférase pour évaluer les changements dans l’activité des variants Ube3a.

Protocol

1. Clonage de mutagenèse pour générer des variantes d’Ube3a Cloner toutes les variantes d’Ube3a dans le plasmide pCIG2 (Figure 1A), un vecteur bicistronique qui contient un promoteur de la β-actine de poulet et un site d’entrée interne du ribosome (IRES) pour l’expression EGFP19. Les constructions Ube3a complètes contiennent une séquence Myc-tag N-terminale et sont clonées en pCIG2 à l’aide d’u…

Representative Results

Le criblage fonctionnel à grande échelle des variantes faux-sens d’Ube3a identifie un large paysage de mutations de perte et de gain de fonctionDes travaux antérieurs avec des mutants Ube3a ont suggéré que la réponse Wnt peut servir de rapporteur de l’activité cellulaire de la protéine UBE3A. Ces observations ont été élargies et des expériences de validation supplémentaires ont été réalisées pour déterminer si le test BAR est approprié pour signaler une gamme …

Discussion

Le protocole décrit ici fournit une méthode efficace et évolutive pour évaluer l’activité enzymatique des variantes d’Ube3a. Plusieurs détails techniques méritent d’être soigneusement examinés lors de l’utilisation de ce test. Une considération est le choix des plasmides rapporteurs Wnt utilisés dans ce test. Le protocole décrit ici utilise spécifiquement le rapporteur activé par la β-caténine (BAR)21, un rapporteur qui contient un concatémère de 12 éléments de…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par un prix Bridge to Independence de la Fondation Simons (SFARI Award #387972; J.J.Y.), un NARSAD Young Investigator Award de la Brain and Behavior Research Foundation (J.J.Y.), une bourse de recherche de la Alfred P. Sloan Foundation (J.J.Y.) et des subventions de recherche de la Angelman Syndrome Foundation (J.J.Y.), de la Whitehall Foundation (J.J.Y.) et du NIMH (R01MH122786; J.J.Y.).

Materials

0.05% Trypsin-EDTA (1x), phenol red Gibco 25300-054
1 Kb DNA ladder Lambda Biotech M108-S
100 bp DNA Ladder Lambda Biotech M107
10x Buffer for T4 DNA Ligase with 10 mM ATP New England BioLabs B0202A
5x Phusion HF Reaction Buffer New England BioLabs B0518S
Antibiotic-Antimycotic Solution Corning 30004CI
Black/White Isoplate-96 Black Frame White Well plate PerkinElmer 6005030
Carbenicillin Disodium Salt Midwest Scientific KCC46000-5
Countess cell counting chamber  slides Invitrogen by Thermo Fisher Scientific C10283
Countess II Automated Cell Counter  life technologies Cell counting machine
Custom DNA oligos Integrated DNA Technologies (IDT)
Deoxynucleotide (dNTP) Solution Mix New England BioLabs N0447S
DMEM, high glucose, GlutaMAX Supplement, pyruvate Gibco 10569044 Basal medium for supporting the growth of HEK293T cell line
DPBS (1x) Gibco 14190-136
Dual-Luciferase Reporter Assay System Promega E1910
EcoRI-HF  New England BioLabs R3101S Restriction enzyme
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated Gibco 16140071 Fetal bovine serum
Fisherbrand Surface Treated Tissue Culture Dishes Fisherbrand FB012924
FuGENE 6 Transfection Reagent Promega E2691
Gel Loading Dye Purple (6x) New England BioLabs B7024A
HEK293T cells ATCC CRL-3216
High Efficiency ig 10B Chemically Competent Cells Intact Genomics 1011-12 E. coli DH10B cells
HiSpeed Plasmid Midi Kit Qiagen 12643 Midi prep
pCIG2 plasmid
pGL3 BAR plasmid
Phusion HF DNA Polymerase New England BioLabs M0530L DNA polymerase
ProFlex 3 x 32 well PCR System Applied biosystems by life technologies Thermocycler
pTK Renilla plasmid
QIAprep Spin Miniprep Kit (250) Qiagen 27106 Mini prep
QIAquick Gel Extraction Kit (250) Qiagen 28706 Gel purification
QIAquick PCR Purification Kit (250) Qiagen 28106 PCR purification
rCutSmart Buffer New England BioLabs B6004S
SacI-HF New England BioLabs R3156S Restriction enzyme
Synergy HTX Multi-Mode Reader BioTek  Plate reader runs Gen5 software v3.08 (BioTek)
T4 DNA Ligase New England BioLabs M0202L Ligase
TAE Buffer, Tris-Acetate-EDTA, 50x Solution, Electrophoresis Fisher Scientific BP13324
Tissue Culture Plate 96 wells, Flat Bottom Fisherbrand FB012931
UltraPure Ethidium Bromide Solution Invitrogen by Thermo Fisher Scientific 15585011
XmaI New England BioLabs R0180S Restriction enzyme

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Cite This Article
Stelzer, J. A., Yi, J. J. A Scalable, Cell-Based Method for the Functional Assessment of Ube3a Variants. J. Vis. Exp. (188), e64454, doi:10.3791/64454 (2022).

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