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Methodenartikel

Nachweis von Mitophagie in Caenorhabditis elegans und Säugetierzellen mit organellenspezifischen Farbstoffen

3.4K Aufrufe

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DOI:

10.3791/65337

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19. Mai 2023

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Die Erforschung der Mitophagie durch Elektronenmikroskopie, genetische Sensoren und Immunfluoreszenz erfordert kostspielige Geräte, qualifiziertes Personal und einen erheblichen Zeitaufwand. Hier demonstrieren wir die Wirksamkeit eines kommerziellen Fluoreszenzfarbstoff-Kits bei der Quantifizierung des Mitophagie-Prozesses sowohl in Caenorhabditis elegans als auch in einer Leberkrebszelllinie.

Zusammenfassung

Mitochondrien sind essentiell für verschiedene biologische Funktionen, darunter Energieproduktion, Fettstoffwechsel, Kalziumhomöostase, Häm-Biosynthese, regulierter Zelltod und die Bildung von reaktiven Sauerstoffspezies (ROS). ROS sind für wichtige biologische Prozesse von entscheidender Bedeutung. Wenn sie jedoch nicht kontrolliert werden, können sie zu oxidativen Schäden, einschließlich mitochondrialer Schäden, führen. Beschädigte Mitochondrien setzen mehr ROS frei, wodurch die Zellschädigung und der Krankheitszustand verstärkt werden. Ein homöostatischer Prozess, der als mitochondriale Autophagie (Mitophagie) bezeichnet wird, entfernt selektiv beschädigte Mitochondrien, die dann durch neue ersetzt werden. Es gibt mehrere Mitophagie-Signalwege, wobei der gemeinsame Endpunkt der Abbau der geschädigten Mitochondrien in Lysosomen ist.

Mehrere Methoden, darunter genetische Sensoren, Antikörper-Immunfluoreszenz und Elektronenmikroskopie, nutzen diesen Endpunkt zur Quantifizierung der Mitophagie. Jede Methode zur Untersuchung der Mitophagie hat ihre Vorteile, wie z. B. spezifisches Gewebe-/Zell-Targeting (mit genetischen Sensoren) und hohe Detailgenauigkeit (mit Elektronenmikroskopie). Diese Methoden erfordern jedoch oft teure Ressourcen, geschultes Personal und eine lange Vorbereitungszeit vor dem eigentlichen Versuch, etwa für die Erzeugung transgener Tiere. Hier stellen wir eine kostengünstige Alternative zur Messung der Mitophagie mit kommerziell erhältlichen Fluoreszenzfarbstoffen vor, die auf Mitochondrien und Lysosomen abzielen. Diese Methode misst effektiv die Mitophagie im Fadenwurm Caenorhabditis elegans und in menschlichen Leberzellen, was auf ihre potenzielle Effizienz in anderen Modellsystemen hinweist.

Einleitung

Mitochondrien sind für alle aeroben Tiere, einschließlich des Menschen, unerlässlich. Sie wandeln die chemische Energie von Biomolekülen durch oxidative Phosphorylierungin Adenosintriphosphat (ATP) um1, synthetisieren Häm2, bauen Fettsäuren durch β Oxidation3 ab, regulieren die Homöostase von Kalzium4 und Eisen5, kontrollieren den Zelltod durch Apoptose6 und erzeugen reaktive Sauerstoffspezies (ROS), die eine wichtige Rolle bei der Redoxhomöostase spielen7. Zwei komplementäre und gegensätzliche....

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Protokoll

HINWEIS: Zur Bequemlichkeit der Leser haben wir das Protokoll in zwei Teile unterteilt: Einer konzentriert sich auf das Protokoll zur Messung der Mitophagie in C. elegans und der andere konzentriert sich auf das Protokoll zur Messung der Mitophagie in Leberzellen. Die Liste der Materialien finden Sie in der bereitgestellten Materialtabelle .

1. Das C. elegans-Protokoll

  1. Vorbereitung der Nematoden-Wachstumsmedien (NGM)-Platten und des Escherichia coli OP50-Bakterienbestands
    HINWEIS: Zur Klarstellung: Obwohl wir die Standardprotokolle für die Herstellung der NGM-Platten ....

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Ergebnisse

Induktion einer robusten Mitophagieantwort sowohl in C. elegans-Würmern als auch in Hep-3B-Zellen mit VL-850
VL-850 schützt C. elegans-Würmer und menschliche Keratinozyten (HaCaT-Zellen) vor oxidativem Stress23. Um seinen Wirkmechanismus weiter zu erforschen, untersuchten wir, ob VL-850 Mitophagie in C. elegans und anderen menschlichen Zellen induziert. Um dies zu testen, setzten wir C. elegans-Würmer (junge Erwachsene, 3 Tage nach L1) 6 h la.......

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Diskussion

An mehreren Mitophagie-Signalwegen sind verschiedene Proteine und Biomoleküle (z. B. Cardiolipin29) beteiligt. Der Endpunkt dieser Signalwege ist jedoch ähnlich - der Abbau von Mitochondrien durch lysosomale Enzyme12,13. Tatsächlich nutzen mehrere Methoden diesen Endpunkt, um die Mitophagie zu quantifizieren. Einige Methoden, wie z. B. die Elektronenmikroskopie, erfordern jedoch den Zugang zu kostspieligen Geräten, geschulten Experten und .......

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Offenlegungen

Die Autoren haben keine Interessenkonflikte zu erklären.

Danksagungen

Wir danken den Mitarbeiterinnen und Mitarbeitern des Grosslabors für die kritische Lektüre des Manuskripts und ihre Kommentare und Ratschläge. Wir danken dem Caenorhabditis Genetics Center (CGC), das vom National Institutes of Health Office of Research Infrastructure Programs (P40 OD010440) finanziert wird, für die Bereitstellung einiger der Stämme. Diese Forschung wurde durch ein Stipendium von Vitalunga Ltd und der Israel Science Foundation (Grant No. 989/19) unterstützt. Die graphische abstrakte Abbildung (Abbildung 1) wurde mit BioRender.com erzeugt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Reagenz oder Ressource
AnalysenwaageMettler-Toledo
Bacto AgarBD-Difco214010
Bacto PeptonBD-Difco211677
Bacto TryptonBD-Difco211705
Bacto HefeextraktBD-Difco212750
CalciumchloridSigmaC1016
Carbonylcyanid 4-(trifluormethoxy)phenylhydrazon (FCCP)SigmaC2920
Chemikalien
CholestrolThermo FisherC/5360/48
DMEM mit hohem GlukosegehaltBiologische Industrie01-055-1A
Doppelt destilliertes Wasser (DDW)
Dulbecco's Phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS)Biological Industries02-023-1A
FBS hitzeinaktiviertesInvitrogenM7514
Gluteradehyd (25%)SigmaG5882
HEPES Puffer 1 MBiological Industries03-025-1B
L-GluataminBiologische Industrie03-020-1B
Lysosomen/Mitochondrien/Kernfärbung Cytopainter ReagenzAbcam ab139487
MagnesiumsulfatSigmaM7506
Nonidet P 40Sigma74385
Paraformalydehyd (16%)Elektronenmikroskopie Wissenschaften15720
Poloxamer 188 LösungSigmaP5556
KaliumdihydrogenphosphatMillipore1.04873.1000
Kaliumphosphat zweibasischSigma P3786
SeaKem LE AgaroseLonza50004
NatriumchloridBio-Lab1903059100
NatriumhydroxidGadot1310732
Natriumphosphat zweibasisches DodecahydratSigma4273
TetracyclinhydrochloridSigma87128-25G
Trypsin-EDTABiological Industries03-052-1A
VL-850: 1,8-Diaminooxy-octanPatentiert<
stark>Glas/Kunststoff Einweg
0,22 μ m SpritzenfilterMillex GVSLGV033RS
1,7 mL MikrozentrifugenröhrchenLifegeneLMCT1.7B-500
10 cm PetriplattenCorning430167
1.000 mL ErlenmeyerkolbenIsoLab, Deutschland
15 mL Steriles PolypropylenröhrchenLifegeneLTB15-500
35 mm PetrischalenBar Naor
500  mL Vakuumfilter-/Vorratsflaschensystem, 0,22  μ mLifegeneLG-FPE205500S
50 mL Steriles Polypropylen-RöhrchenLifegeneLTB50-500
Deckglä ser Mikroskop Deckglas 24 x 60 mmMarienfeld101152
Glas Reagenzgläser (10 mL- 13 x 100 mm) BorosilikatglasPyrex99445-13
iBiDi 8 well μ-ObjektträgeriBiDi80826
Mikroskop Deckglas 24 x 40 mmBar NaorBN1052421ECALN
Platin Iridium 0,25 mM DrahtWorld Precision InstrumentsPT1002
Instruments
Cell Zähler CellDrop BFDeNovixCellDrop BF-UNLTD
Microspin FV-2400BiosanBS-010201-AAA
Nikon Yokogawa W1 Konfokalmikroskop mit DAPI-, FITC und TRITC Filtern und Hellfeld, mit einem 60x CFI Plan-Apochromat Lambda Typ Objektiv (Luftlinse) und NIS-Elements SoftwareNikonCSU-W1
Olympus SZ61 StereomikroskopOlympusSZ61
pH-MessgerätMettler-ToledoMT30019032
Revolver Einstellbarer LaborrotatorLabnetH5600
BN9015810

Referenzen

  1. Westermann, B. Molecular machinery of mitochondrial fusion and fission. Journal of Biological Chemistry. 283 (20), 13501-13505 (2008).
  2. Piel, R. B., Dailey, H. A., Medlock, A. E. The mitochondrial heme metabolon: Insig....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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