4,703 Views
•
05:56 min
•
January 22, 2020
DOI:
Наш протокол отмечает, что использование экстрактов почек от коров и свиней является отличным и экономичным ресурсом для изучения физиологии почек, в частности изучения корреляции между сосудистым эндотелиальным фактором роста и другими аналитами. Это всегда было проблемой для корреляции VEGF, важным фактором роста в ангиогенезе органов, с другими белками. Этот метод позволяет нам исследовать связь между VEGF и аналитами, такими как гормоны.
Это, безусловно, будет способствовать нашей базе знаний в отношении этого важного фактора роста. Этот метод может быть полезен для корреляции других аналитов в почечных корковых экстрактов, кроме тех, упомянутых в этом видео. Визуальная демонстрация поможет другим получить воспроизводимые результаты без каких-либо ошибок выборки.
Использование свежих тканей имеет важное значение для успеха этого метода. Важно получить свежие целые почки сразу после забоя у животного. Всегда перенесите ткань в лабораторию на льду.
Используйте стерильные ножницы, типсы, нож и чашки Петри, чтобы вскрыть почки и вырезать необходимую часть ткани. Аккуратно разрежьте почку пополам вдоль сагиттальной плоскости и вырежьте кусок ткани из области коры головного мозга в центре почки. Фарш ткани на мелкие кусочки с ножом и передать его в трубку микрофуза с одним миллилитров ледяной 1X RIPA лиза извлечения буфера.
Этикетка трубки с конкретными деталями образца и поместите его на лед. Используйте портативный гомогенизатор со стерильным зондом, чтобы гомогенизировать ткани в течение одной-двух минут, пока не видны куски, а затем немедленно центрифуга трубки на 9, 600 раз g в течение пяти минут при четырех градусах Цельсия. После центрифугации подготовьте отдельные алициты образца для ELISA и общего анализа белка, чтобы избежать нескольких циклов замораживания/оттепели.
Перед началом анализа, довести все реагенты и анализ пластины для комнатной температуры удаления избыточных скважин и хранения их при четырех градусах по Цельсию до дальнейшего использования. Разбавить буфер 20X мыть до 300 миллилитров с двойной дистиллированной водой и создать пустые колодцы без какого-либо решения. Добавьте 50 микролитров стандартного или образца и еще 50 микролитров пероксидиса хрена к каждой хорошо, затем сразу добавьте 50 микролитров раствора антител к каждой хорошо и запечатайте пластину.
Смешайте пластину и инкубировать его при 37 градусах по Цельсию в течение одного часа. После инкубации, мыть каждый хорошо с 200 микролитров мыть буфера. Добавьте 50 микролитров субстрата А и субстрата B к каждой хорошо, аккуратно перемешайте пластину, постукивая по стороне, затем запечатайте и инкубировать ее в темноте в течение 15 минут при 37 градусах цельсия.
Добавьте 50 микролитров стоп-раствора к каждой колодец. Аккуратно коснитесь пластины и прочитайте абсорбанс на 450 нанометров с помощью спектрофотометра. Подготовка реагентов и мыть буфер, как описано ранее, а затем добавить 100 микролитров стандарта или образца для каждого хорошо, печать пластины, хорошо перемешать, и инкубировать его в течение двух часов при 37 градусов по Цельсию.
Удалите жидкость в каждой хорошо и добавить 100 микролитров реагента обнаружения A.Seal пластины и инкубировать его еще на час. Затем промойте каждый колодец 400 микролитров буфера для мытья, затем добавьте 90 микролитров субстратного раствора к каждой хорошо, аккуратно коснитесь пластины и инкубировать ее еще на час при 37 градусах по Цельсию. После последней инкубации добавьте к каждой хорошо 50 микролитров стоп-раствора, аккуратно коснитесь пластины и прочитайте абсорбцию на 450 нанометров с помощью спектрофотометра.
Оцените общий белок экстрактов бычьих и свиных почек со стандартным анализом BSA и используйте эту оценку для нормализации результатов LH и VEGF-A-ELISA. Средний и средний уровни LH и VEGF были рассчитаны как для животных, так и для полов. После проверки нормальности данных для изучения взаимосвязи между LH и VEGF были использованы модели линейной регрессии.
Было установлено, что LH является сильным и значительным предиктором VEGF как в бычьих, так и в свиных почках. При попытке этой процедуры, важно помнить, чтобы образец идентичных областей в каждой ткани. Аналогичная процедура может быть использована для извлечения любого типа ткани.
Не забудьте нормализовать аналиты по общей экстракт белка любой ткани вы используете.
Представлен протокол для использования корковой подготовки экстракта почки и полной нормализации белка, чтобы продемонстрировать корреляцию между сосудистым эндотелиальным фактором роста и лютеинизирующим гормоном в почках млекопитающих.
Read Article
Cite this Article
Muthusamy, A., Arivalagan, A., Movsas, T. Z. Demonstrating a Linear Relationship Between Vascular Endothelial Growth Factor and Luteinizing Hormone in Kidney Cortex Extracts. J. Vis. Exp. (155), e60785, doi:10.3791/60785 (2020).
Copy