Взятии крови у крыс путем подкожной вены и пункции сердца

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Крови привлекает необходимы в большом количестве исследований, например для изучения фармакокинетики профиля соединения. Здесь мы показываем, как рисовать крови у крыс с помощью двух методов: кровь извлечь из подкожной вены или пункции сердца.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. Drawing Blood from Rats through the Saphenous Vein and by Cardiac Puncture. J. Vis. Exp. (7), e266, doi:10.3791/266 (2007).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Рисование крови от грызунов необходимо для большого числа как в пробирке и в естественных исследованиях. Сайты крови привлекает множество у грызунов: ретро-орбитальной пазухи, яремной вены, верхнечелюстной вены, подкожной вены, сердце. Каждый метод имеет свои преимущества и недостатки, а некоторые из них не одобрен уже не в некоторых странах (например, ретро-орбитальной привлекает в Голландии). Обсуждение различных методов для рисования крови имеются 1-3. Здесь мы приведем два способа забора крови у крыс, каждый со своими специфическими приложениями.

Кровь извлечь из подкожной вены, если это сделано должным образом, вызывает минимальное бедствие у животных и не требует анестезии. Эта техника позволяет повторять привлекает небольших количеств крови, например, сколько необходимо для фармакокинетических исследований 4,5, определяющих плазмохимии, или анализ крови 6.

Сердечная пункция позволяет собирать большое количество крови от одного животного (до 10 мл крови можно сделать из 150 крыс г). Этот метод, следовательно, очень полезны в качестве терминала процедуры при взятии крови из подкожной не обеспечит достаточно большой выборке. Мы используем пункции сердца, когда нам нужно достаточное количество сыворотки от конкретного штамма крыс расти Т-лимфоцитов в пробирке линиями 4-9.

Protocol

Взятии крови у крыс путем подкожной вены и пункции сердца

Примечание: Все процедуры должны быть одобрены животного ваш институт по уходу и использованию комитета.

1. Кровь извлечь из подкожной вены

  1. Эта процедура проводится без анестезии и требует два человека, один, кто обращается с крысой, и тот, кто выполняет ничьей.
  2. Сделать конус из полотенца или держать крысу с грызунами обработки перчатки, оставляя одну задних конечностей подвергается.
  3. Бритье задней ноге электрический триммер до подкожной вены видны. Бритье достаточно большой области, так что нет волос будет вступать в контакт с места прокола. Используйте небольшое количество не-ароматный крем для рук, чтобы сохранить, не бритые волосы от места прокола.
  4. Сделать точки сжатия у основания ног, чтобы сделать из подкожной вены выпуклость (по аналогии с использованием жгута при взятии крови у человека или крупное животное). Прокол вены с использованием иглы 20G и совок крови, как это происходит с использованием microvette. Насосная с ног поможет привлечь больше крови. Когда вы собрали достаточное количество крови, держите чистую компресс на месте прокола, чтобы остановить кровотечение.

2. Кровь ничью пункции сердца

  1. Эта процедура требует анестезии и терминала. Животные должны быть немедленно эвтаназии в конце пункции сердца.
  2. Подготовка 5 мл шприц с иглой 23G1.
  3. Глубоко anesthesize крысы и проверить его на наркоз из-за отсутствия стихийным движением, медленный темп дыхания, и отсутствие реакции на раздражители (например, зажимая палец ноги). Для обеспечения длительной анестезии, место шприца содержащих бумажные полотенца пропитанной в летучих анестетиков на носу крыс во время процедуры.
  4. Место крысы на спине, лицом от себя.
  5. Если вы правша, поместите указательный палец левой руки на уровне самых низких ребер, без применения каких-либо давления. Сердце будет располагаться ~ 1 см выше этой точки, слегка вправо.
  6. Холдинг ваш шприц на 45-градусный угол, вставить иглу между двумя ребрами и наблюдать за каплю крови, чтобы вступить в иглу. Это признак того, что вы находитесь в сердце. Не двигая вашу шприца, наденьте на поршень, чтобы заполнить шприц. После шприц полной, тщательно отключите его от иглы и проводить его в трубочку. Шприц может быть повторное подключение к игле для рисования больше крови. Должна быть возможность привлечь 5-10 мл крови из 120-180 г крысы.
  7. Сразу же усыпить крысу.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Рисование крови из подкожной вены является удобным способом получить небольшое количество крови без наркоза. Если повторный отбор требуется, проверьте правила, чтобы обеспечить Вам не привлекают слишком много крови из одной крысы.

Рисование крови пункции сердца является удобный способ получить большое количество крови, но это терминал процедуры. Животное должно быть умерщвлены в конце кровь рисовать.

Эти методы (как и все методы на живых животных) должно быть сделано впервые в присутствии ветеринара или ветеринарной техника, который будет в состоянии оценить, что у животных, обрабатываются должным образом и не подвергаются ненужной боли и / или терпящим бедствие.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Needle 20G 1/2 Tool BD Biosciences 305176 For puncturing the saphenous vein
Microvette 300 Tool Sarstedt Ltd 20.1308.100 To collect blood from the saphenous vein
Electric trimmer Tool Braintree Scientific, Inc. CLP-32130
Needle 23 G 1 Tool BD Biosciences 305145 For cardiac puncture
5 ml plastic syringe, slip tip Tool Fisher Scientific 14-826-12 For cardiac puncture

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Van Herck, H., Baumans, V., Brandt, C. J. W. M., Boere, H. A. G., Hesp, A. P. M., Van Lith, H. A., Schurink, M., Beynen, A. C. Blood sampling from the retro-orbital plexus, the saphenous vein and the tail vein in rats: comparative effects on selected behavioural and blood variables. Laboratory Animals. 35, 131-139 (2001).
  2. Luzzi, M., Skoumbourdis, E., Baumans, V., Conte, A., Sherwin, C., Kerwin, A., Lang, T., Morton, D., Barley, J., Moreau, E., Weilenmann, R. F., Reinhardt, V. Collecting blood from rodents: a discussion by the laboratory animal refinement and enrichment forum. Animal Technology and Welfare. 4, 99-102 (2005).
  3. Angelow, O., Schroer, R. A., Heft, S., James, V. C., Noble, J. A comparison of two methods of bleeding rats: the venous plexus of the eye versus the vena sublingualis. Jounal of Applied Toxicology. 4, 258-260 (2006).
  4. Beeton, C., Wulff, H., Barbaria, J., Clot-Faybesse, O., Pennington, M., Bernard, D., Cahalan, M. D., Chandy, K. G., Beraud, E. Selective blockade of T lymphocyte K+ channels ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis, a model for multiple sclerosis. Proc. Natl. Acad. 13942-13947 (2001).
  5. Beeton, C., Pennington, M. W., Wulff, H., Singh, S., Nugent, D., Crossley, G., Khaytin, I., Chen, C. Y., Calabresi, P. A., Chandy, K. G. Targeting effector memory T cells with a selective peptide inhibitor of Kv1.3 channels for therapy of autoimmune diseases. Mol. Pharmacol. 1369-1381 (2005).
  6. Beeton, C., Wulff, H., Standifer, N. E., Azam, P., Mullen, K. M., Pennington, M. W., Kolski-Andreaco, A., Wei, E., Grino, A., Counts, D. R., Wang, P. H., LeeHealey, C. J., Andrews, B. S., Sankaranarayanan, A., Homerick, D., Roeck, W. W., Tehranzadeh, J., Stanhope, K. L., Zimin, P., Havel, P. J., Griffey, S., Knaus, H. G., Nepom, G. T., Gutman, G. A., Calabresi, P. A., Chandy, K. G. Kv1.3 channels are a therapeutic target for T cell mediated autoimmune diseases. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 17414-17419 (2006).
  7. Beeton, C., Barbaria, J., Devaux, J., Benoliel, A. -M., Gola, M., Sabatier, J. -M., Bernard, D., Crest, M., Beraud, E. Selective blocking of voltage-gated K+ channels treats experimental autoimmune encephalomyelitis and inhibits T-cell activation. J. Immunol. 936-944 (2001).
  8. Devaux, J., Forni, C., Beeton, C., Barbaria, J., Beraud, E., Gola, M., Crest, M. Myelin basic protein-reactive T cells induce conduction failure in vivo but not in vitro. Neuroreport. 317-320 (2003).
  9. Beeton, C., Chandy, K. G. Induction and monitoring of adoptive delayed type hypersensitivity in rats. Journal of Visualized Experiments. 8, (2007).

Comments

13 Comments

  1. DŒs the cardiac puncture procedure also work with mice? If not, how can I do a cardiac puncture with mice?

    Reply
    Posted by: Anonymous
    October 1, 2008 - 6:35 PM
  2. Yes, this cardiac puncture also works with mice. It is just a little more difficult as a ²0g mouse is about 10 times smaller than the rat shown on this video but, with a little practice, the mouse cardiac puncture can be done with consistent results.

    Reply
    Posted by: Christine B.
    October 1, 2008 - 6:42 PM
  3. Is it possible to draw 1 mL of whole blood from the Saphenous vein of a 150 g rat?

    Reply
    Posted by: Anonymous
    October 26, 2008 - 10:00 PM
  4. 1 ml is a lot of blood and I doubt you can get that much reliably from the saphenous vein. I usually draw 50-100 ul, sometimes up to 300 ml.

    Reply
    Posted by: Christine B.
    October 27, 2008 - 11:13 AM
  5. is there is any need to change the needle size for doing experiments in mice

    Reply
    Posted by: Anonymous
    November 10, 2008 - 11:08 PM
  6. I would try with a ²3G, like for rats. You can use ²5G but then you will start seeing more hemolysis.

    Reply
    Posted by: Christine B.
    November 11, 2008 - 4:47 PM
  7. Why isn't hemolysis acceptable?

    Reply
    Posted by: sumali k.
    January 4, 2010 - 2:24 PM
  8. Why isn't hemolysis acceptable?

    Reply
    Posted by: sumali k.
    January 4, 2010 - 2:25 PM
  9. Whether of not hemolysis during blood draw is acceptable depends on the use you will have for the blood.
    We often use blood drawn through terminal cardiac puncture for the preparation of serum for tissue culture. In this case we try to avoid hemolysis as this affects cell survival in culture. For other applications, hemolysis may not represent a problem.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    January 4, 2010 - 2:34 PM
  10. How much heparin to you add to your tubes before collecting the blood?

    Reply
    Posted by: Alexis L.
    February 3, 2010 - 1:09 PM
  11. If you want to collect plasma, prepare a solution of 5% heparin in PBS and add 0.1 ml of it to each 3-5 ml syringe.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    February 3, 2010 - 1:12 PM
  12. For vena saphena: If you puncture the vein lower (next to the ankle), it's easier, because the vein in this area is more on the surface.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    August 17, 2011 - 3:45 AM
  13. I'm a graduate student from P.R.China.In our lab, we draw blood from mice from the retro-orbital sinus, which technique I find really disconcerting. I'm fascinated by your technique demonstrated here, and I would be grateful if Ms Beeton can send me the written protocol via e-mail.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    January 31, 2012 - 7:32 PM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Usage Statistics