总蛋白提取和二维凝胶电泳方法

Immunology and Infection

GE Global Research must subscribe to JoVE's Immunology and Infection section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

洋葱伯克霍尔德属的成员是重要的临床意义病原体。我们描述了一种菌体总蛋白的提取,采用机械破碎,和2-D凝胶电泳随后蛋白质组学分析。

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Velapatiño, B., Zlosnik, J. E., Hird, T. J., Speert, D. P. Total Protein Extraction and 2-D Gel Electrophoresis Methods for Burkholderia Species. J. Vis. Exp. (80), e50730, doi:10.3791/50730 (2013).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

细菌种的细胞内蛋白水平的调查是重要的,以了解疾病引起这些微生物的致病机制。在这里,我们描述了从洋葱伯克霍尔德物种蛋白提取用玻璃珠在磷酸盐缓冲盐水乙二胺四乙酸和苯甲基磺酰氟的存在基于机械裂解的过程。这种方法可以用于不同的伯克霍尔德杆菌物种,不同的生长条件,并且很可能适用于其他细菌的蛋白质组学研究中使用。在蛋白质提取之后,一个二维(2-D)凝胶电泳蛋白质组技术进行说明,研究在这些生物体的蛋白质组全局变化。该方法包括蛋白质根据它们的等电点分子量的基础上,分离通过等电聚焦中的第一维度,随后分离通过丙烯酰胺凝胶电泳中的第二维度。分离的蛋白可视化是通过银染。

Introduction

伯克氏菌属包括超过62种,从众多的壁龛中分离革兰氏阴性有机体,它是分为两个主要集群1,2。第一组包括人类,动物和phytotrophic生物,大多数研究都集中在这个群体的致病物种,由于其重要的临床意义。最致病的成员是B。杆菌B。单孢菌 (它们分别引起鼻疽和鼻疽)3,4和机会致病菌5(洋葱伯克霍尔德杆菌复合物,基底细胞癌的17中定义的物种),这引起疾病囊性纤维化(CF)和慢性肉芽肿病(CGD)1。第二组,有超过30种致病性,包括与植物或与环境有关的细菌,并且被认为是主机2具有潜在的好处。

许多并发症出现FR嗡细菌感染与伯克霍尔德杆菌属的致病成员,如因为抗生素使得难以在大多数情况下6-9根除固有或获得性耐药性的患者,该疾病的传播和治疗失败的病原体的传播。因此,获得的基础,建立细菌感染更清楚的了解,是造成这些疾病的生物治疗是至关重要的。为了深入了解建立感染,因此需要对与发病有关的细菌成分深入调查。研究集中于伯克霍尔德生物体的蛋白质组分析使用蛋白质组学方法描述了被认为与细菌致病以及改变其蛋白质型材10-16蛋白质。

用超声处理并冷冻解冻循环中裂解缓冲液含有高浓度的蛋白质提取方法尿素entration,硫脲在用洗涤剂和两性电解质结合,在鼻疽蛋白质组学研究10-13得到了应用。虽然尿素是蛋白质变性非常有效,它可以建立平衡水溶液中与异氰酸铵,它可以与氨基酸基团反应,从而形成伪影(氨甲酰化反应)17。因此,建议以包括载体两性电解质,它作为氰酸酯清除剂,并避免温度超过37℃17。此外,为了防止裂解缓冲液与蛋白质定量的任何化学干扰,相同的裂解缓冲液,可用于生成标准曲线,以使样品和标准品具有相同的背景10。其他方法包括使用碱性缓冲液和洗涤剂用热潜伏期17,18,但这些条件可能会导致改变蛋白质和某些清洁剂不与公关兼容oteomics申请,除非后续的清洁剂去除步骤包括17,18。

经过适当的提取和定量,每个单独的蛋白质的全球蛋白表达可以使用蛋白组学方法,如二维(2-D)凝胶电泳进行研究。这种技术首先由O'Farell 19所述,由在蛋白质根据它们的等电点在第二维分离通过等电聚焦中的第一维度,然后根据它们的分子量通过丙烯酰胺凝胶电泳。由于其分辨率和灵敏度,该技术是一种强大的工具,用于从复杂的生物源19,20的蛋白质的分析和检测。这种分离技术是目前可用的蛋白质为中心的方法与解决引起转录后修饰或蛋白水解处理的蛋白异构体的巨大优势。量的变化可以通过凝胶20的染色后比较相应的点的强度进行检测。然而,这种技术不适合于非常大的蛋白,膜蛋白,极碱性和酸性的或疏水的蛋白质的鉴定,并且是比较费力和耗时的技术20。新的多肽-中心的方法(非凝胶型),它们更健壮和目标变得可用,并且可以被用于通过差动稳定同位素标记方法,例如通过同位素编码的亲和标记的半胱氨酸标记(ICAT)21,和氨基的定量比较标签通过同位素标记相对和绝对定量(的iTRAQ)22。使用一个单一的蛋白质组学技术可能给信息不足,因此使用两个互补的蛋白质组学方法是必要的蛋白质组最充分评估的变化。然而,二维凝胶电泳被广泛使用,并可以常规运用的全titative在不同的生物体的几种蛋白质的表达。

在这里,我们描述了一个全细胞蛋白提取及二维电泳程序进行了调整和优化,从GE Healthcare的2-D电泳原理和方法手册80-6429-60AC 2004( 鼻疽www.amershambiosciences.com )。蛋白质进行提取使用珠打浆机用玻璃珠在PBS中含有5mM EDTA(乙二胺四乙酸)和1mM PMSF(苯甲基磺酰氟)存在下进行。这个程序允许以最小的降解蛋白质的量化和可修正蛋白质组学方法如前呈报15,23,24。 2-D凝胶电泳进行了用24个厘米长的固相pH梯度4-7和蛋白质根据其等电点分离。那么蛋白质根据其molec分离ular重量通过SDS-聚丙烯酰胺凝胶。此外,我们描述了用于可视化斑蛋白和银染方法,该方法是用于质谱分析兼容的银染方法。连同这些程序可以允许来自伯克霍尔德杆菌物种重要的蛋白质,可能参与发病的鉴定。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1。文化增长(天1 +2)

  1. 成长起始培养:1毫升卢里亚BERTANI(LB)肉汤在一个单元前15 ml管,在37℃旋转过夜。稀释过夜生长至OD 600为0.6。加1ml该稀释液在250毫升的锥形烧瓶中百毫升的LB肉汤中。在37℃,250rpm振荡16小时为固定相(SP),以更好地近似,在分批培养,感染的条件,并确保细菌的毒力因子固定相的信号因子如RPOS和法定人数的控制下传感,表示。可替代地,在早期的SP或中期或晚期对数生长期的细菌生长,可用于获得对细菌适应相位信息。
  2. 经过16小时测量外径600,确保文化已经用相同的条件下,相对于以前构造的生长曲线达到SP。

2。蛋白抽提(3天)

  1. 准备新鲜的0.1M苯甲基磺酰氟丙酮(PMSF,174.19克/摩尔)溶液溶解0.0174克PMSF('小心'PMSF是有毒和腐蚀性,使用面罩和手套)1毫升​​丙酮('小心'丙酮是有毒和易燃,使用面罩和手套)。
  2. 补PBS / EDTA / PMSF溶液:0.1毫升的0.1M的PMSF,0.1毫升0.5M的EDTA和9.8毫升的PBS。检查16小时培养物的OD大约是它应该在的SP。
  3. 需要35毫升细菌培养和转移到橡树岭离心管和离心的文化在4500×g的20分钟,在4°C。
  4. 除去上清液到一个废物容器及添加35毫升冷却的PBS和悬浮颗粒。再次离心机在4500×g的20分钟,在4°C。
  5. 在1ml冷的PBS去除上清,重悬。转移到无菌2毫升的Eppendorf离心1分钟就高,在微量离心机以14,000×g下在4℃下取下并丢弃上清液。
  6. 加入1 ml的PBS / EDTA / PMSF溶液,悬浮颗粒,并转移到2毫升的螺丝帽筒(带O型圈)含约0.5毫升的玻璃珠(预消毒)。加重悬沉淀物,以含有玻璃珠和珠抨击他们在4℃下在冷室1分钟的管子。做到这一点三倍,把样品在冰上每个庆典之后。
  7. 离心机在14,000 xg下在微量离心1分钟。去除上清,把它放在一个无菌5毫升聚苯乙烯管。
  8. 为了提高产量加1毫升的PBS / EDTA / PMSF解决同一管内再次包含玻璃珠。珠bash中的管在4℃下1分钟。难道这2个把样品置于冰上AF之三是bash。离心机以14,000×g离心对离心机一分钟,除去上清液,并加入到上清液从步骤2.8。用1ml注射器和一个0.20微米的过滤器将上清液从聚苯乙烯管中,以一个新的无菌2毫升Eppendorf管中。
  9. 在这一点上,样品应测定蛋白质的量,使用Pierce MicroBCA蛋白提取试剂盒和200微克等分应直到需要在被冷冻-80℃。

3。样品制备(4天)

  1. 准备25毫升补液溶液(8M尿素,2%CHAPS,2%IPG缓冲液,0.002%溴酚蓝),并存储于2.5ml等分试样在-20℃下加7毫克二硫苏糖醇(DTT,154.2克/ mol)的使用到的补液原液2.5ml的等分试样之前。
  2. 使用2-D清理试剂盒,在450微升的补液原液在步骤3.1制得的最终再悬浮过程解冻的样品从步骤2.10。

4。第一维等电聚焦(IEF)(4天)

在本节中的所有步骤都使用的Ettan IGPhor IEF系统。

  1. 成立了IPG第一维条:用带清洁液清洁带人,然后洗用Milli-Q水,离开倒置晾干。每个样品分配到胶条固定号。
  2. ( - )从年底从第二个更广阔的领域补液步加载示例。用干净的镊子拔胶条出来的包装。取出的胶条保护层。行去除粗糙面朝下在一个缓慢的,滑动相处的方式湿带( - )端(+)结束。
  3. 把电极的顶部和下胶条湿面纸用无菌水,以防止烧坏。冲洗镊子轮用纯化水和乙醇在两者之间。除去所有气泡,薄覆盖与矿物油,以防止干燥出局。线机上的胶条持有人。
  4. 运行12小时,在20℃下rehyd配给,1小时,在200伏,1小时,在500伏,1小时,在1,000 V,0.5小时,在4000伏,12小时,在8000 V,在300 V和24小时保持可以取出在这个时候。
  5. IEF结束后,建议进行第二向SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳中,除IPG胶条被冷冻在-80℃,在保鲜膜涂布有矿物油以供将来分析。或者,为了避免点条纹由于DTT接触,它可能包括的IPG胶条在第二维之前,使用包含碘乙酰胺的缓冲液的第二平衡步骤。

5。第二维SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(第5天)

在本节中的所有步骤都使用的Ettan DALTsix电泳仪。

  1. 组装胶万向轮装置,彻底清洗所有部件,并确保凝胶施法者等级和灰色橡胶结合的润滑与硅凝胶。把黑擦ber的三角挡块在底部。然后,交替地将分离器和玻璃板具有较短板的玻璃面向前方。确保分离器的背面和正面。填充剩余空间用填料(约5张),所以顶部是平的。将前面板与在外面的红色尖端。使用夹收紧两边,然后拧紧螺丝底部。
  2. 制备凝胶放入297.3 Duracryl毫升,('小心'Duracryl是有毒的使用面罩和手套),147毫升的Tris缓冲液中的1.5M pH值8.8,和143.3毫升的Milli-Q水与含有真空尖的烧瓶中一搅拌棒。把盖在上面,并与所述真空20分钟,混合溶液在适中的速度。真空是用来脱气溶液中。使过硫酸铵溶液(APS 2,218.8克/摩尔)新鲜的10%的0.2克APS的2毫升Milli-Q水中。
  3. 加入凝胶混合物的凝胶脚轮:当真空完成后加入6毫升10%十二烷基硫酸钠(SDS,228.38克/ mol)的向烧瓶的侧避免将更多的气泡在溶液中。添加黄芪多糖,搅拌均匀,加0.25 ml N,N,N',N'-四甲基乙二胺(TEMED,116.20克/摩尔)('小心'TEMED易燃使用面罩和手套),并搅拌均匀。
  4. 通过在该装置的后面插入一个漏斗倒入凝胶混合物为凝胶脚轮。倾至短板下方一英寸。加入1.5毫升的水饱和的正丁醇中的凝胶的顶部,并包顶部与保鲜膜,以避免脱水。等待1小时,以确保完全聚合。
  5. 检查凝胶:当凝胶做(检查瓶),通过一个接收器拆解凝胶施法者。检查凝胶的完整性,同时冲洗玻璃板用温水,不要让水进入板。倒出丁醇和水冲洗凝胶的顶部两次摆脱丁醇。再次装满水的上方,让如果凝胶不使用马上坐下。
  6. 准备带:从准备平衡缓冲液冷冻机(6M尿素,75mM的Tris-盐酸pH值8.8,29.9%的SDS,0.002%溴酚蓝)。这可以在-20℃下是预先制备并储存在10毫升的等分试样将0.1g DTT的一个10毫升平衡缓冲液溶液。一个管可用于2 IPG胶条。将带材面朝下的凝胶上的缓冲液,并让坐30分钟。记住这到底是哪个。
  7. 制备电泳单元(2-D分离装置)加入4.5升的1X电泳缓冲液(25mM Tris碱[121.1克/摩尔],192 mM的甘氨酸[288.38克/摩尔],和0.1%w / v的SDS [288.38克/摩尔]),以运行罐。这个缓冲区可用于多达3倍。转动电泳单元上。检查水冷机水位和水填满它,如果它是低。开启机器后,按模式来检查指定的温度,这应该是10°C。
  8. 使1升2×电泳缓冲液和1升运行缓冲液为1x,并将其存储在4℃下使琼脂糖密封液:重量0.25克agaros的e和溶解在50毫升的1X电泳缓冲液。脉冲,每次15秒。
  9. 设立电泳单元:使用镊子取出每个条带,并用干净纸巾去除多余的缓冲区两侧。请勿触摸条。倒出的水凝胶的顶部,并与1X运行缓冲线凝胶顶部。使用干净的镊子,然后将条上的长板的顶部,与凝胶一面朝向自己。添加1X缓冲条带润滑它。滑条进一步降低使用胶条。除去所有气泡在带钢和凝胶之间。
  10. 加琼脂糖密封解决方案,以条带的顶部将其密封。重复该带的其余部分。将装有凝胶成凝胶支架玻璃板和下部进入凝胶罐中。确保在外部腔室中的1X缓冲水平是在把上室上之前指定的底线。
  11. 将框架上缓冲液槽上的玻璃板的顶部,并确保它是所有的娃Ÿ向下按下底部向下。使用一个漏斗,并添加2倍运行缓冲液到上部腔室到中间线。使用一个漏斗,并添加1X运行缓冲液到外室,直到它到达最上面一行。将盖在上面,然后打开电泳单元和电源组上。
  12. 运行过夜,52 V,96个毫安,5 W.检查当前是要通过寻找在银线靠近顶部的气泡。运行该凝胶直到领先行是1厘米的底部。
  13. 蛋白质也可被使用的设备和从其他公司如BIORAD或霍弗试剂进行分析,根据制造商的说明进行操作。

6。该凝胶银染的凝胶可视化(5-6天)

  1. 准备一个修复溶液1(800毫升乙醇中,加入200ml乙酸,和1000毫升在通风柜的Milli-Q水倒入一个塑料桶)。解决好6凝胶。把所有的机器关闭,并采取了电泳单元和PU的整个中间部分LL它在下沉。也把白色的立在水槽。拉出含有2倍的运行缓冲液的顶部托盘。
  2. 拆卸设备,并从玻璃板取出凝胶进入修复液1。凝胶可以通过切断角时,它们被从玻璃板上取下被识别,弯道的数量削减相应于在连铸机的凝胶顺序。
  3. 放置在容器上的摇杆修复溶液和凝胶剂为至少1小时至过夜,在4℃下
  4. 转移的凝胶固定溶液2(20毫升50%的戊二醛溶液,600ml乙醇中,加入5g连四硫酸钾(302.46克/摩尔),136克乙酸钠(82.03克/摩尔)和Milli-Q水的2000毫升)和发生在一个摇杆1小时。
  5. 洗凝胶4倍,每次15分钟的Milli-Q水。
  6. 30分钟或长达48小时染色的凝胶在硝酸银溶液(4克硝酸银(169.87克/摩尔),加入500μl甲醛,和Milli-Q水的2000毫升)中。
  7. 1啫喱分在Milli-Q水。
  8. 传送到显影剂溶液(60克碳酸钠(105.99克/摩尔),300微升的甲醛,15毫克的硫代硫酸钠(158.11克/摩尔)和Milli-Q水至2,000毫升)5-30分钟,直到凝胶染色。
  9. 将凝胶在终止液(100克Tris碱(121.14克/摩尔),40毫升乙酸中,并Milli-Q水至2000毫升)10分钟。
  10. 进行存储,将凝胶转移到甘油溶液(40mL甘油或400毫升如果长期贮存需要,和1600毫升Milli-Q水)搅拌10分钟,然后用凝胶干燥器中干燥。
  11. 凝胶可以使用成像系统如扫描仪/密度计,利用光透射或凝胶成像仪拍下染色后进行可视化。图像分析软件,如从BIORAD PDQuest 2-D分析可以被用于从样品中获得的蛋白的定量和定性信息。

7。凝胶银染的质谱分析

  • 固定凝胶在50%甲醇,5%乙酸1小时。
  • 在50%的甲醇,至少10分钟,以洗涤过夜。
  • 在蒸馏水中3次10分钟清洗。
  • 敏化用0.02%的硫代硫酸钠(158.11克/ mol)的2×15分钟。
  • 洗涤3次中急冻蒸馏水3×10分钟。
  • 在4℃下至少20分钟至1小时以冷冻1%硝酸银溶液(169.87克/摩尔)浸没凝胶
  • 洗涤2×1分钟,用蒸馏水冲洗。改变托盘/桶。
  • 发展0.04%的甲醛在2%无水碳酸钠(105.99克/摩尔),丢弃时,它会变成黄色比较快,有三个批次,并准备改变每5分钟。
  • 在5%乙酸洗涤,然后存储在1%乙酸。
  • 冲洗1.5ml离心管(持有拿到现货切口)与USP级乙醇和风干后才能使用。
  • 干净的镊子,刀片和表面用100%的甲醇。
  • 喷雾手套和表面用乙醇。
  • 消费点在流罩或洁净空气区域。点也可以切除使用自动点铣刀。
  • 把它们放在Eppendorf管,船舶在冰或保持冰箱。
  • Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Representative Results

    的蛋白图谱从相同的细菌培养物中提取的两种不同的场合比较分析表明,类似的模式绑扎表示成功的蛋白提取。提取的分子量的蛋白质从10-150 kDa的范围。 的全细胞蛋白提取自鼻疽multivorans 1所示代表考马斯亮蓝染色凝胶(密件抄送的成员)的LB或酵母/甘露醇(YEM)肉汤和种植临床分离株从固定相收获。

    对于二维凝胶电泳分析,200微克来自类鼻疽杆菌总蛋白是使用( 图2)。由于这种病菌是由美国疾病控制和预防25确认为B型生物战剂,蛋白质,编写程序,进行了生物安全3级实验室围堵,因此与标准作业程序。蛋白重悬浮于补液并施加到一个24厘米长的固相pH梯度4-7和蛋白质根据它们的等电点(pI)分离。然后条带被放置在SDS-聚丙烯酰胺凝胶和蛋白质根据它们的分子量(MW)的分离。随后,凝胶进行银染的蛋白点的可视化。结果表明,超过500个蛋白质点,可以通过质谱法进行个体识别的丰度。

    图1
    图1。 洋葱伯克霍尔德multivorans的总蛋白质谱的菌株。蛋白的SDS-PAGE分析在从D-2214和D-2094菌株在LB或酵母/甘露醇(YEM)肉汤在两个不同的场合的固定相萃取(1和​​2)。 4微克蛋白被装在一个12.5%的凝胶的每个车道和彩色无线TH考马斯亮蓝。泳道M,蛋白质标志物。

    图2
    图2。 类鼻疽杆菌 1234B二维凝胶电泳分析分离。代表银染2-D胶表现蛋白质分离的等电点4〜7范围的地带。全细胞蛋白提取物(200微克)在固定相用于分离在15%SDS-PAGE凝胶。

    Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Discussion

    一种蛋白质的制备方法进行了描述,可以提取大多数伯克霍尔德杆菌蛋白具有良好的再现性。这表现在从使用相同的细菌培养在LB或YEM肉汤生长, 如图1中不同的日子进行的两个独立的制剂获得相同的蛋白质谱。提取是有效的在液体培养基中生长的细菌,但是我们没有测试这个方法对于生长在平板上的细菌。也用这种方法作进一步鉴定蛋白质利用蛋白质组学工具;使用2-D凝胶电泳和同位素标记相对和绝对定量(的iTRAQ)蛋白质组技术15,23,24我们的小组已经成功地研究蛋白质组的变化。对于后者,蛋白质被萃取到含0.5M EDTA的PBS中,以避免PMSF的用的iTRAQ实验15的任何干扰的缓冲器。

    重要的是要对物方舟,在蛋白质的提取工艺和2-D凝胶电泳,所有的步骤都要进行4°C或使用冰桶,以减少蛋白质分解,以及使用技巧堵塞和磨损丁腈手套,并涵盖所有寒冷的条件下皮肤,以防止任何斑点角蛋白污染削减了后续的质谱鉴定。当进行蛋白质提取,但同样重要的是考虑该PMSF具有短的半衰期时在水溶液中,根据制造商,因此,0.1mM的储备溶液在丙酮中,应在使用前立即进行。或者,其它的丝氨酸酶抑制剂或蛋白酶抑制剂是更可溶且稳定的,并且毒性较低的都可以使用,尽管我们没有测试它们在我们的实验中。

    在此过程中使用的裂解缓冲液中不含尿素,以提取两水溶液(细胞质)的蛋白质和较少可溶性PROT这对增溶重要一型,包括一些膜蛋白17。但是,对于第一维等电聚焦(该协议的步骤3)样品制备过程中,将样品重新悬浮于含有尿素补液缓冲区。其他蛋白质组技术也涉及类似的待遇26。与补液步骤以下之前,似乎除去干扰物质或低分子量的杂质是用于高分辨率关键,我们建议使用2-D清洁试剂盒各蛋白样品中作为结果得到改善。以前装载样品第一维等电聚焦分离,确保有吸墨纸条持有人的权利大小的条状准备,因为这是有问题的削减在无菌的时尚大小合适当场(本步骤3.4协议)。

    运行的2-D SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳之前,有必要确保该凝胶百分比适合所关注的预期大小(12.5%百分比凝胶可以解决蛋白质在14-100 kDa的范围内)。后第二维凝胶电泳完成后,蛋白质的可视化可以通过考马斯蓝或银染色来实现,后者是染色,检出限更敏感是低至0.1纳克/蛋白质/点20。可视化与银染蛋白质点都适合用质谱进一步分析。然而,重要的是要提一提,银染溶液不应含有戊二醛,因为这剂与蛋白质交联,因此它不与进一步的质谱分析20兼容。可替换地,检测和定量差异表达的蛋白质,可以使用另一种凝胶为基础的方法,例如二维差分在凝胶电泳(2D-DIGE)连同自动软件。这种方法采用了独特的荧光标记( 例如,循环3,5和2),用于标记的样品和一个通用内部标准公关IOR到第二维电泳克服,在一定程度上,变异的2-D电泳27和再现性的缺点。此外,凝胶可与SyproRuby,这是一种有机金属钌螯合物污点设计用于蛋白组学应用的第二维后进行染色。它可以检测到蛋白质点具有相似的灵敏度是银染,但比考马斯蓝更高的灵敏度。染色后的凝胶可以拍到与激光扫描仪或透射28。

    总之,这部影片描述了一个全细胞细菌蛋白质的提取方法和二维凝胶电泳的方法,可以让全球变化研究中的伯克霍尔德物种的蛋白质组。

    Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Disclosures

    作者宣称,他们有没有竞争的财务权益。

    Acknowledgements

    这项工作是由英属哥伦比亚大学(至BV)的一个助学金,并从健康研究囊性纤维化加拿大和加拿大学院(存保计划)资助。我们感谢韦涌协议的前期准备工作。

    Materials

    Name Company Catalog Number Comments
    Reagents
    Phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) Sigma P7626 Toxic, corrosive
    Acetone Fisher A18-1 Flammable
    PBS Buffer Bioscience R028
    Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Fisher BP118-500 toxic
    Glass beads (0.1 mm) BioSpec Products 11079101
    Nalgene Oak Ridge Centrifuge tubes, polycarbonate (50 ml) VWR 21009-342
    MicroBCA protein extraction kit Pierce 23235
    Microcentrifuge Tubes 2.0 ml conical Screw cap Tubes with Cap and O-Ring Fisher 02-681-375
    2-D Clean-Up kit GE Healthcare 80-6484-51
    Urea Invitrogen 15505-050 Irritant
    CHAPS Amersham Biosciences 17-1314-01
    Dithiothreitol (DTT) MPBiomedical, LCC 856126 Irritant
    Immobiline DryStrips pH 4-7 24 cm Amersham Biosciences 176002-46
    Duracryl Proteomic Solutions 80-0148 Very toxic, carcinogen
    Ammonium persulfate Fisher BP179-100 Flammable, toxic, corrosive
    N,N,N’,N’-tetramethylethylenediamine (TEMED) Invitrogen 15524-010 Flammable
    Sodium dodecyl sulfate (SDS) Fisher BP166-500 Acute toxicity, flammable
    Agarose Invitrogen 15510-027
    Ethanol Fisher HC1100-1GL Flammable, toxic
    Acetic acid Fisher A491-212 Flammable, corrosive
    Glutaraldehyde Fisher G151-1 Very toxic, corrosive, dangerous for the environment
    Potassium tetrathionate Sigma P2926 Irritant
    Sodium acetate EM Science 7510
    Silver nitrate Sigma 209139 Corrosive, dangerous for the environment
    Formaldehyde Sigma 252549 Toxic
    Sodium thiosulfate Sigma S7026
    Tris Base EMD 9230
    Glycine MPBiomedical, LCC 808831
    Glycerol MPBiomedical, LCC 800688
    Methanol Fisher A412-4 Flammable, toxic, health hazard
    Sodium carbonate anhydrous EMD SX0400-3 Toxic
    Mineral oil ACROS 415080010
    Equipment
    JA-20 ultracentrifuge rotor Beckman Coulter 334831
    Mini Beadbeater Biospec Products 3110BX
    Ettan IPGphor II Isoelectric Focusing System and accessories GE Healthcare 80-6505-03 www.amershambiosciences.com
    Ettan DALT Large Vertical electrophoresis system GE Healthcare 80-6485-27 www.amershambiosciences.com

    DOWNLOAD MATERIALS LIST

    References

    1. Drevinek, P., Mahenthiralingam, E. Burkholderia cenocepacia in cystic fibrosis: epidemiology and molecular mechanisms of virulence. Clin. Microbiol. Infect. 16, 821-830 (2010).
    2. Suarez-Moreno, Z. R., et al. Common Features of Environmental and Potentially Beneficial Plant-Associated Burkholderia. Microb. Ecol. (2011).
    3. Wiersinga, W. J., van der Poll, T., White, N. J., Day, N. P., Peacock, S. J. Melioidosis: insights into the pathogenicity of Burkholderia pseudomallei. Nat. Rev. Microbiol. 4, 272-282 (2006).
    4. White, N. J. Melioidosis. Lancet. 361, 1715-1722 (2003).
    5. Mahenthiralingam, E., Urban, T. A., Goldberg, J. B. The multifarious, multireplicon Burkholderia cepacia complex. Nat. Rev. Microbiol. 3, 144-156 (2005).
    6. Speert, D. P., Henry, D., Vandamme, P., Corey, M., Mahenthiralingam, E. Epidemiology of Burkholderia cepacia complex in patients with cystic fibrosis. Canada. Emerg. Infect. Dis. 8, 181-187 (2002).
    7. Dance, D. A., Wuthiekanun, V., Chaowagul, W., White, N. J. The antimicrobial susceptibility of Pseudomonas pseudomallei. Emergence of resistance in vitro and during treatment. J. Antimicrob. Chemother. 24, 295-309 (1989).
    8. Thibault, F. M., Hernandez, E., Vidal, D. R., Girardet, M., Cavallo, J. D. Antibiotic susceptibility of 65 isolates of Burkholderia pseudomallei and Burkholderia mallei to 35 antimicrobial agents. J. Antimicrob. Chemother. 54, 1134-1138 (2004).
    9. Govan, J. R. W., et al. Evidence for transmission of Pseudomonas cepacia by social contact in cystic fibrosis. Lancet. 342, 15-19 (1993).
    10. Thongboonkerd, V., et al. Altered proteome in Burkholderia pseudomallei rpoE operon knockout mutant: insights into mechanisms of rpoE operon in stress tolerance, survival, and virulence. J. Proteome. Res. 6, 1334-1341 (2007).
    11. Park, K. H., Lipuma, J. J., Lubman, D. M. Comparative proteomic analysis of B. cenocepacia using two-dimensional liquid separations coupled with mass spectrometry. Anal Chim. Acta. 592, 91-100 (2007).
    12. Wongtrakoongate, P., Mongkoldhumrongkul, N., Chaijan, S., Kamchonwongpaisan, S., Tungpradabkul, S. Comparative proteomic profiles and the potential markers between Burkholderia pseudomallei and Burkholderia thailandensis. Mol. Cell Probes. 21, 81-91 (2007).
    13. Harding, S. V., et al. The identification of surface proteins of Burkholderia pseudomallei. Vaccine. 25, 2664-2672 (2007).
    14. Madeira, A., Santos, P. M., Coutinho, C. P., Pinto-de-Oliveira, A., Sa-Correia, I. Quantitative proteomics (2-D DIGE) reveals molecular strategies employed by Burkholderia cenocepacia to adapt to the airways of cystic fibrosis patients under antimicrobial therapy. Proteomics. 11, 1313-1328 (2011).
    15. Zlosnik, J. E. A., Speert, D. P. The Role of Mucoidy in Virulence of Bacteria from the Burkholderia cepacia Complex: A Systematic Proteomic and Transcriptomic Analysis. J. Infect. Dis. 202, 770-781 (2010).
    16. Riedel, K., Carranza, P., Gehrig, P., Potthast, F., Eberl, L. Towards the proteome of Burkholderia cenocepacia H111: setting up a 2-DE reference map. Proteomics. 6, 207-216 (2006).
    17. Weiss, W., Gorg, A. Sample solublization buffers for two-dimensional electrophoresis. Methods Mol. Biol. 424, 35-42 (2008).
    18. von der Haar, T. Optimized protein extraction for quantitative proteomics of yeasts. PLoS One. 2, e1078 (2007).
    19. O'Farrell, P. H. High resolution two-dimensional electrophoresis of proteins. J. Biol. Chem. 250, 4007-4021 (1975).
    20. Gorg, A., Weiss, W., Dunn, M. J. Current two-dimensional electrophoresis technology for proteomics. Proteomics. 4, 3665-3685 (2004).
    21. Gygi, S. P., Rist, B., Griffin, T. J., Eng, J., Aebersold, R. Proteome analysis of low-abundance proteins using multidimensional chromatography and isotope-coded affinity tags. J. Proteome Res. 1, 47-54 (2002).
    22. Ross, P. L., et al. Multiplexed protein quantitation in Saccharomyces cerevisiae using amine-reactive isobaric tagging reagents. Mol. Cell Proteomics. 3, 1154-1169 (2004).
    23. Velapatiño, B., Limmathurotsakul, D., Peacock, S. J., Speert, D. P. Identification of differentially expressed proteins from Burkholderia pseudomallei isolated during primary and relapsing melioidosis. Microbes. Infect. 14, 335-340 (2012).
    24. Chung, J. W., Speert, D. P. Proteomic identification and characterization of bacterial factors associated with Burkholderia cenocepacia survival in a murine host. Microbiology. 153, 206-214 (2007).
    25. Rotz, L. D., Khan, A. S., Lillibridge, S. R., Ostroff, S. M., Hughes, J. M. Public health assessment of potential biological terrorism agents. Emerg. Infect. Dis. 8, 225-230 (2002).
    26. Thon, J. N., et al. Comprehensive proteomic analysis of protein changes during platelet storage requires complementary proteomic approaches. Transfusion. 48, 425-435 (2008).
    27. Wu, T. In New and Emerging Proteomic Techniques. Methods Mol. Biol. 328, 71-95 (2006).
    28. Lopez, M. F., et al. A comparison of silver stain and SYPRO Ruby Protein Gel Stain with respect to protein detection in two-dimensional gels and identification by peptide mass profiling. Electrophoresis. 21, 3673-3683 (2000).

    Comments

    0 Comments


      Post a Question / Comment / Request

      You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

      Usage Statistics