Седалищный нерв наручников Модель нейропатической боли у мышей

Medicine
 

Summary

Невропатическая боль является следствием поражения или заболевания, влияющего на систему соматосенсорной. "Манжеты модель" невропатической боли у мышей состоит из имплантации полиэтиленовой манжеты вокруг главной ветви седалищного нерва. Механическая аллодиния проверяется с использованием фон Фрея нитей.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Yalcin, I., Megat, S., Barthas, F., Waltisperger, E., Kremer, M., Salvat, E., Barrot, M. The Sciatic Nerve Cuffing Model of Neuropathic Pain in Mice. J. Vis. Exp. (89), e51608, doi:10.3791/51608 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Невропатическая боль возникает как следствие поражения или заболевания, влияющего на систему соматосенсорной. Результаты этого синдрома от неадекватных изменений в поврежденных сенсорных нейронов и вдоль всей ноцицептивной пути внутри центральной нервной системы. Это, как правило хроническим и сложной для лечения. С целью изучения невропатической боли и ее лечения, различные модели были разработаны в грызунов. Эти модели являются производными от известных этиологии, воспроизводя повреждений периферических нервов, центральные травм и метаболические-, инфекционные или химиотерапии, связанных невропатии. Мышиные модели травмы периферического нерва часто нацелены на седалищный нерв, который легко получить доступ и позволяет ноцицептивные тесты на заднюю лапу. Эти модели основаны на сжатие и / или секции. Здесь подробная процедура хирургии для "манжеты модели" нейропатической боли у мышей описан. В этой модели, манжеты из ПЭ-20 полиэтиленовой трубкой стандартизированной длины (2 мм) является в одностороннем порядке яmplanted вокруг главной ветви седалищного нерва. Это индуцирует длительную механическую аллодинии, то есть., Ноцицептивной реакции к нормально не-ноцицептивной стимул, который может быть оценена с использованием фон Фрея нитей. Помимо подробных процедур по хирургии и тестирования, также обсуждаются интерес этой модели для изучения нейропатической механизма боли, для изучения нейропатической боли сенсорные и anxiodepressive аспекты, и для изучения нейропатическими лечения боли.

Introduction

Невропатическая боль, как правило, хроническое и возникает как следствие поражения или заболевания, влияющего на систему соматосенсорной. Неадаптивные изменения в поврежденных сенсорных нейронов и вдоль всей ноцицептивной пути в пределах центральной нервной системы участвовать в этом сложном синдрома. Различные модели были разработаны на грызунах для изучения нейропатической боли и ее лечения 1-3.

На основе известных этиологии, моделей нейропатической боли направлены на имитируя полинейропатии наблюдается при сахарном диабете, травмы периферических нервов, центральных травм, тройничного нерва, в невропатии подряд к химиотерапии, пост-герпетической невралгии, и т.д. Различные модели травмы периферических нервов у грызунов сосредоточиться на седалищный нерв. Эти модели зависит от сжатия и / или части этого нерва. Действительно, седалищный нерв дает относительную легкий хирургии и позволяет для испытаний, основанных на лапу отмены рефлексов. МоДЕЛЬЗ сжатия хронического нервного включают, например: хронический травмы сужения (CCI) 4,5, седалищный нерв наручников 6-9, частичное седалищного нерва перевязка (PSL) 10, спинной перевязки нерва (SNL) 11 или общая малоберцовый нерв перевязки 12. Модели называются "пощадил повреждения нерва" (SNI) также широко используются. Они состоят из плотной перевязки и аксотомии двух из трех конечных ветвей седалищного нерва, в то время как третья ветвь остается неизменным 13-15. Различные модели невропатической боли, которые нацелены на седалищный нерв, привести к хронической механической аллодинии (ноцицептивная ответ на нормально не ноцицептивной стимул) на поврежденной задней лапы.

Здесь подробная процедура хирургии для "манжеты модели" нейропатической боли у мышей описан. Она заключается в имплантации полиэтиленовой манжеты вокруг главной ветви седалищного нерва 6-9. Чтэ использование фон Фрея нитей также описывается. Эти нити позволит оценить механическую аллодинию который является длительный ноцицептивная симптом присутствует в этой модели.

Protocol

Протоколы были одобрены "Comite d'Ethique ан MATIERE d'экспериментов Animale де Страсбурге" (CREMEAS).

1. Исходные Измерение Paw Вывод порогов

  1. Разрешить мыши, чтобы приучить к объектам животного не менее 10 дней до 2 недель до начала процедуры тестирования.
  2. Приучить мышей к фон Фрей тестирования установки и в порядке, фон Фрея, которые описаны в разделе 4.
  3. До операции, оценивать пороги механические лапы отмены с фон Фрея нитей, как описано в разделе 4.3. Примечание: Повторите процедуру в отдельные дни до, по крайней мере, три стабильные последовательные значения не будут получены для порогов отдергивания лапы.
  4. Назначьте мышей различных экспериментальных групп таким образом, чтобы эти группы не изначально отличаются для порогов отдергивания лапы.

2. Процедура Хирургия для манжеты имплантацияна

  1. Взвесьте животное. Примечание: Вес мыши тело должно быть более 20 г в течение процедуры введения манжеты, описанной ниже.
  2. Обезболить животное с внутрибрюшинной инъекцией 4 мл / кг смеси кетамина (17 мг / мл) и ксилазина (2,5 мг / мл) в 0,9% NaCl, который обеспечивает около 45 мин анестезии.
  3. Проверьте отсутствие лап рефлексов, зажимая в заднюю лапу с помощью пинцета и проверьте отсутствие глазных рефлексов, чтобы убедиться, что животное полностью под наркозом.
  4. Бритье правую ногу от колена до бедра с помощью аппарата для бритвы.
  5. Применить защитные очки жидкий гель для глаз с ватным тампоном.
  6. Место животное на левый бок и положите на правую заднюю конечность на подушечке и поддерживать правую заднюю конечность на подушку с помощью клейкой ленты.
  7. Лечить операционное поле хлоргексидином и 70% этанола, используя марлевый тампон или ватным тампоном.
  8. Найти бедренную кость указательный и сделатьразрез приблизительно 0,5 см, параллельно бедренной кости и примерно 1,5 мм кпереди от бедренной кости.
  9. Отделите мышцы, близкие к бедренной кости с двумя автоклавного палками. Примечания: Никогда не срезайте мышцы. Как правило, мышечные слои отделить легко, без кровотечений и седалищный нерв становится видимым. В случае кровотечения, использовать стерильную ватным тампоном, чтобы поглотить кровь.
  10. Вставьте две автоклавного палки ниже седалищного нерва, чтобы выставить свою основную ветку, и увлажняют нерв с помощью стерильного физиологического раствора (0,9% NaCl).
  11. Удерживая предварительно подготовленную стерильную 2 мм секцию разделенного PE-20 полиэтиленовой трубкой (манжеты), 0,38 мм ID / 1,09 мм Диаметр, с помощью заостренного стали палки и бульдожьего зажима.
    1. Вставьте заостренный стальной палкой в ​​манжету, которая приоткроет его.
    2. Использование манжеты боковое отверстие, вставьте бульдог на одном конце манжеты и параллельно манжеты. Поверните бульдог (180 °), так что она будет проводить манжету насторона, противоположная к боковым отверстием. Закройте бульдог и снимите острый стальной палкой. Примечание: Вращение осуществляется для обеспечения проведения-на манжете в оптимизированном позиции для вставки, бульдог зажим также помогает поддерживать манжету частично открыта. Модель и размер бульдог зажима являются критическими для этого этапа процедуры.
  12. Есть второй экспериментатор провести две палочки под нерва и осторожно отделить палочки для облегчения доступа к части седалищного нерва, который долго около 4 мм.
  13. Вставьте 2 мм манжету вокруг главной ветви седалищного нерва, начиная путем вставки часть манжеты, который дистальнее бульдоге вокруг части нерва, который является ближайшим к бедру.
  14. Закройте манжету мягко, оказывая давление на своих двух дистальных сторон с плоскогубцами, не сжимая или изменения формы трубки. Поверните манжету, чтобы она плотно закрыт.
  15. Шовный бритая слой кожи остроумиеч хирургические узлы.
  16. Место мыши на левый бок в чистом доме клетку. Держите его под инфракрасной лампой, пока мышь не бодрствует.
  17. Добавить дополнительную воду и поместите некоторые чау непосредственно в домашнюю клетку.

3. Процедура Хирургия для Sham управления

  1. Применить ту же процедуру хирургии, как описано выше, начиная с шага 2.1 к шагу 2.9, а затем следуйте с шагом 2,15 до 2,17. Для управления фиктивных, опустить шаги с 2,10 до 2,14, что единственной заботой вставки манжеты.

4. Фон Фрея Тестирование

  1. Поместите мышей в четких индивидуальных ящиков (7 см х 9 см х 7 см) с отверстиями, на возвышенности перфорированную пластину гладкой нержавеющей стали (1 м х 50 см, 5 перфорации мм окружности с 2,5 мм между перфорации границ). Примечание: До 12 мышей можно одновременно протестирован на этой установке. Оперированных животных могут быть проверены на следующий день после операции. Тем не менее, 3 дня восстановления рекомендуется уменьшить после операции гиперчувствительность наблюдается вфиктивных управления.
  2. Разрешить животные приучить в течение 15 мин до тестирования.
  3. Применение нитей фон Фрея в подошвенную поверхность задней лапы каждой из серии восходящих сил. Примечания: Нити фон Фрей пластиковые волосы калиброванных диаметров. Они имеют длину 5 см и крепятся на ручных аппликаторов. Скорость применения нитей, степень изгиба и продолжительности применения могут влиять на пороговых значений, получаемой с этим тестом 3. В соответствии с настоящим процедуры у мышей, нити, которые наиболее часто используемые 0,16, 0,4, 0,6, 1, 1,4, 2, 4, 6, 8 и 10 г.
    1. Применить выбранную нить в подошвенную поверхность левой лапы, пока нить не только изгибается. Процедуру повторить 4:57 раза подряд, а затем сделать то же самое для правой лапы. После того, как нить была протестирована на обеих лапах, станет испытанием для следующего животное. Примечания: Избегайте лап боковые границы, которые могут быть более чувствительны. Ожидаемый ответ лапаВывод, вдруг дрогнув или лапа лизать. Рассмотрим реакцию как положительным, если по крайней мере три ожидаемые ответы наблюдаются из пяти испытаний. Данный лапа всегда проверяется три раза, но четвертый и пятый испытания сделано только если 1 или 2 ответа (ы) был (были) наблюдается в течение первых трех тестов. В мышей C57BL/6J, начать заранее хирургии тесты с 1,4 г нити. После операции, начать испытания с 0,4 г нити. Если положительный ответ наблюдается с первой испытанной нити, проверить нить нижнего силу (вместо более) на шаге 4.3.2.
    2. Применить же нити в следующих животных в соответствии с процедурой 4.3.1. После того как все животные испытывают, снова начать на первом животного со следующей нити большей силой. Повторите эту процедуру, пока все мыши не дал положительного ответа. Примечания: Test каждого животного, пока два последовательных нити не дают положительный ответ. Рассмотрим значение грамм нижней нити, которая дала положительный ответ, как лапы остроумияhdrawal порог для этого животного.

Representative Results

Данные выражены как среднее ± SEM. Статистический анализ проводили с использованием многофакторной анализа дисперсии (ANOVA) или непарные т-тесты в соответствии с экспериментальной конструкции. Для этих анализов, после ложной и манжеты хирургии группы, а также солевой против медикаментозного лечения считались между группами факторов. При необходимости, повторные анализы измерения использовались для данных время курса. Сравнения пост-специальных проводились с использованием тест Дункана. Статистическая значимость была рассмотрена на р <0,05.

При использовании процедур, описанных выше, манжета имплантации приводит к ипсилатеральной аллодинии, как показано на рисунке 1. Как только мышь приучали к процедуре тестирования, значения порогов отдергивания лапы в тесте фон Фрея остаются стабильными с течением времени и являются не зависит от хирургического вмешательства по себе, как показано на Sham животных. Однако следует иметьотметил, что временный послеоперационный аллодинию обычно можно наблюдать в Шам мышей. Когда такой аллодинию присутствует, ответ лапа вывод возвращает к исходному уровню через несколько дней после операции. У мышей манжеты, ипсилатеральная аллодинию уже присутствует в первые дни после операции и сохраняется в течение более 2 месяцев (см. 9, и на рисунке 1; F8, 344 = 29,5, р <0,001). Манжета-индуцированной аллодиния остается на той же стороне в мышей C57BL/6J, когда оно измерено испытанием фон Фрея, как описано выше, но в других условиях наличие аллодинии на контралатеральной лапы можно наблюдать 8. Абсолютные значения для базовой линии, как правило, между 4 и 6 г в мышей C57BL/6J, но протокол испытания могут влиять на приведенные данные.

Трициклические антидепрессанты являются одними стационарного лечения первого ряда для нейропатической боли. В этой модели трициклический антидепрессант нортриптилин препарат (5 мг / кг, внутрибрюшинно, дважды в день) гelieves невропатической аллодинию примерно через 2 недели лечения, как показано на рисунке 2 (F7, 91 = 15,3, р <0,001; пост-Hoc: (CuffNor = Шам)> CuffSal при р <0,001 в дни 29 - 34). При этой дозе не острый анальгетик действие антидепрессанта не наблюдается 16,17. Чтобы имитировать прочного облегчение боли, которая присутствует у пациентов, принимающих такие препараты, мыши могут быть проверены перед утренним введения препарата, а не после. Такая процедура позволяет оценить длительный эффект загрунтованную предыдущими дней лечения. В этом случае, он требует от 1 до 2 недель лечения наблюдать прочного облегчение невропатической аллодинии. Когда лечение прерывается, рецидив, как правило, наблюдается в течение 3-х до 4 дней 18. Кроме некоторых антидепрессантов, gabapentinoids являются другие первого выбора лечения нейропатической боли. Габапентин имеет острую и переходные обезболивающее действие в этой модели 16, но он также показывает замедленную и долгота г прочного antiallodynic действие при тестировании животное каждый день перед введением лекарственного средства (фиг. 3, р <0,001). Это действие быстрее, чем с антидепрессантов.

Рисунок 1
Фигура 1. Механический пороги отдергивания лапы в манжете модели невропатической боли у мышей. Взрослых самцов мышей C57BL/6J приучали к процедуре фон Фрея до достижения стабильной базовой линии не было получено (базовый представлена ​​в точке 0 на графике). Оба лапы были испытаны. Мыши манжеты отображения ипсилатеральную механическую аллодинию как показал на пониженных порогов лапу денег (п = 10 на группу).

tp_upload/51608/51608fig2.jpg "/>
Рисунок 2. Задержка antiallodynic действие трициклическими антидепрессантами. После двух недель после операции, мыши получали внутрибрюшинную лечение два раза в день (утром и вечером) или с 0,9% NaCl или 5 мг / кг гидрохлорида нортриптилин (N = 5 или 6 на группу ). Тест фон Фрея было сделано перед утренним лечения. С помощью этой процедуры, с задержкой antiallodynic действие нортриптилина наблюдается, что требует около 12 дней лечения.

Рисунок 3
Рисунок 3. Antiallodynic действие gabapentinoid. После трех недель после операции, мыши получали внутрибрюшинную лечение два раза в день (утром и вечером) или с 0,9% NaCl или 10 мг / кг габапентин (п = 5 в группе). Тест фон Фрея было сделано перед утром леченияМент. С помощью этой процедуры, с задержкой и прочного antiallodynic действия габапентина наблюдается. Данные представлены перед началом лечения и в 6-й день лечения.

Discussion

Модель "манжеты" была первоначально разработана в крысах, чтобы получить стандартизированную и воспроизводимое хроническим повреждением сужения с имплантацией нескольких манжеты вокруг седалищного нерва 6. Затем он был изменен, чтобы имплантировать один манжету 7,8, хотя некоторые исследовательские группы по-прежнему использовать множественного ввода манжеты 19-22. Затем он был адаптирован к мышей 9,23, который открылся возможность использовать трансгенных животных. Манжета, как правило, длиной 2 мм, но другие длины также были использованы в крысах 22. Трубка полиэтилен зависит от вида: PE-20 у мышей 9 и PE-60 24,25 или PE-90 7,8,26,27 у крыс.

Механическая аллодиния измеряется с волосков фон Фрея. В этом тесте, абсолютные значения для порогов отдергивания лапы может зависеть от поверхности, на которой стоит животное 28 или от длительности нити изгиба 3, но эти факторы невлияет на обнаружение невропатической аллодинии.

Модель "манжеты" представляет интерес для изучения невротических механизмов боли. Он был использован для изучения морфологических изменений в миелиновых и немиелинизированных волокон 6,29 и функциональных изменений в сенсорных нейронах, первичных афферентов и нейронов спинного 19,21,22,30-35. Это позволило демонстрация того, что глиальные активации и центральный сдвиг в нейронной аниона градиента участвовать в изменениях в деятельности и в ответах спинномозговых ноцицептивных нейронов и в нейропатической аллодинией 24,36-38. Влияние рецепторов глутамата 7,39-41, опиоидных рецепторов 16,42-45 и никотиновых рецепторов 46 был также учился в этой модели.

Другой интерес модели является его реакция на современные методы лечения невропатической боли, то есть., Gabapentinoids и антидепрессанты. Похожие на клинических наблюдениях: gabapentinoids отображать какн острая кратковременное действие болеутоляющее при высокой дозе и с задержкой устойчивый снятия действие, которое наблюдается после нескольких дней лечения, трициклических антидепрессантов и селективного серотонина и норадреналина обратного захвата ингибиторы не имеют острой обезболивающий эффект на соответствующей дозы, но они показывают с задержкой устойчивый освобождении действие, которое требует от 1 до 2 недель лечения и селективное ингибитор обратного захвата серотонина флуоксетин является неэффективным 16. Модель, таким образом, уместно изучить молекулярный механизм, лежащий в основе этих методов лечения 16-18,44,45,47, которая может раскрыть новые терапевтические цели для тестирования у пациентов 48-51.

Наконец, модель также позволяет изучение anxiodepressive последствий нейропатической боли. Клинически эти последствия затрагивают около трети пациентов нейропатической боли, но доклинические менее изучены, чем сенсорные аспекты боли. В этой модели, зависит от времени развитие тревожности-как и депрессиейSIVE, как фенотипы присутствует 52 и соответствующий механизм Таким образом, можно решить.

Стандартизованные манжеты и процедуры в этой мыши модели невропатической боли приводят к низкой вариабельность для механической аллодинии. Возможность использования генетически модифицированных животных 17,18,44-47,52, продолжительную аллодинию, ответ на клинически используемых процедур и зависит от времени развития anxiodepressive симптомов делают эту модель подходит для изучения различных аспектов и Последствия нейропатической боли и ее лечения, которые уже принесли ценную информацию для этой области исследований.

Disclosures

Авторы заявляют, что они не имеют конкурирующие финансовые интересы.

Acknowledgments

Эта работа была поддержана Национальным центром де ла Научных Исследований (контракт UPR3212), Страсбургском университете и на NARSAD молодых исследователей Грант от Фонда исследований мозга и поведения (к IY). Расходы Публикация поддерживаются сети Neurex (Программа Интеррег IV Верхнего Рейна).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
PE-20 polyethylene tubing Harvard Apparatus PY2-59-8323 Splitted before surgery
Ketamine Centravet IMA004
Xylazine HCl Sigma X1251 Freshly prepared before surgery
Ocry-gel Centravet
Pliers FST 11003-12 52.5 mm straight
Bulldog clamp FST p130 18038-45
Perforated plate CTTM
von Frey filaments Bioseb NC-12775

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Colleoni, M., Sacerdote, P. Murine models of human neuropathic pain. Biochim. Biophys. Acta. 1802, 924-933 (2010).
  2. Jaggi, A. S., Jain, V., Singh, N. Animal models of neuropathic pain. Fundam. Clin. Pharmacol. 25, 1-28 (2011).
  3. Barrot, M. Tests and models of nociception and pain in rodents. Neuroscience. 211, 39-50 (2012).
  4. Bennett, G. J., Xie, Y. K. A peripheral mononeuropathy in rat that produces disorders of pain sensation like those seen in man. Pain. 33, 87-107 (1988).
  5. Austin, P. J., Wu, A., Moalem-Taylor, G. Chronic constriction of the sciatic nerve and pain hypersensitivity testing in rats. J. Vis. Exp. (61), (2012).
  6. Mosconi, T., Kruger, L. Fixed-diameter polyethylene cuffs applied to the rat sciatic nerve induce a painful neuropathy: ultrastructural morphometric analysis of axonal alterations. Pain. 64, 37-57 (1996).
  7. Fisher, K., Fundytus, M. E., Cahill, C. M., Coderre, T. J. Intrathecal administration of the mGluR compound, (S)-4CPG, attenuates hyperalgesia and allodynia associated with sciatic nerve constriction injury in rats. Pain. 77, (1998).
  8. Pitcher, G. M., Ritchie, J., Henry, J. L. Nerve constriction in the rat: model of neuropathic, surgical and central. 83, 37-46 (1999).
  9. Benbouzid, M., et al. Sciatic nerve cuffing in mice: a model of sustained neuropathic pain. Eur. J. Pain. 12, 591-599 (2008).
  10. Seltzer, Z., Dubner, R., Shir, Y. A novel behavioral model of neuropathic pain disorders produced in rats by partial sciatic nerve injury. Pain. 43, 205-218 (1990).
  11. Kim, S. H., Chung, J. M. An experimental model for peripheral neuropathy produced by segmental spinal nerve ligation in the rat. Pain. 50, 355-363 (1992).
  12. Vadakkan, K. I., Jia, Y. H., Zhuo, M. A behavioral model of neuropathic pain induced by ligation of the common peroneal nerve in mice. J. Pain. 6, 747-756 (2005).
  13. Decosterd, I., Woolf, C. J. Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain. Pain. 87, 149-158 (2000).
  14. Shields, S. D., Eckert, W. A., Basbaum, A. I. Spared nerve injury model of neuropathic pain in the mouse: a behavioral and anatomic. 4, 465-470 (2003).
  15. Richner, M., Bjerrum, O. J., Nykjaer, A., Vaegter, C. B. The spared nerve injury (SNI) model of induced mechanical allodynia in mice. J. Vis. Exp. (54), (2011).
  16. Benbouzid, M., et al. Chronic, but not acute, tricyclic antidepressant treatment alleviates neuropathic allodynia after sciatic nerve cuffing in mice. Eur. J. Pain. 12, 1008-1017 (2008).
  17. Yalcin, I., et al. Β2-adrenoceptors are essential for desipramine, venlafaxine or reboxetine action in neuropathic pain. Neurobiol. Dis. 33, 386-394 (2009).
  18. Yalcin, I., et al. Β2-adrenoceptors are critical for antidepressant treatment of neuropathic pain. Ann. Neurol. 65, 218-225 (2009).
  19. Balasubramanyan, S., Stemkowski, P. L., Stebbing, M. J., Smith, P. A. Sciatic chronic constriction injury produces cell-type-specific changes in the electrophysiological properties of rat substantia gelatinosa neurons. J. Neurophysiol. 96, 579-590 (2006).
  20. Ikeda, T., et al. Effects of intrathecal administration of newer antidepressants on mechanical allodynia in rat models of neuropathic pain. Neurosci. Res. 63, 42-46 (2009).
  21. Thakor, D. K., et al. Increased peripheral nerve excitability and local NaV1.8 mRNA up-regulation in painful neuropathy. Mol. Pain. 5, 14 (2009).
  22. Zhu, Y. F., Wu, Q., Henry, J. L. Changes in functional properties of A-type but not C-type sensory neurons in vivo in a rat model of peripheral neuropathy. J. Pain Res. 5, 175-192 (2012).
  23. Cheng, H. Y., et al. DREAM is a critical transcriptional repressor for pain modulation. Cell. 108, 31-43 (2002).
  24. Zhang, J., De Koninck, Y. Spatial and temporal relationship between monocyte chemoattractant protein-1 expression and spinal glial activation following peripheral nerve injury. J. Neurochem. 97, 772-783 (2006).
  25. Beggs, S., Liu, X. J., Kwan, C., Salter, M. W. Peripheral nerve injury and TRPV1-expressing primary afferent C-fibers cause opening of the blood-brain. Mol. Pain. 6, 74 (2010).
  26. Vachon, P., Massé, R., Gibbs, B. F. Substance P and neurotensin are up-regulated in the lumbar spinal cord of animals with neuropathic. 68, 86-92 (2004).
  27. Aouad, M., Petit-Demoulière, N., Goumon, Y., Poisbeau, P. Etifoxine stimulates allopregnanolone synthesis in the spinal cord to produce analgesia in experimental mononeuropathy. Eur. J. Pain. 18, 258-268 (2014).
  28. Pitcher, G. M., Ritchie, J., Henry, J. L. Paw withdrawal threshold in the von Frey hair test is influenced by the surface on which the rat stands. J. Neuroci. Methods. 87, 185-193 (1999).
  29. Beaudry, F., Girard, C., Vachon, P. Early dexamethasone treatment after implantation of a sciatic-nerve cuff decreases the concentration of substance P in the lumbar spinal cord of rats with neuropathic. Can. J. Vet. Res. 71, 90-97 (2007).
  30. Pitcher, G. M., Henry, J. L. Cellular mechanisms of hyperalgesia and spontaneous pain in a spinalized rat model of peripheral neuropathy: changes in myelinated afferent inputs implicated. Eur. J. Neurosci. 12, 2006-2020 (2000).
  31. Pitcher, G. M., Henry, J. L. Nociceptive response to innocuous mechanical stimulation is mediated via myelinated afferents and NK-1 receptor activation in a rat model of neuropathic pain. Exp. Neurol. 186, 173-197 (2004).
  32. Pitcher, G. M., Henry, J. L. Governing role of primary afferent drive in increased excitation of spinal nociceptive neurons in a model of sciatic neuropathy. Exp. Neurol. 214, 219-228 (2008).
  33. Lu, V. S., et al. Brain-derived neurotrophic factor drives the changes in excitatory synaptic transmission in the rat superficial dorsal horn that follow sciatic nerve injury. J. Physiol. 587, 1013-1032 (2009).
  34. Ruangsri, S., Lin, A., Mulpuri, Y., Lee, K., Spigelman, I., Nishimura, I. Relationship of axonal voltage-gated sodium channel 1.8 (NaV1.8) mRNA accumulation to sciatic nerve injury-induced painful neuropathy in rats. J. Biol. Chem. 286, 39836-39847 (2011).
  35. Zhu, Y. F., Henry, J. L. Excitability of AΒ sensory neurons is altered in an animal model of peripheral neuropathy. BMC Neurosci. 13, 15 (2012).
  36. Coull, J. A., et al. Trans-synaptic shift in anion gradient in spinal lamina I neurons as a mechanism of neuropathic pain. Nature. 424, 938-942 (2003).
  37. Coull, J. A., et al. BDNF from microglia causes the shift in neuronal anion gradient underlying neuropathic pain. Nature. 438, 1017-1021 (2005).
  38. Keller, A. F., Beggs, S., Salter, M. W., De Koninck, Y. Transformation of the output of spinal lamina I neurons after nerve injury and microglia stimulation underlying neuropathic. 3, 27 (2007).
  39. Fundytus, M. E., Fisher, K., Dray, A., Henry, J. L., Coderre, T. J. In vivo antinociceptive activity of anti-rat mGluR1 and mGluR5 antibodies in rats. Neuroreport. 9, 731-735 (1998).
  40. Fundytus, M. E., et al. Knockdown of spinal metabotropic glutamate receptor 1 (mGluR(1)) alleviates pain and restores opioid efficacy after nerve injury in rats. Br. J. Pharmacol. 132, (1), 354-367 (2001).
  41. Coderre, T. J., Kumar, N., Lefebvre, C. D., Yu, J. S. Evidence that gabapentin reduces neuropathic pain by inhibiting the spinal release of glutamate. J. Neurochem. 94, 1131-1139 (2005).
  42. Kabli, N., Cahill, C. M. Anti-allodynic effects of peripheral delta opioid receptors in neuropathic pain. Pain. 127, 84-93 (2007).
  43. Holdridge, S. V., Cahill, C. M. Spinal administration of a delta opioid receptor agonist attenuates hyperalgesia and allodynia in a rat model of neuropathic pain. Eur. J. Pain. 11, 685-693 (2007).
  44. Benbouzid, M., et al. Δ-opioid receptors are critical for tricyclic antidepressant treatment of neuropathic allodynia. Biol. Psychiatry. 63, 633-636 (2008).
  45. Bohren, Y., et al. µ-opioid receptors are not necessary for nortriptyline treatment of neuropathic allodynia. Eur. J. Pain. 14, 700-704 (2010).
  46. Yalcin, I., et al. Nociceptive thresholds are controlled through spinal Β2-subunit-containing nicotinic acetylcholine receptors. Pain. 152, 2131-2137 (2011).
  47. Bohren, Y., et al. Antidepressants suppress neuropathic pain by a peripheral Β2-adrenoceptor mediated anti-TNFα mechanism. Neurobiol. Dis. 60, 39-50 (2013).
  48. Choucair-Jaafar, N., Yalcin, I., Rodeau, J. L., Waltisperger, E., Freund-Mercier, M. J., Barrot, M. Β2-adrenoceptor agonists alleviate neuropathic allodynia in mice after chronic treatment. Br. J. Pharmacol. 158, 1683-1694 (2009).
  49. Yalcin, I., et al. Chronic treatment with agonists of Β2-adrenergic receptors in neuropathic pain. Exp. Neurol. 221, 115-121 (2010).
  50. Cok, O. Y., Eker, H. E., Yalcin, I., Barrot, M., Aribogan, A. Is there a place for Β-mimetics in clinical management of neuropathic pain? Salbutamol therapy in six cases. Anesthesiology. 112, 1276-1279 (2010).
  51. Choucair-Jaafar, N., et al. Cardiovascular effects of chronic treatment with a Β2-adrenoceptor agonist relieving neuropathic pain in mice. Neuropharmacology. 61, 51-60 (2011).
  52. Yalcin, I., et al. A time-dependent history of mood disorders in a murine model of neuropathic pain. Biol. Psychiatry. 70, 946-953 (2011).

Comments

2 Comments

  1. Hi,
    nice video :-) Could you please explain how you split the cuff-tubes? Any tips and tricks?

    Regards,
    Mette

    Reply
    Posted by: Mette R.
    April 21, 2015 - 5:45 AM
  2. Hi,

    If I had to guess, I would say its pretty much straight forward, just shove a fine cutter into the tube, and cut it.

    However, i'm posting here so i would be notified in case they answer with a different method

    Regards,

    Tom

    Reply
    Posted by: Tom S.
    May 7, 2015 - 4:21 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Usage Statistics