הדמיה מפעיל T זיכרון תאים באוזן לאחר אינדוקציה של DTH המאמצת

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.

If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.

 

Summary

כאן אנו להדגים שיטה גרימת הקלטה ההתקדמות של הצתה מאוחרת (DTH) סוג רגישות יתר באוזן חולדה. זה ואחריו הפגנה של הכנת רקמות האוזן עכברוש הדמיה שני הפוטונים של התגובה מפעיל T / תא זיכרון.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Matheu, M. P., Beeton, C., Parker, I., Chandy, K. G., D. Cahalan, M. Imaging Effector Memory T cells in the Ear After Induction of Adoptive DTH. J. Vis. Exp. (18), e907, doi:10.3791/907 (2008).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

סוג של רגישות יתר מאוחרת (DTH) היא תגובה חיסונית שבה השחקנים העיקריים הם CCR7 - מפעיל / זיכרון לימפוציטים מסוג T. הנה, אנחנו מדגימים שיטה גרימת הקלטה התקדמות התגובה DTH באוזן חולדה. זה ואחריו הפגנה של הכנת רקמות האוזן עכברוש הדמיה שני הפוטונים של CCR7 - תגובה T זיכרון מפעיל / התא.

DTH המאמצת הוא המושרה על ידי הזרקת intraperitoneal של ה-GFP שכותרתו הסגלגל ספציפי CCR7 - קו T זיכרון מפעיל / תא (ביטון, סי ג'יי ניסויים דמיינו, גיליון 8). תאים מותר אז לאזן בחולדה עבור 48 שעות לפני לאתגר על ידי הזרקת אוזן אחת עם מי מלח (באוזן מלאה) והשני עם תערובת 01:01 של מצומדות הסגלגל ואת הביציות כדי טקסס אדום (הסגלגל-TR) כדי לאפשר ויזואליזציה של אנטיגן הצגת תאים תושב.

אנו מתארים שיטת הכנה רקמות שימושי הדמיה תנועתיות של תאים בתוך שכבת הדרמיס עמוק במהלך תגובה חיסונית, בשיתוף עם ויזואליזציה של סיבי קולגן על ידי דור הרמונית השני. רקמת האוזן הוא חתך לתוך 5 × 5 ריבועים מ"מ (מעט גדול יותר הוא טוב יותר) ו רכוב על גבי תלושי כיסוי הפלסטיק באמצעות Vetbond ™, אשר מובטחות אז באמצעות גריז סיליקון בחדר הדמיה superfused על ידי החמצן מבעבע בינוני בתרבית רקמה על 37 ° C .

Protocol

אינדוקציה של DTH המאמצת

נא עיין במאמר יופיטר: אינדוקציה וניטור של רגישות יתר מושהית-Type המאמצת בחולדות
כריסטין ביטון, ג'ורג' ק Chandy
המחלקה לפיזיולוגיה וביופיזיקה, אוניברסיטת קליפורניה, אירווין
J. ניסויים דמיינו, גיליון 8

הנה, יש לנו בפרוטוקול זה שונה באמצעות אנטיגן (Ovalbumin) מצומדות כדי טקסס האדום ביחס 1:1 עם אנטיגן ללא תווית, כדי לאפשר הדמיה של אנטיגן הצגת תאים phagocytic.

רקמות האוזן קציר

  1. להרדים את העכברוש בנקודת זמן הרצוי על ידי הנהלים המפורטים פרוטוקול שאושר שלך חיה. כאן, אנו משתמשים מנת יתר של סם ההרדמה, isoflurane. הדבר נעשה במיכל סגור הממוקם בתוך מכסה המנוע מאוורר היטב. ודא החיה מת על ידי עריפת ראש אחד על ידי פתיחת חלל החזה וחיתוך הלב.

  2. בעזרת מספריים גדולים להסיר את האוזן עם חתך בודד, קרוב אל הגוף של החיה ככל האפשר (איור 1).

    Figure_1.jpg
    באיור 1. הסרה של האוזן עכברוש

  3. מניחים את האוזן בצינור חרוטי 15 מ"ל המכיל 10 מ"ל של ~ קר כקרח 1x PBS או RPMI-1640. שמור את דגימות רקמה על הקרח עד שתהיה מוכן להכין את הרקמה הדמיה.

  4. רקמת תמונה בהקדם האפשרי, אנו מוצאים, כי, כי 1-2 שעות על הקרח אין כל השפעה על תנועתיות התא להבחין ברקמות בהשוואה לרקמות לקצור צילמו מיד.

רקמות הכנה הדמיה

הסרת שכבה I. עוריות ו Dermal

* הערה: שכבת הדרמיס עמוק חייב להישמר ללא פגע. אם נעשה בצורה נכונה בכלי דם גדולים יישאר ללא שינוי ונראה את הסחוס של האוזן לא יהיו חשופים. זוהי טכניקה קשה, במיוחד כאשר אין דלקת (בתנאי הבקרה) ו - כדאי להשתמש במיקרוסקופ לנתח.

  1. המקום הן רקמות התקשורת מהצינור חרוטי בתוך צלחת 10 ס"מ תרבות רקמות.

  2. בידיים עטויות כפפות להחזיק את האוזן בעדינות עכברוש בקצה האוזן (דיסטלי) עם הצד הגבי של האוזן כלפי מעלה (איור 2).

    Figure_2.jpg
    איור 2. פרווה חתוך את האוזן

  3. עם האגודל על החלק העליון של האוזן, רקמה יציב תוך שימוש קצה סגור דומון # 5 במספריים כדי להפריד את הדרמיס של הדרמיס עמוק. לחילופין, אם את הקצה של האוזן יש הסככה של העור / הדרמיס עמוק, זה יכול להיות תפס במלקחיים ומשכה בעדינות להפריד זה מן הרקמה שמתחת (איור 3).

    Figure_3.jpg
    איור 3. הסרת הדרמיס העליון

  4. ברגע בשטח קטן של עור שהופרד הרקמה הבסיסית, חזור על השלבים ההפרדה לחילופין באמצעות מספריים לחתוך בין שכבות הדרמיס מלקחיים כדי להסיר בעדינות לקלף את העור וחילצה.

  5. חשוף 5 x 5 מ"מ או שטח גדול יותר של רקמת האוזן כי הוא לפחות 3 מ"מ מאתר ההזרקה הראשוני של אנטיגן (איור 4).

    Figure_4.jpg
    איור 4. רקמות חשוף הדמיה

השנייה. אבטחת רקמות לשלב הדמיה

  1. חותכים פיסת כיסוי פלסטיק לגודל מעט גדול יותר רקמה מוכנה.

  2. מורחים שכבה דקה של 3M Vetbond ™ רקמות בטוח דבק על פני השקופית.

  3. תפוס את הפינה של הרקמה מוכן (שבו אתה לא צפויות התמונה), להסיר מן התקשורת, להספיג את הצד התחתון של הרקמה על הנייר עדשה או Kym לנגב להסיר התקשורת עודף.

  4. לגעת בקצה של הרקמה לשקופית דבק מכוסה (מרפא Vetbond מיד על רקמת רטוב). למתוח בעדינות את הרקמות בצורה שטוחה, בקצה השני היה האחרון לגעת השקופית (איור 5)

    Figure_5.jpg
    איור 5. הר רקמות כדי לכסות להחליק

  5. Cure ™ Vetbond על ידי היפוך רקמת מדגם / שקופיות טובלים אותו למאגר של מדיה כגון כי רקמות השקופיות הפנים למטה בערך בזווית של 45 מעלות. אחזקות רקמת במהופך בזווית מסייעת במניעת דבק עודף בריפוי על פני רקמת חשוף. דבק על פני השטח של הרקמה תחסום את הלייזר (איור 6).

    Figure_6.jpg
    איור 6. Cure vetbond רקמות gluדואר על ידי טבילה בתקשורת

    הערה: צעדים 2-5 עלול לקחת מעט אימון הורים. נסה להתאמן עם פיסות רקמות או מושלך נוסף לפני שתנסה בפעם הראשונה.

  6. תמרחי כמות קטנה של שמן סיליקון על גבי החלק התחתון של השקופית.

  7. מניחים את החלק בתא זלוף. ודא כי המדיה זלוף זורם, 37 ° C ו מחומצן לפני הוספת רקמה. לחץ בעדינות על הקצוות של השקופית יצירת חסימה עם גריז סיליקון בין החלק התחתון של החדר זלוף ואת פליטת כיסוי הפלסטיק.

ג. שני הפוטונים הדמיה

  1. באמצעות אור בהיר שדה המשודר, להתמקד העליון של הרקמה. כבו כל האורות.

  2. הפעל את הלייזר, PMTs כפי שנדרש על ידי המערכת רב פוטון מיקרוסקופ.

  3. דור הרמונית השני (SHG) ב מאוד מסודרים חלבונים סיביים (קולגן שרירן) מייצר אות באורך גל חצי לייזר עירור. אנו משתמשים עירור ב 900 ננומטר, המוביל SHG ב 450 ננומטר, אשר ניתן דמיינו באמצעות ערוץ "כחול" של המיקרוסקופ. SHG דור הוא שאינו ליניארי (שני פוטונים) תהליך, ובכך מספק אופטי "חתך" אפקט דומה לזה של עירור שני פוטונים של הקרינה. שיא היעילות של SHG מתרחשת כאשר הסיבים הם בניצב לייזר, בעוד הסיבים הפועלות במקביל לא יהיה דמיינו 1.

  4. אתר השטח הדמיה טובה עם הרבה תאים, הגדר באזור הרכישה כזה שלך כי הרוב המכריע של התאים במרכז ולהתחיל הדמיה. הערה: תגובות DTH, בתאי T מחלחל תאים אחרים נמצאים לעתים קרובות להיות מרוכזים יחדיו בעוד באזורים אחרים ללא חדירה לתאי 2. לכן, זה עשוי לקחת קצת זמן לחפש את הרקמה כדי למצוא את שטח התמונה הטובה ביותר.

  5. בדיקת כדאיות התא על ידי הערכת מהירות התא הקוטביות במהלך ההדמיה. השתמש כוח לייזר הנמוך ביותר המספק תמונה באיכות מקובל על מנת להבטיח מינימלי צילום נזק.

  6. החלפה לקראת רקמה חדשה לפי הצורך.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

References

  1. Koo, G. C., et al. Blockade of the voltage-gated potassium channel Kv1.3 inhibits immune responses in vivo. J Immunol. 158, 5120-5128 (1997).
  2. Gaga, M., Frew, A. J., Varney, V. A., Kay, A. B. Eosinophil activation and T lymphocyte infiltration in allergen-induced late phase skin reactions and classical delayed-type hypersensitivity. J Immunol. 147, 816-822 (1991).
  3. Flugel, A., Odoardi, F., Nosov, M., Kawakami, N. Autoaggressive effector T cells in the course of experimental autoimmune encephalomyelitis visualized in the light of two-photon microscopy. J Neuroimmunol. 191, 86-97 (2007).
  4. Kawakami, N., et al. Live imaging of effector cell trafficking and autoantigen recognition within the unfolding autoimmune encephalomyelitis lesion. J Exp Med. 201, 1805-1814 (2005).
  5. Miller, M. J., Wei, S. H., Parker, I., Cahalan, M. D. Two-photon imaging of lymphocyte motility and antigen response in intact lymph node. Science. 296, 1869-1873 (2002).
  6. Matheu, M. P. B., A, C. G. arcia, Chi, V., Rangaraju, S., Safrina, O., Monaghan, K., Uemura, M. I., Li, D., Pal, S., Monuki, E., Flugel, A., Pennington, M. W., Parker, I., Chandy, G. K., Calahan, M. D. In Situ Imaging of Effector/Memory T Cells During DTH and Suppression by Kv1.3 Channel Block. Immunity. In Press (2008).

Comments

6 Comments

  1. Hello. That was a great explanation for adoptive transfer and the techniques associated with that. In our laboratory, we are trying to employ DTH mouse model but we are using footpad, instead of an ear as it was shown that ear is less sensitive to linked suppression that footpad (W. J. Burlingham et. al.) We just acquired the same micrometer (thickness gauge) but our reading are very inconsistent. I was wondering if you ever tried footpad and could share some methods/hints to get stable/reproducible measurements.  Thanks, Vyacheslav Palchevskiy, Ph.D.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    November 3, 2008 - 10:27 PM
  2. Dear Vyacheslav, we have done a few trials in the footpad and have also had difficulties getting consistent results. I think it is because this area contains more soft tissue than the ear. One thing that may help: make sure your injections are very consistent in terms of amount and location (including depth). We have found that the depth of injection can considerably change the amount of inflammation and the number of T cells in the tissue. This is not a problem in the ear as you can’t really go too deep there. We always take at least 6 serial measurements for each ear or paw and then calculate a mean to try and get rid of the variation. The more variation we have, the more measurements we take of each ear or paw. Hope this help! Christine

    Reply
    Posted by: Christine B.
    November 11, 2008 - 4:52 PM
  3. We are in agreement  that the mouse footpad presents technical problems, even for routine histology. We use footpad for adoptive transfer of human PBMC because this site seems more sensitive for detecting regulation; however if Vyacheslav only wants to study effector response the mouse ear works fine. Your imaging system looks very appealing . We will try in ear first, then later in footpad. Thanks for this very nice 'webinar'. Cheers--Will Burlingham, UW-Madison, WI

    Reply
    Posted by: Anonymous
    December 5, 2008 - 3:41 PM
  4. Christine, I see you are using an Olympus ²0x dipping lens--is your ²photon system breadboard or a commercial Olympus? Right after you focus the objective into the ear tissue, the video switchs to the fluorescence time lapse.  Do you cover your sample/microscope or is your room very very dark.  Are you using non-descanned detectors?  Reason I am asking is on my ²004 BioRad MP system I have to cover the sample, monitors etc in order to use the nondesanned detectors.  It is hard for me to try these studies as I am also on an inverted system.  What wavelength are you using? Lance Rodenkirch UW

    Reply
    Posted by: Anonymous
    December 10, 2008 - 5:13 PM
  5. Hi Lance, This is Melanie. We use a custom breadboard for our two photon scan head system, the detailed plans for our custom system are on the Parker Laboratory (UC Irvine) website. We both keep the room dark and cover our microscope and PMT detectors with black-out curtain to reduce noise from stray light. In order to manipulate the sample after this we work "blind" with our hands under the black-out curtain. Our PMT detectors are also mounted inside sealed aluminum box. To reduce stray light from the monitors from affecting the sample we have them at an angle facing slightly away from where the microscope and PMTs are, but we do not cover them. To visualize collagen and GFP at the same time we use between 890 and 9²0nM. 9²0nM is typically the wavelength we used. I hope this helps. Do check the Parker Lab website for more details on the system. Best of luck with your experiments! Melanie  

    Reply
    Posted by: Melanie M.
    January 20, 2009 - 11:29 AM
  6. Great demo. We can employ this to our Imm. Lab. for the medical students. Can we acquire reagents from you girls and try it out here in Mackay Medical College, Taiwan.

    Reply
    Posted by: Nan Chi C.
    April 20, 2011 - 5:46 PM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Usage Statistics