Summary

Brug SecM Arrest Sequence som et redskab til at isolere ribo bundne polypeptider

Published: June 19, 2012
doi:

Summary

Vi beskriver her en teknik, der nu rutinemæssigt anvendes til at isolere stabilt bundet ribosom vordende kæde-komplekser (RNC'er). Denne teknik udnytter den erkendelse, at en 17 aminosyre langt SecM "arrest sekvens" kan standse translation forlængelse i en prokaryot (<em> E. coli</em>) System, når det indsættes i (eller fusioneret til C-terminus) af praktisk taget hvilket som helst protein.

Abstract

Omfattende forskning har givet rigelige beviser tyder på, at proteinfoldning i cellen er en co-translationel proces 1-5. Men den nøjagtige vej at polypeptidkæde følger i løbet af co-translationel folde for at opnå den funktionelle form er stadig en gåde. For at forstå denne proces og til at bestemme den nøjagtige konformationen af ​​de co-translationale foldning mellemprodukter, er det vigtigt at udvikle teknikker, der tillader isolering af RNC'er bærer nascente kæder af forudbestemte størrelser, så de yderligere strukturel analyse.

SecM (sekretion monitor) er et 170 aminosyre E. coli-protein, der regulerer ekspressionen af den nedstrøms SecA (sekretion kørsel) ATPase i secM-SecA operon 6. Nakatogawa og Ito oprindeligt fundet, at en 17 aminosyre lange sekvens (150-FSTPVWISQA QGIRA G P-166) i den C-terminale region af SecM proteinet er tilstrækkeligt til atforårsage blokering af SecM forlængelse ved Gly165, hvorved der frembringes peptidyl-glycyl-tRNA stabilt bundet til det ribosomale P-site 7-9. Vigtigere, blev det konstateret, at denne 17 aminosyrer lange sekvens kan fusioneres til den C-terminale ende af praktisk talt alle fuld længde og / eller trunkeret protein således tillader fremstillingen af RNC'er bærer nascente kæder forudbestemte størrelser 7. Således, når det er fusioneret eller indsættes i målproteinet, SecM blokering sekvens frembringer standsning af polypeptidet kædeforlængelse og genererer stabile RNC'er både in vivo i E. E. coli celler og in vitro i et celle-frit system. Saccharosegradientcentrifugering yderligere anvendes til at isolere RNC'er.

De isolerede RNC'er kan anvendes til at analysere strukturelle og funktionelle træk ved de co-translationelle foldning mellemprodukter. For nylig er denne teknik blevet anvendt til at opnå indsigt i strukturen af adskillige ribosom bundne nascente kæder 10,11. Her beskrives isoleringen af bovine gamma-B crystallin RNC'er fusioneret til SecM og genereret i et in vitro translationssystem.

Protocol

1. DNA-template Fremstilling og in vitro-transskription Genet af interesse klones i enhver T7 og / eller f.eks SP6-promotoren baseret plasmid. Til opnåelse RNC'er af interesse, er C-terminalen af målpolypeptidet forlænget ved tilføjelse arrestationen inducerende sekvens SecM FXXXXWIXXXXGIRAGP 7. For at sikre, at polypeptidfragmentet af interesse vil ekstrudere af den ribosomale tunnelen, den C-terminale del af målproteinet skal udvides med mindst 30 aminosyrer 12-14. En…

Discussion

For reproducerbare resultater, og koncentration af de komponenter, der anvendes til in vitro transkription og translation er kritiske. Vi har anvendt kommercielt tilgængeligt in vitro transkriptions-og translationselementer ekstrakter og de ​​giver en effektiv og reproducerbare resultater, hvis den håndteres forsigtigt. Kvaliteten af mRNA kan påvirke translation, så er det af yderste vigtighed for at teste integriteten af mRNA'en før brug for in vitro translation…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev finansieret af Human Frontier Science Program tilskud RGP0024.

Materials

Name of reagent/ Kit Company Catalogue number
MEGAscript T7 High yield Transcription Kit Ambion AM1333
RTS 100 E.coli HY Kit 5 Prime 2401100
Ribonuclease Inhibitor Invitrogen 15518012
Trans [35S]-Label MP Biomedicals 0151006
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter Unit Millipore UFC801008
Storage phosphor autoradiography GE Healthcare Typhoon 9410 variable mode imager
Density Gradient Fractionation Systems Teledyne Isco, Inc. ISCO Programmable Density Gradient System
Sucrose Gradient Centrifugation Beckman Coulter Optima L-90 K Preparative Ultracentrifuge

References

  1. Fedorov, A. N., Baldwin, T. O. Cotranslational protein folding. J. Biol. Chem. 272, 32715-32718 (1997).
  2. Hardesty, B., Kramer, G. Folding of a nascent peptide on the ribosome. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 66, 41-66 (2001).
  3. Kramer, G., Boehringer, D., Ban, N., Bukau, B. The ribosome as a platform for co-translational processing, folding and targeting of newly synthesized proteins. Nat. Struct. Mol. Biol. 16, 589-597 (2009).
  4. Komar, A. A. A pause for thought along the co-translational folding pathway. Trends Biochem. Sci. 34, 16-24 (2009).
  5. Cabrita, L. D., Dobson, C. M., Christodoulou, J. Protein folding on the ribosome. Curr. Opin. Struct. Biol. 20, 33-45 (2010).
  6. Oliver, D., Norman, J., Sarker, S. Regulation of Escherichia coli secA by cellular protein secretion proficiency requires an intact gene X signal sequence and an active translocon. J. Bacteriol. 180, 5240-5242 (1998).
  7. Nakatogawa, H., Ito, K. The ribosomal exit tunnel functions as a discriminating gate. Cell. 108, 629-636 (2002).
  8. Nakatogawa, H., Ito, K. Secretion monitor, SecM, undergoes self-translation arrest in the cytosol. Mol. Cell. 7, 185-192 .
  9. Muto, H., Nakatogawa, H., Ito, K. Genetically encoded but non polypeptide prolyl-tRNA functions in the A site for SecM-mediated ribosomal stall. Mol. Cell. 22, 545-552 (2006).
  10. Cabrita, L. D., Hsu, S. T., Launay, H., Dobson, C. M., Christodoulou, J. Probing ribosome-nascent chain complexes produced in vivo by NMR spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 22239-22244 (2009).
  11. Eichmann, C., Preissler, S., Riek, R., Deuerling, E. Cotranslational structure acquisition of nascent polypeptides monitored by NMR spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 107, 9111-9116 (2010).
  12. Kolb, V. A., Makeyev, E. V., Spirin, A. S. Enzymatic activity of the ribosome-bound nascent polypeptide. FEBS Lett. 378, 166-170 (1996).
  13. Ban, N., Nissen, P., Hansen, J., Moore, P. B. The complete atomic structure of the large ribosomal subunit at 2.4 Å resolution. Science. 289, 905-920 (2000).
  14. Voss, N. R., Gerstein, M., Steitz, T. A., Moore, P. B. The geometry of the ribosomal polypeptide exit tunnel. J. Mol. Biol. 360, 893-906 (2006).
  15. Schägger, H., von Jagow, G. Tricine-sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis for the separation of proteins in the range from 1 to 100 kDa. Anal. Biochem. 166, 368-379 (1987).
  16. Komar, A. A., Kommer, A., Krasheninnikov, I. A., Spirin, A. S. Cotranslational folding of globin. J. Biol. Chem. 272, 10646-10651 (1997).
  17. Keiler, K. C., Waller, P. R., Sauer, R. T. Role of a peptide tagging system in degradation of proteins synthesized from damaged messenger RNA. Science. 271, 990-993 (1996).
  18. Evans, M. S., Ugrinov, K. G., Frese, M. A., Clark, P. L. Homogeneous stalled ribosome nascent chain complexes produced in vivo or in vitro. Nat. Methods. 2, 757-762 (2005).

Play Video

Cite This Article
Jha, S. S., Komar, A. A. Using SecM Arrest Sequence as a Tool to Isolate Ribosome Bound Polypeptides. J. Vis. Exp. (64), e4027, doi:10.3791/4027 (2012).

View Video