Núcleos están aislados cardíaca a través de la sedimentación y la densidad de immunolabeled con anticuerpos contra el material pericentriolar 1 (PCM-1) para identificar y clasificar los núcleos de cardiomiocitos mediante citometría de flujo.
Identificación de los núcleos de cardiomiocitos ha sido un desafío en secciones de tejido, como la mayoría de las estrategias se basan sólo en proteínas marcadoras frente al citoplasma de 1. Los eventos raros en los miocitos cardíacos, como la proliferación y la apoptosis requiere una identificación precisa de los núcleos de los miocitos cardíacos para analizar la renovación celular en la homeostasis y en condiciones patológicas 2. En este caso, se proporciona un método para aislar núcleos de cardiomiocitos de post mortem del tejido por la sedimentación y la densidad de inmunomarcación con anticuerpos contra el material pericentriolar 1 (PCM-1) y la clasificación posterior de citometría de flujo. Esta estrategia permite un análisis de alto rendimiento y el aislamiento con la ventaja de trabajar igualmente bien en tejido fresco y material de archivo congelado. Esto hace posible el estudio de material ya reunido en biobancos. Esta técnica es aplicable y probado en una amplia gama de especies y adecuado para múltiples aplicaciones posteriores tales como el carbono-14 contactos 3, célula-CYculo 4 de análisis, la visualización de los análogos de timidina (por ejemplo, BrdU y UDI) 4, el análisis de transcriptoma y epigenéticos.
La identificación precisa de los núcleos de cardiomiocitos es crucial para el análisis de los procesos regenerativos en el miocardio 2,3. Las técnicas convencionales para aislar cardiomiocitos a partir de tejido fresco se basan principalmente en la digestión enzimática de proteínas de matriz extracelular y la posterior purificación de las células intersticiales por centrifugación a baja velocidad. La purificación adicional de cardiomiocitos vivos a partir de células madre embrionarias (CES) puede …
The authors have nothing to disclose.
Nos gustaría agradecer Marcelo Toro para la asistencia con la citometría de flujo. Este estudio fue apoyado por el sueco de corazón y pulmón Fundación, la Comisión Europea el 7 º PM "CardioCell", Consejo Sueco de Investigación, seguros AFA y ALF. OB fue apoyado por la Deutsche Forschungsgemeinschaft.
1. Lysis Buffer |
Name of the reagent |
0.32 M sucrose |
10 mM Tris-HCl (pH = 8) |
5 mM CaCl2 |
5 mM magnesium acetate |
2.0 mM EDTA |
0.5 mM EGTA |
1 mM DTT |
2. Sucrose buffer |
Name of the reagent |
2.1 M sucrose |
10 mM Tris-HCl (pH = 8) |
5 mM magnesium acetate |
1 mM DTT |
3. Nuclei storage buffer (NSB plus) |
Name of the reagent |
0.44 M sucrose |
10 mM Tris-HCl (pH = 7.2) |
70 mM KCl |
10 mM MgCl2 |
1.5 mM spermine |
Reagents and Equipment | Company |
Isotype rabbit IgG- ChIP Grade, #ab37415 | Abcam |
Rabbit anti-PCM-1 antibody, #HPA023374 | Atlas Antibodies |
Donkey sec. antibody, anti-rabbit Alexa 488 Fluor, #A-21206 or equivalent sec. fluorescent antibody | Life Technologies |
DRAQ5 | Biostatus |
cell strainers 30 μm, 70 μm and 100 μm | BD Biosciences |
Glass douncer (40 ml) and pestle “L” | VWR (Wheaton Industries Inc.) |
T-25 Ultra-Turrax Homogenizer | IKA Germany |
Dispersing tool S25 N-18 G | IKA Germany |
Beckman Avanti Centrifuge | Beckman Coulter |
Falcon Tubes 15 ml and 50 ml | VWR |
Beckman Centrifuge Tubes #363664 | Beckman Coulter |
JS13.1 free swinging rotor | Beckman Coulter |
Influx cytometer | Beckman Coulter |
Tube Rotator | VWR |