Summary

Analisi delle embrionali e larvali Zebrafish scheletriche miofibre da Preparazioni dissociata

Published: November 13, 2013
doi:

Summary

Zebrafish sono un sistema emergente per modellare disturbi umani del muscolo scheletrico. Descriviamo un metodo veloce ed efficace per isolare miofibre muscolari scheletriche da zebrafish embrionale e larvale. Questo metodo fornisce una preparazione ad alta densità miofibre adatto per lo studio della morfologia singola fibra muscolare scheletrica, proteina localizzazione subcellulare, e fisiologia muscolare.

Abstract

Lo zebrafish ha dimostrato di essere un sistema valido modello per esplorare la funzione del muscolo scheletrico e per lo studio delle malattie muscolari umane. Nonostante i numerosi vantaggi offerti da analisi in vivo del muscolo scheletrico nel zebrafish, visualizzando l'ambiente proteina complesso e finemente strutturato responsabile per la funzione muscolare, soprattutto in embrioni interi, può essere problematico. Questo ostacolo deriva dalla piccola dimensione del muscolo scheletrico zebrafish (60 micron) e le dimensioni ancora più piccolo del sarcomero. Qui descriviamo e dimostrare un metodo semplice e rapido per isolare miofibre scheletriche da embrioni di zebrafish e larve. Abbiamo anche i protocolli che illustrano le tecniche di preparazione post utili per analizzare la struttura e la funzione muscolare. In particolare, abbiamo dettaglio la successiva localizzazione immunocitochimica delle proteine ​​dei muscoli scheletrici e l'analisi qualitativa del rilascio del calcio stimolato via live Calcio Imaging cellulare. Nel complesso, questo videoarticolo fornisce un metodo straight-forward ed efficace per l'isolamento e la caratterizzazione di miofibre scheletriche zebrafish, una tecnica che prevede un condotto per la miriade di successivi studi di struttura e funzione muscolare.

Introduction

Il muscolo scheletrico è un tessuto altamente specializzato responsabile della generazione delle forze necessarie motilità contrattili. La contrazione è iniziata attraverso un processo noto come eccitazione-contrazione (EC) di accoppiamento che converte i segnali elettrici di rilascio di calcio dai depositi intracellulari 1,2. Rilascio di calcio intracellulare attiva il sarcomero di accorciare e generare forza. I numerosi componenti specifici della macchina molecolare responsabile mediare la trasmissione neuromuscolare svincolo 3, accoppiamento EC 4,5, e actina-miosina contrazioni dipendenti 6 continuano ad essere oggetto continuo di intensa ricerca. Inoltre, le proteine ​​che stabilizzano la membrana del muscolo durante la contrazione 7,8 e che mediano la segnalazione tra il myofiber e la matrice extracellulare 7,9 sono stati identificati e studiati nei minimi dettagli.

Mutazioni in un certo numero di geni importanti per una struttura muscolarefunzione nd sono stati identificati come causa di malattie del muscolo scheletrici umani ( http://www.musclegenetable.org/ ). Queste malattie, classificati in linea di massima come miopatie scheletriche e distrofie muscolari basati su caratteristiche cliniche e istopatologiche, sono associati a debolezza muscolare, invalidità permanente e 10,11 mortalità precoce. Lo zebrafish ha dimostrato di essere un sistema eccezionale per la modellazione e lo studio delle malattie del muscolo scheletrici umani 8,12,13. E 'stato impiegato per validare nuove mutazioni del gene 8, definire nuovi aspetti della malattia fisiopatologia 14,15, e identificare nuovi approcci terapeutici 15,16. La potenza della zebrafish per studio delle malattie muscolo umano riferisce al maggior numero di figli, il rapido sviluppo della struttura muscolare e funzione, la chiarezza ottica dell'embrione zebrafish, e la facilità di manipolazione genetica e farmacologica della zebra sviluppopesce 17.

Noi e altri 12,18,19 recentemente sviluppato una tecnica semplice per l'isolamento rapido ed efficiente miofibre dal zebrafish sviluppo. Questo metodo ha permesso l'esame di miofibre in maggior dettaglio che può essere fornita da intera analisi embrione. La tecnica è stata sfruttata per la caratterizzazione della proteina localizzazione subcellulare 20 nonché per l'identificazione di importanti caratteristiche istopatologiche come parte di studi di validazione in modelli di malattia di nuova concezione 21. Inoltre, miofibre isolate possono inoltre essere utilizzati per l'imaging dal vivo e per gli studi elettrofisiologici 22, tecniche che consentono l'interrogatorio di aspetti fondamentali della funzione muscolare. Il protocollo specifico per l'isolamento miofibre, insieme a due esempi di esperimenti successivi analitiche, è dettagliata nelle parti rimanenti di questo manoscritto.

Protocol

1. Preparazione del Poli-L-lisina Rivestito Coprivetrini (Tempo: 1 ora) Lamelle di rivestimento consente una rapida decantazione myofiber e l'adesione. Ciò può essere eseguita durante la fase di dissociazione dell'isolamento miofibre (passo 2). Tagliare e posizionare Parafilm sul fondo di un piatto 60 millimetri Petri (di qualsiasi marca). Posizionare scivola vetro di copertura microscopio (diametro 12 mm) su parafilm in un piatto di coltura tissutale a 60 mm o…

Representative Results

Immunomarcatura fluorescente di miofibre (Figura 2) Immagini che mostrano atteso modello di marcatura fluorescente da myofibers immunostained dopo l'isolamento di successo e placcatura. Le miofibre sono stati etichettati sia con anti-recettore ryanodine (1:100) (Figura 2A) o anti-α-actinina (1:100) (Figura 2B) anticorpi, e rivelare rispettivamente immunocolorazione della triade e la Z-band. Anticorpi secondari utilizzati erano …

Discussion

Zebrafish sono un potente sistema modello vertebrato per studiare lo sviluppo muscolare e la funzione in vivo 25,27,28. Essi hanno anche emerso come un bene prezioso per la modellazione di malattie muscolari umane 14,15,20,29. Mentre i grandi passi avanti sono stati compiuti per promuovere l'uso e l'applicazione di zebrafish per lo studio della funzione muscolare e delle malattie del muscolo, vi è una necessità critica costante per sviluppare strumenti che consentano più approfo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori desiderano ringraziare i membri del laboratorio Dowling (Aaron Reifler, Trent Waugh, Angela Busta, e William Telfer), che hanno contribuito allo sviluppo della tecnica e alla produzione del manoscritto. Questo lavoro è stato finanziato dall'Istituto Taubman, il Dipartimento di Pediatria presso l'Università del Michigan, e in parte da sovvenzioni dal Distrofia Muscolare (JJD MDA186999) e il National Institutes of Health (JJD 1K08AR054835).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
24-well culture plate Corning 3524
10x PBS Invitrogen Gibco 70011
CO2 Independent medium Invitrogen Gibco 18045
Collagenase Type II Worthington Biochemical LS004186 Lot 41H12764
Collagenase Type IV Worthington Biochemical L5004188
8% Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 157-8
Methanol Sigma 322415
Triton X-100 Sigma X100
BSA Sigma A2153
Sheep serum Sigma S3772
Goat serum Sigma G9023
Glass coverslips Fischerbrand 12-545-82 12CIR-1D
Poly-L-Lysine Sigma P4707
Pronase Sigma P5147
40 μm Filter BD Biosciences 352340
70 μm Filter BD Biosciences 352350
Prolong Gold antifade reagent Invitrogen P36931
Anti-α-Actinin antibody Sigma A5044
Anti-RYR antibody Abcam 34C
Alexa Fluor antibody Invitrogen A-21425
TWEEN 20 Sigma P1379
60 mm Petri dish Fischerbrand 0875713A
Poly-L-Ornithine Sigma P4957
Microscope slide Fischerbrand 12-550-15
Caffeine Sigma C0750

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Horstick, E. J., Gibbs, E. M., Li, X., Davidson, A. E., Dowling, J. J. Analysis of Embryonic and Larval Zebrafish Skeletal Myofibers from Dissociated Preparations. J. Vis. Exp. (81), e50259, doi:10.3791/50259 (2013).

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