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Articolo metodologico

Analisi delle embrionali e larvali Zebrafish scheletriche miofibre da Preparazioni dissociata

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DOI:

10.3791/50259

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13 novembre 2013

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In questo articolo

Sommario

Zebrafish sono un sistema emergente per modellare disturbi umani del muscolo scheletrico. Descriviamo un metodo veloce ed efficace per isolare miofibre muscolari scheletriche da zebrafish embrionale e larvale. Questo metodo fornisce una preparazione ad alta densità miofibre adatto per lo studio della morfologia singola fibra muscolare scheletrica, proteina localizzazione subcellulare, e fisiologia muscolare.

Abstract

Lo zebrafish ha dimostrato di essere un sistema valido modello per esplorare la funzione del muscolo scheletrico e per lo studio delle malattie muscolari umane. Nonostante i numerosi vantaggi offerti da analisi in vivo del muscolo scheletrico nel zebrafish, visualizzando l'ambiente proteina complesso e finemente strutturato responsabile per la funzione muscolare, soprattutto in embrioni interi, può essere problematico. Questo ostacolo deriva dalla piccola dimensione del muscolo scheletrico zebrafish (60 micron) e le dimensioni ancora più piccolo del sarcomero. Qui descriviamo e dimostrare un metodo semplice e rapido per isolare miofibre scheletriche da embrioni di zebrafish e larve. Abbiamo anche i protocolli che illustrano le tecniche di preparazione post utili per analizzare la struttura e la funzione muscolare. In particolare, abbiamo dettaglio la successiva localizzazione immunocitochimica delle proteine ​​dei muscoli scheletrici e l'analisi qualitativa del rilascio del calcio stimolato via live Calcio Imaging cellulare. Nel complesso, questo videoarticolo fornisce un metodo straight-forward ed efficace per l'isolamento e la caratterizzazione di miofibre scheletriche zebrafish, una tecnica che prevede un condotto per la miriade di successivi studi di struttura e funzione muscolare.

Introduzione

Il muscolo scheletrico è un tessuto altamente specializzato responsabile della generazione delle forze necessarie motilità contrattili. La contrazione è iniziata attraverso un processo noto come eccitazione-contrazione (EC) di accoppiamento che converte i segnali elettrici di rilascio di calcio dai depositi intracellulari 1,2. Rilascio di calcio intracellulare attiva il sarcomero di accorciare e generare forza. I numerosi componenti specifici della macchina molecolare responsabile mediare la trasmissione neuromuscolare svincolo 3, accoppiamento EC 4,5, e actina-miosina contrazioni dipendenti 6 continuano ad essere oggetto c....

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Protocollo

1. Preparazione del Poli-L-lisina Rivestito Coprivetrini (Tempo: 1 ora)

Lamelle di rivestimento consente una rapida decantazione myofiber e l'adesione. Ciò può essere eseguita durante la fase di dissociazione dell'isolamento miofibre (passo 2).

  1. Tagliare e posizionare Parafilm sul fondo di un piatto 60 millimetri Petri (di qualsiasi marca).
  2. Posizionare scivola vetro di copertura microscopio (diametro 12 mm) su parafilm in un piatto di coltura tissutale a 60 mm o posizionare singolarmente in singoli pozzetti di piastre da 24 pozzetti.

Nota 1: Questi piccoli coprioggetto rotondi....

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Risultati

Immunomarcatura fluorescente di miofibre (Figura 2)

Immagini che mostrano atteso modello di marcatura fluorescente da myofibers immunostained dopo l'isolamento di successo e placcatura. Le miofibre sono stati etichettati sia con anti-recettore ryanodine (1:100) (Figura 2A) o anti-α-actinina (1:100) (Figura 2B) anticorpi, e rivelare rispettivamente immunocolorazione della triade e la Z-band. Anticorpi secondari utilizzati erano A.......

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Discussione

Zebrafish sono un potente sistema modello vertebrato per studiare lo sviluppo muscolare e la funzione in vivo 25,27,28. Essi hanno anche emerso come un bene prezioso per la modellazione di malattie muscolari umane 14,15,20,29. Mentre i grandi passi avanti sono stati compiuti per promuovere l'uso e l'applicazione di zebrafish per lo studio della funzione muscolare e delle malattie del muscolo, vi è una necessità critica costante per sviluppare strumenti che consentano più approfondi.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano nessun conflitto di interessi.

Ringraziamenti

Gli autori desiderano ringraziare i membri del laboratorio Dowling (Aaron Reifler, Trent Waugh, Angela Busta, e William Telfer), che hanno contribuito allo sviluppo della tecnica e alla produzione del manoscritto. Questo lavoro è stato finanziato dall'Istituto Taubman, il Dipartimento di Pediatria presso l'Università del Michigan, e in parte da sovvenzioni dal Distrofia Muscolare (JJD MDA186999) e il National Institutes of Health (JJD 1K08AR054835).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Piastra di coltura a 24 pozzettiCorning3524
10x PBSInvitrogen Gibco70011
CO2 Terreno indipendenteInvitrogen Gibco18045
Collagenasi di tipo IIWorthington BiochemicalLS004186Lot 41H12764
Collagenasi di tipo IVWorthington BiochemicalL5004188
Microscopia elettronica% Paraformaldeide157-8
MetanoloSigma322415
Triton X-100SigmaX100
BSASigmaA2153
Siero di pecoraSigmaS3772
Siero di capraSigmaG9023
Vetrini coprioggettiFischerbrand12-545-82 12CIR-1D
Poli-L-lisinaSigmaP4707
PronasiSigmaP5147
40 μ m FiltroBD Biosciences352340
70 μ m FilterBD Biosciences352350
Reagente antidissolvenza Prolong GoldInvitrogenP36931
Anticorpo anti-alfa;-actininaSigmaA5044
Anticorpo anti-RYRAbcam34C
Alexa Anticorpo FluorInvitrogenA-21425
TWEEN 20SigmaP1379
Piastra di Petri da 60 mmFischerbrand0875713A
Poli-L-OrnitinaSigmaP4957
Vetrino per microscopioFischerbrand12-550-15
CaffeinaSigmaC0750
8 Scienze

Riferimenti

  1. Dulhunty, A. F. Excitation-contraction coupling from the 1950s into the new millennium. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 33, 763-772 (2006).
  2. Bannister, R. A. Bridging the myoplasmic gap: recent developments in skeletal....

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Ristampe e permessi

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