Summary
Irrelevantes metabolômica fornece uma hipótese gerando instantâneo de um perfil metabólico. Este protocolo irá demonstrar a extracção e análise de metabolitos a partir de células, soro ou tecido. Uma gama de metabolitos são pesquisadas utilizando extracção de fase líquido-líquido, cromatografia líquida de microfluxo UltraPerformance /-espectrometria de massa de alta resolução (UPLC-HRMS), acoplado ao software de análise diferencial.
Abstract
Apresentamos aqui um fluxo de trabalho para analisar os perfis metabólicos para amostras biológicas de interesse, incluindo: as células, soro ou tecido. A amostra é primeiro separado em fracções polares e não polares por uma extracção de fase líquido-líquido, e parcialmente purificada para facilitar a análise a jusante. Ambos aquosas (metabolitos polares) e orgânicos fases (metabólitos não-polares) da extracção inicial são processados para pesquisar uma ampla variedade de metabolitos. Os metabolitos são separados por diferentes métodos de cromatografia líquida com base em suas propriedades de partição. Neste método, apresentamos microfluxo ultra eficiência (UP), os métodos de LC, mas o protocolo é adaptar a fluxos mais elevados e pressões mais baixas. Introdução no espectrômetro de massa pode ser, quer através de condições de origem optimizado gerais ou composto. A detecção de uma ampla gama de iões é efectuada em modo de varrimento completo no modo positivo e negativo numa larga gama m / z usando alta resolução num recentemente cinstrumento alibrated. Etiqueta livre de análise diferencial é realizada em plataformas de bioinformática. Aplicações dessa abordagem incluem triagem metabólica caminho, descoberta de biomarcadores e desenvolvimento de medicamentos.
Introduction
Devido aos recentes avanços tecnológicos no campo da HRMS, irrelevantes, hipótese de geração de metabolômica abordagens tornaram-se uma abordagem viável para análise de amostras complexas. Uma espectrômetros de massa, capazes de facilitar a resolução de 100.000 rotina baixa parte por milhão (ppm) de precisão em massa tornaram-se amplamente disponível a partir de vários fornecedores. 2,3 Esta precisão massa permite uma maior especificidade e confiança em um trabalho preliminar de identidade analito, reconhecimento de padrões de isótopos, e identificação aduto. 4 Quando acoplado com um procedimento de extracção apropriado e de alto desempenho LC ou UPLC, misturas complexas podem ser analisados com especificidade adicional derivado a partir de dados de tempo de retenção. UPLC 5 possui uma maior eficiência cromatográfica e permite uma maior sensibilidade, resolução e análise do tempo fazendo uma maior cobertura do metaboloma possível. 6 As grandes conjuntos de dados resultantes pode ser integrado em qualquerde software de análise diferencial múltiplo e minado para os padrões úteis ou analitos de interesse individuais. 7,8,9,10,11 sucessos putativos podem ser identificados inicialmente usando uma combinação de algoritmos de detecção de pico, a previsão fórmula exata massa base química, a previsão de fragmentação e pesquisa de banco de dados de produtos químicos. Esta abordagem permite a priorização de metas para demorado identificação estrutural completa ou para o desenvolvimento de mais sensível e mais específico de diluição isotópica estável reação UPLC / selecionada ou múltipla monitoramento / MS estudos que são os métodos padrão ouro atual para a quantificação de 12.
A natureza variável das amostras biológicas tem levado a optimização de protocolos para extracção de urina 13, as células 14, 15 de soro, ou de tecido 16. Este protocolo características extracções de células, soro e tecido. Sempre que necessário, comentários e referências adicionais foram incluídas para modificaçãoções do processo para tratar a inclusão de isótopos estáveis, ou pela inclusão de metabolitos especialmente instáveis.
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Protocol
1. Exemplo de Extração de Células
- Para uma placa de células cm 10: recolha de 1,5 ml de suspensão de células em meio erguido num tubo de centrífuga de 10 ml de vidro pré-rotulados. Para as linhas de aderentes, as células devem ser levantadas com raspagem suave em 1,5 ml de meio mantidas em gelo Opcional:. Se forem utilizados padrões internos, adicione uma aliquota adequada nesta etapa.
Comentário: Têmpera do metabolismo celular é crucial para determinados metabolitos. Para análise de metabolitos sensíveis ao tempo, os procedimentos tais como a extracção de metanol frio deve ser considerada. 17 - Adicionar 6 ml de clorofórmio (CHCI3) / metanol (CH 3 OH) (2:1, v / v) a cada um dos tubos de vidro de 10 ml contendo as amostras. Defina as amostras em um shaker ou multi-vortexer em velocidade baixa por 30 min. Após agitação, as amostras são centrifugadas com uma configuração de baixa aceleração / desaceleração em 1935 xg durante 10 min a 4 ° C para separar completamente as fases.
Opcional CHCI3, a extracção pode ser realizada com diclorometano (CH 2 Cl 2) 18,12. - Utilizando uma haste longa pipeta Pasteur, transferir a camada orgânica (inferior) para um novo tubo de centrífuga de 10 ml de vidro pré-rotulados. Continue a 4.1.
- Transferir a fase aquosa superior mais tarde a um tubo de plástico de 2 ml de Eppendorf limpo. Evapora-se a amostra sob atmosfera de azoto. Continue a 2.6.2 para dessalinização fase aquosa ou continuar a 4.1 para a análise direta.
2. Extracção de Amostra de soro
- Transferir 20 uL de soro para um tubo Eppendorf de 2 ml de plástico Opcional:. Se forem utilizados padrões internos, adicione uma aliquota adequada nesta etapa.
- Adicionar 190 mL de CH3OH e vortex por 10 segundos.
- Adicionar 380 mL de CHCI3 e vortex durante 10 seg.
- Adicionar 120 mL de H 2 O para induzir a separação de fases. Agitar as amostras para 10 seg e deixa-se equilibrar à temperatura ambiente durante 10min.
- Centrifugar as amostras a 8000 xg durante 10 min a 4 ° C para separar as fases.
- Transferir a fase orgânica inferior a um tubo de plástico de 2 ml de Eppendorf limpo. Continue a 4.1.
- Transferir a fase aquosa superior mais tarde a um tubo de plástico de 2 ml de Eppendorf limpo. Evapora-se a amostra sob atmosfera de azoto.
- Re-suspender a amostra em 200 ul de H2O Ácido ou base de reagentes (0,1% de ácido acético, ácido fórmico ou de hidróxido de amónio a 0,1%) pode ser usado para extrair os metabolitos preferencialmente sensíveis ao pH. Sonicar durante 20 min em gelo para re-suspender a amostra completamente.
- Activa as colunas de giro C18 com 500 mL de CH3OH.
- Equilibrar a coluna de spin com duas lavagens de 500 ul de H2O e, em seguida, carregar a amostra. Se são utilizados reagentes de ácido / base de manter esta concentração nas etapas de lavagem.
- Lava-se com 500 mL de H2O para dessalinizar a amostra. Novamente, se os reagentes de ácido / base são usados manter esta concentração na lavagempassos.
- Eluir com dois volumes de 200 ul de 80% CH 3 OH em H 2 O em 2 ml de um tubo pré-rotulados Eppendorf limpo. Novamente, se os reagentes de ácido / base são usados manter esta concentração nas etapas de lavagem. Continue a 4.1.
3. Extracção de Amostra de Tecido
- Dependendo do tecido, usar-se entre 10-100 mg de tecido congelado. Adicionar toda a peça de tecido para um tubo Eppendorf de 2 ml de retenção de grandes quantidades de pré-rotuladas com 1 ml de PBS (1 M, pH 6,8) num banho de gelo Opcional:. Se forem utilizados padrões internos, adicioná-la ao tampão, antes de adicionar o tecido.
- Homogeneizar o tecido no gelo com um moedor de tecido elétrica por 30 segundos em cada Eppendorf. Entre amostras, limpe o triturador de tecidos em dois tubos separados contendo CH3OH e H2O, respectivamente.
- Transferir o homogenato de tecido com uma pipeta de plástico de 10 ml para um tubo de centrífuga de vidro pré-rotulados. Após a transferência, lavar cada tubo Eppendorf2x com 1 ml de CH3OH e adicionar as lavagens ao homogeneizado de tecido no interior dos tubos de vidro.
- Adicionar 4 ml de CHCl 3 a cada um dos tubos de vidro contendo 10 ml do homogeneizado de tecido e CH3OH lavagens. Defina as amostras em um shaker ou multi-vortexer em velocidade baixa por 30 min.
- Após agitação, centrifugação das amostras, com um nível baixo de aceleração / desaceleração em 1935 xg durante 10 min para separar completamente as fases opcionais:. Para evitar a utilização de clorofórmio, extracções foram desenvolvidos com CH 2 Cl 2.
- Utilizando uma haste longa pipeta Pasteur, transferir a camada orgânica (inferior) para um novo tubo de centrífuga de 10 ml de vidro pré-rotulados. Continue a 4.1.
- Utilizando uma haste longa pipeta Pasteur, transferir a fase aquosa para um novo tubo de centrífuga de 10 ml de vidro pré-rotulados. Ir para 2.6.2 para dessalinização ou continuar a 4.1.
4. Re-suspensão e Filtração de amostras para UPLC
- Evaporar o samples em gás nitrogênio.
- Reconstituir secou-se as amostras num volume apropriado de solução de partida para o método de UPLC desejada (ver Tabela 1). 50-100 ul é geralmente um volume de ressuspensão desejável. Suavemente vortex e / ou pipeta da amostra cima e para baixo para ajudar na dissolução dos analitos.
- Transfira a amostra num tubo de um filtro de nylon de 0,22 e de rotação de até 14.000 x g até a amostra ter passado completamente através do filtro (~ 5 minutos). Certifique-se de que não há precipitados visíveis que permanece na amostra.
- Transferir o sobrenadante da amostra filtrada para um frasco UPLC pré-rotuladas com inserção. Tampão frasco, em seguida, apertar o frasco de forma a remover quaisquer bolhas a partir do fundo do frasco de amostra. Colocar a amostra no auto-amostrador refrigerado (4-5 ° C).
5. Setup UPLC
- Usando o software de controle para o cromatógrafo líquido, criar uma corrida para a amostra biológica baseado fora das condições previstas no
- Permitir que a UPLC equilibrar adequadamente. Isto deve incluir uma iniciação completa de solventes antes de anexar uma coluna, e seguindo as instruções do fabricante para o volume de equilíbrio de uma nova coluna (geralmente 3-5 volumes de coluna). Manter um registro de partida de volta pressões para ajudar a diagnosticar problemas futuros.
6. Setup Espectrômetro de Massa
- Utilizando o software de controlo para o espectrómetro de massa de alta resolução, criar um método de modo positivo, utilizando as condições listadas na Tabela 2. Em seguida, utilizando as mesmas condições, criar um método opcional de modo negativo:. Se um conjunto conhecido de analitos alvo são de elevada interest, fonte e optimizar as condições de óptica utilizando o análogo marcado pesada destes compostos, e gerar um método que utiliza estas condições.
- Limpar e calibrar o instrumento, estabelecer uma pulverização estável no espectrómetro, e que haja tempo para que a solução de calibração para dissipar de forma adequada a partir da fonte e óptica. Estabilidade aceitável de pulverização deve dar um 3-5% RSD de intensidade ao longo de pelo menos 100 scans com a injecção da solução de calibração com a mesma taxa de fluxo como a LC método a ser utilizado.
- Configure a seqüência para todas as amostras, ajustar o volume de injeção adequado, e executar um espaço em branco antes da primeira amostra. Se houver suspeita de reporte ou matriz de efeitos entre amostras, execute blanks / lavagens adequadas. As amostras devem ser configurados de modo randomizado, utilizando um gerador de números aleatórios e uma chave para evitar os efeitos de lote introduzidas pela análise.
Comentário: amostras de controle de qualidade, incluindo as normas de isótopos estáveis ou padrões analíticos dos prováveis alvos pode serextremamente valioso na solução de problemas e assegurando resultados confiáveis e reprodutíveis, e válido. Uma repetição técnica de um só amostra padrão seguido por um branco de solvente pode ser utilizado para aceder desvio de intensidade do sinal e o tempo de retenção, bem como o arrastamento em ensaio em branco. - Comece a seqüência e monitorar periodicamente para problemas, incluindo flutuações de pressão ou perda de intensidade do sinal ao longo do curso. Se forem detectados problemas graves, interromper a corrida, e repita a partir do 6.2.
7. Análise diferencial
- Dois fluxos de trabalho são apresentados para esse protocolo. A primeira é através PENEIRA 2.0, software de análise diferencial etiqueta livre de propriedade vendido por Thermo Fisher. O segundo fluxo de trabalho é através XCMS online, uma plataforma livre através do Instituto de Pesquisa Scripps. 11 Antes de iniciar a análise diferencial, verificar manualmente as TICs ou olhar cromatogramas filtradas para qualquer composto conhecido na amostra para garantir a reprodutibilidade das corridase injeção / UPLC / spray de estabilidade em todas as amostras.
- PENEIRA
- Transfira os arquivos de dados brutos. Desde o espectrômetro de massa para o disco rígido da estação de trabalho onde PENEIRA está instalado. (Nota: a funcionar PENEIRA com os dados armazenados em uma unidade conectada em rede ou porta USB não é aconselhável, pois pode limitar a velocidade de análise).
- Abrir peneira, e começar uma nova experiência.
- Carregar os arquivos apropriados em peneira.
- Atribuir grupos de comparação e selecione um arquivo único de referência para permitir a peneira para gerar os parâmetros para análise.
- Siga as instruções e ajustar os parâmetros de acordo com requisitos de qualquer experiência individual. Muitas vezes, é aconselhável começar com parâmetros rigorosos e, em seguida, voltar e soltar os parâmetros conforme as definições mais generosas podem alongar o tempo de análise.
- Carregar a lista de aduto correta para o modo positivo ou negativo nos parâmetros.
- XCMS online
- Converta arquivosem um formato aceitável para XCMS Online. No nosso caso, nós convertemos a mzXML formato 19.
- XCMS abertas online, e criar emprego.
- Carregar e nomear conjuntos de dados. Apenas dois conjuntos de dados (por exemplo, controle vs tratamento) podem ser carregados como XCMS stand-alone é limitada a comparações head-to-head.
- Selecione as configurações desejadas na lista drop-down. Os parâmetros pré-povoadas estão disponíveis para diferentes configurações de instrumentação, e estes podem ainda ser modificados para as necessidades experimentais. No nosso caso, usamos as configurações de HPLC-Orbi2.
- Enviar e confirme trabalho.
- Análise de Dados
- Para peneira e XCMS uma lista de quadros e recursos, respectivamente, será preenchida uma vez que a análise for concluída. Certifique-se de que o alinhamento LC sobrepõe quaisquer picos marco. Se qualquer uma das corridas LC desalinhados mostram grande desvio em picos marco isso pode indicar um problema com a amostra.
Opcional: Para a peneira, se as normas internas são utilizadas, localizeo grupo pico correspondente e normalizar o quadro selecionado. Para XCMS On-line, a normalização pode ser feito em uma planilha após a exportação. - Plotar os dados por meio do coeficiente de variação (CV) em uma amostra da população, como (por exemplo, amostras de controle). Qualquer grandes valores de CV pode indicar um problema com um ou mais amostras. Classificar a lista com base em características desejadas (por exemplo, valor de p <0,05, Mudança Fold> 1.5, baixo desvio padrão dentro de um grupo, etc).
- Examine cada pico para o alinhamento apropriado de pico em todos os grupos, a integração de pico, o pico de forma Gaussian, a intensidade do sinal, isótopos e atribuição aduto.
- Exportar dados como desejado para uma análise mais aprofundada ou para gerar listas de massa direcionados para a confirmação e n experimentos MS.
- Para peneira e XCMS uma lista de quadros e recursos, respectivamente, será preenchida uma vez que a análise for concluída. Certifique-se de que o alinhamento LC sobrepõe quaisquer picos marco. Se qualquer uma das corridas LC desalinhados mostram grande desvio em picos marco isso pode indicar um problema com a amostra.
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Representative Results
Os resultados apresentados mostram os dados selecionados a partir de um tratamento de 6 horas de células de glioblastoma SH-SY5Y com o pesticida e inibidor do complexo I mitocondrial rotenona. Para resumir, apenas a fase de dados de modo positivo orgânicos é apresentada. As amostras foram processadas e analisadas como descrito acima (Figura 1, Tabela 1, Tabela 2) e carregou-se duas plataformas de análises diferenciais para o marcador livre de quantificação, peneira e XCMS linha. Embora um grande número de acessos (Figura 2, Figura 3) são identificadas pelos dois programas utilizados para análise diferencial destas características incluem artefatos provavelmente, picos mal integrados e outros recursos de valor analítico questionável. Isto pode ser julgado por triagem os hits para a intensidade de sinal adequado, baixa variação entre as amostras de um mesmo grupo, os níveis de fundo, e boas formas de pico cromatográficos (Figura 3).
Para demonstrar a downstream confirmação de acertos iniciais, isolamos uma característica com uma massa correspondente ao nosso tratamento rotenona composto dentro de 3 ppm (Figura 3, Figura 4). Nós confirmar a identidade deste analito com UPLC-HR/tandem espectrometria de massa (MS / MS) da amostra e o composto puro (Figura 5). Nós também identificar um recurso abundante diferencialmente reduzida no grupo tratado com rotenona, tentativamente identificada como D-pantetina por busca de banco de dados de massa exacta (Figura 3).
Figura 1. Esboço Experimental Geral de Preparação de Amostras e Análise por Microspray UPLC-HRMS. Um esboço geral de preparação de amostras, incluindo a introdução opcional de padrões internos e proteínas ou lipídios / análise de conteúdo de proteína. A separação de fases, cromatografia líquida, e análise por diferentes ion modos no espectrómetro de massa são descritos.
Tabela 1. Condições UPLC. Gerais e compostos condições UPLC otimizado. Para obter uma fase orgânica, a taxa de fluxo constante de 1,8 mL / min através de uma nanoACQUITY BEH130 coluna C18 Waters mantido em estufa a 35 ° C, foi usado. Solvente A: 99,5% water/0.5% de acetonitrilo com 0,1% de ácido fórmico, Solvente B: 98% de acetonitrilo / 2% de água com 0,1% de ácido fórmico Para a fase orgânica 2, a taxa de fluxo constante de 3,4 mL / min através de uma coluna C8 Acentis expresso mantido em estufa a 35 ° C, foi usado. Solvente A: 40% water/20% de acetonitrilo com 0,1% de ácido fórmico e formato de amónio 10 mM Solvente B: 90% de isopropanol/10% de acetonitrilo com 0,1% de ácido fórmico e formato de amónio 10 mM para a fase aquosa, a taxa de fluxo constante de 1,2 μ l / min através de uma nanoACQUITY BEH130 coluna C18 Waters mantido em estufa a 35 ° C, foi usado. Solvente A: 95% água / 5% de metanol com 0,1% de hidróxido de amónio, Solvente B: 95% de metanol / 5% de água, com hidróxido de amónio 0,1%.
Figura 2. Espelho Plot Gerado com XCMS. Uma trama espelho mostrando características diferencialmente abundantes como detectadas e quantificadas por meio XCMS on-line a partir da análise orgânica fase positiva modo UPLC-MS. Cada ponto representa um "recurso". Distinta Pontos verdes são recursos mais abundantes (maior área integrada) no controle, enquanto que pontos vermelhos são mais abundantes no tratamento. Aumentando o tamanho do ponto indica aumentando magnitude da mudança de dobragem entre os grupos, e a intensidade da cor indica um valor de p diminuindo com o aumento da saturação de cor.
Figura 3. Peaks analito. Cromatogramas mostrando o modo de análise orgânica fase positiva íon UPLC-MS. A) corrigida (alinhados) de íon de corrente total (TIC) de PENEIRA 2.0. B) extraídos Chromatogram Ion para a função provisoriamente identificado como D-pantethine através XCMS. C ) Extraído Chromatogram Ion para o recurso mais tarde identificado como rotenone de peneira. D) XIC para o recurso mais tarde identificado como rotenone de PENEIRA normalizado para TIC. Clique aqui para ver a figura maior .
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Figura 4. Resultados da Pesquisa de banco de dados. Sucessos banco de dados para A) Banco de Dados Metaboloma Humano ( http://www.hmdb.ca ) e B) ChemSpider / KEGG (via peneira) (ChemSpider sozinho também podem ser empregadas - http://www.chemspider.com ), utilizando determinações de massa precisos para os recursos mostrados na Figura 3B, 3C e 3D correspondentes aos íons de m / z 555,2516 395,1481 e com base na identificação desses íons como [MH] + espécies. Clique aqui para ver a figura maior .
Figura 5. HR / MS / MS SConfirmação ESTRUTURAIS. Confirmação da identificação da característica correspondente ao ião de 395.1481 m / z com um tempo de retenção de 23,22 min como rotenona UPLC-MS/MS com base na comparação de um padrão comercial, com A) tempo de retenção semelhantes e B), a mesma m / z (395.1481, ~ 0 erro ppm) com a fragmentação quase idênticos. Clique aqui para ver a figura maior .
| Mass Spectrometry Parameter | Fixação | Comentar |
| Fonte | ESI | Michrom CaptiveSpray |
| Ion Modelo | Positivo ou Negativo | |
| Método Comprimento | Variável (~ 40-60 min) | |
| Resolução | 60.000-100.000 | |
| Spray (kV) | 1.75 | |
| Tubo da lente (V) | 130 | Composto Objectivo Dependente |
| Capilar Temperatura (° C) | 250 | Pode encurtar a vida de ponta de pulverização |
| Voltagem capilar (V) | 50 | Composto Objectivo Dependente |
| Tipo de dados | Centroid | (Para dados de perfil, ver Discussão) |
Tabela 2. Configurações do MS. Gerais e compostos configurações espectrômetro de massa otimizado usado para o LTQ XL-Orbitrap com um avanço de Thermo cativo fonte ESI pulverização Michrom.
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Discussion
Irrelevantes metabolômica oferece uma ferramenta poderosa para investigar biotransformações endógenos ou xenobióticos, ou a captura de um perfil metabólico de uma amostra de interesse. A saída das escalas técnica com a resolução e sensibilidade da tecnologia utilizada para separar e analisar a amostra, a capacidade de lidar com grandes conjuntos de dados gerados, bem como a capacidade para extrair o conjunto de dados para obter informações úteis (por exemplo, a pesquisa de banco de dados de massa exata). Recentemente, esta tem sido facilitada pelos avanços na espectrómetros de massa de alta resolução, e cromatografia de alto desempenho ou de ultra-líquido. Software de análise diferencial abordou o gargalo análise, e pode realizar o ajuste de detecção de pico para as mudanças de tempo de retenção, filtragem e análise estatística com alto rendimento. 20,21,22 Seleção da informática adequada gasoduto deve incluir considerações a respeito de dados centroiding algoritmos, detecção de pico, a integração de pico, alignment, capacidade de integrar dados de MS / MS, e capacidade de lidar com isótopos ou adutos. Seleção de 23 bases de dados quimioinformática apropriadas também devem ser considerados. 24,25,26,27 A inadequação corrente de qualquer banco de dados específico para identificar compostos de forma abrangente e integrar massa de dados precisos, MS / MS de dados ou dados LC continua a ser um grande problema no campo.
O fluxo de trabalho aqui apresentado integra a extracção líquido-líquido, cromatografia de micro-fluxo de líquido, e de espectrometria de massa de alta resolução com duas plataformas de software de análise diferencial de diferentes demonstrados num modelo de cultura de células de tratamento. Além disso, os protocolos de extracção são listados para o soro e tecido, uma vez que estes podem servir como exemplos úteis para a análise semelhante.
Embora qualquer método utilizado para metabolômica irrelevantes devem ser otimizados para a repetibilidade, condições UPLC estáveis e estabilidade fonte, alguma variação é inevitável. Tanto a peneira e XCMS allow correcção para o deslocamento de tempo de retenção, mas especial deve ser dada atenção a assegurar que os parâmetros estabelecidos na experiência são adequadas para corrigir a variação. Além disso, o isótopo estável rotulado padrão interno (s) pode ser facilmente integrado a este procedimento para reduzir artefatos e variação de amostra entre causada por diferenças nas extrações de amostra ou análise LC-MS. 12 Tal como acontece com todos sensível metodologia LC-MS, é crucial para utilizar os reagentes de alta pureza, e assegurar que a preparação da amostra remove partículas indesejável ou agregação. Artifacts podem ser gerados pela variação normal em contaminantes, e isso pode ser desejável confirmar que atinge putativos não são contaminantes ubíquos no facto de o processo de extracção ou análise.
Finalmente, embora o método é rotulado como metabolomics "irrelevantes" ou "imparcial", isto é um equívoco parcial. A natureza da extracção, separação e análise irá favorecer metabolitos com certas caracteticas, incluindo estabilidade durante a extracção, a interacção com as fases estacionária e móvel, durante a separação, e na fonte de ionização do espectrómetro de massa. 28,29,30 Dependendo da instrumentação disponível, este procedimento pode ser adaptado para posições diferentes, as taxas de fluxo, pressões LC fontes de iões, ou espectrômetros de massa. Portanto, incluímos notas do procedimento em que certas condições podem ser optimizadas com base no conhecimento geral ou representante de uma classe de moléculas de interesse padrões internos.
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Disclosures
Os autores não têm nada a revelar.
Acknowledgments
Reconhecemos o apoio do NIH concede P30ES013508 e 5T32GM008076. Agradecemos também a Thermo Scientific para o acesso a PENEIRA 2.0 e drs. Eugene Ciccimaro e Mark Sanders da Thermo Scientific para discussões úteis.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagent | |||
| Phosphate Buffered Saline | Mediatech | 21-031-CM | |
| Water (H2O) | Fisher Scientific | W7-4 | (optima) |
| Acetonitrile (CH3CN) | Fisher Scientific | A996-4 | (optima) |
| Methanol (CH3OH) | Fisher Scientific | A454-4 | (optima) |
| Isopropanol | Fisher Scientific | A464-4 | (optima) |
| Chloroform (CH3Cl) | Sigma-Aldrich | 366927 | Hazard |
| Dichloromethane (CH2Cl2) | Acros Organics | 61030-1000 | To replace chloroform |
| Diethyl Ether | Sigma-Aldrich | 346136 | To replace chloroform |
| Formic Acid (FA) | Fisher Scientific | (optima) | |
| NH4OH | Fisher Scientific | A470-250 | (optima) |
| Ammonium formate (HCOONH4) | Sigma-Aldrich | 78314 | |
| MicroSpin C18 Columns | Nest Group Inc | SS18V | |
| Pasteur Pipettes | Fisher Scientific | 13-678-200 | |
| 10 ml Glass Centrifuge Tubes | Kimble Chase | 73785-10 | |
| 10 ml Plastic Centrifuge Tubes | CellTreat | CLS-4301-015 | |
| LC Vials (glass) | Waters | 60000751CV | |
| LC Inserts (glass) | Waters | WAT094171 | |
| LC Vials (plastic) | Waters | 186002640 | |
| 0.22 μm Filters | Corning | 8169 | nylon |
| 2 ml Eppendorf Tubes | BioExpress | C-3229-1 | Low Retention |
| Equipment | |||
| High Resolution Mass Spectrometer | Thermo Scientific | LTQ XL-Orbitrap | |
| HPLC/UPLC | Waters | nanoACQUITY UPLC | |
| Source | Michrom | Thermo Advance Source | |
| Differential Analysis Software | Thermo Scientific | SIEVE 2.0 | |
| nanoACQUITY C18 BEH130 | Waters | 186003546 | 1.7 μm particle size, 150 mm x 100 μm |
| Acentis Express C8 | Sigma-Aldrich | 54262 | 2.7 μm particle size, 15 cm x 200 μm |
References
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