Summary
肺炎球菌は、重症市中肺炎、世界中200万人以上の死亡の原因を引き起こす主要な病原体である。フィットネスまたは病原性に関与する細菌性因子の影響は、生物発光細菌を用いて、マウスの急性肺炎または菌血症モデルにおいてリアルタイムでモニターすることができる。
Abstract
肺炎は、開発における主要なヘルスケアの問題や先進国の一つであり、かなりの罹患率と死亡率と関連している。この病気の知識、集中治療室（ICU）のアベイラビリティ、および強力な抗菌剤で効果的なワクチンの使用の進歩にもかかわらず、死亡率は1高止まり。 肺炎球菌は市中肺炎（CAP）の主要病原体であるおよびヒトにおける菌血症の最も一般的な原因の1。この病原体は、表面に露出した付着因子と肺炎や侵襲性肺炎球菌疾患（IPD）に貢献する毒性因子の装備一式が装備されています。細菌の毒性因子又は適応度のインビボでの役割の評価は、S.を解明するために最も重要である肺炎病原性メカニズム。肺炎、菌血症、および髄膜炎のマウスモデルは、DIFにおける肺炎球菌の因子の影響を決定するために使用されている感染の段階をferent。ここでは、鼻腔内、または生物発光細菌による腹腔内感染後のマウスでのリアルタイム肺炎球菌普及に監視するためのプロトコルを記述します。その結果、撮像システム及び添付分析ソフトウェアを用いて視覚化し、評価することができる下気道および血液中の乗算と肺炎球菌の普及を示す。
Introduction
ウイルスや細菌によって引き起こされる気道感染症は、世界中のすべての死の約3分の1を引き起こし、世界中の最も一般的な市中または臨床的問題の1つとなっています。キー細菌種は、 インフルエンザ菌と肺炎球菌 2である。しかし、これらの細菌種は、通常、自然な気道内細菌叢の一般的な構成要素である。このように、細菌の送料は侵襲性疾患および免疫状態や個人の素因に依存するため、特定の危険性もある。無症候性の保菌は、侵襲性感染症にトリガされます。 肺炎球菌は、市中肺炎（CAP）およびヒトにおける菌血症の最も一般的な原因の1の主要な病原体である。健常者におけるS.肺炎球菌 （肺炎球菌）は、多くの場合、彼らは非病原性細菌に直面している上気道の無症候性および無害植民ですだけでなく、 ヘモフィルス属などの病原体と常在菌叢の。または黄色ブドウ球菌とヒトの免疫防御システムの最初の行。キャリッジ率は幼児で最も高い（37％）と3-5（58％）混雑したデイケアセンター内でさらに高い。最年少の人口と高齢者は、担体及び鼻咽頭分泌物6からのエアゾール変速機を介して肺炎を受け、肺炎球菌コンジュゲートワクチン（成人では、子供と23価多糖PPSV23におけるPCV10またはPCV13）のいずれかを使用して、高リスク群とワクチン接種に属しアメリカ合衆国（米国）、多くの欧州諸国4で推奨されている。格納容器は、小児の最も一般的な血清型をカバーしながら、PPSV23は、成人では効率的に侵襲性肺炎球菌疾患（IPD）の防止、米国と欧州の菌血症肺炎球菌疾患の約90％を占める血清型をカバーしています。その結果、IPDは、ワクチンの種類（VT）にREDUです高病原性の可能性や抗生物質耐性を表示するCEDが、nonvaccine血清型が4,7-12浮上している。リザーバとして咽頭は、有害なローカル感染を開始する副鼻腔や中耳に広めるために肺炎球菌の出発点である。さらに重要なのは、肺炎球菌は、生命を脅かすCAP 4,13結果気管支や肺に気道から直接広がった。肺感染症は、多くの場合、このように血液中に広めるために、病原体を可能にし、IPDを引き起こし、組織およびバリア破壊に伴う。 CAPとIPDの発生率は、免疫不全の人で、年齢4,13の極値で最も高い。高病原性と病原体への共生の変換を担う状況が議論中である。しかし、より高い毒性および抗生物質耐性の増加を伴う宿主の感受性および進化適応の変化の他にPNEに決定的な影響を有することが示唆されているumococcal感染14〜16。
病原体は、上皮細胞の粘膜の密接な接触を仲介する付着因子の多様性に恵まれている。気道粘液を乗り越えた後、宿主細胞への肺炎球菌の付着は、細胞受容体との表面露出アドヘシンの直接的な相互作用を介して分子の4,17,18を架橋するように細胞外マトリックス成 分または血清タンパク質を利用することによって促進される。としての汎用性の高い病原体の肺炎球菌も宿主の免疫防御機構の回避に関与する因子を完備しています。さらに、それらは、それぞれ、肺、血液、および脳脊髄液（CSF）、5,17,19,20等の種々の宿主的環境に適応する能力を有する。
病因および炎症応答ホスト上の細菌の要因の影響は、肺炎、菌血症、髄膜炎または21〜25の実験動物モデルにおいて調査されている。ヒトの病原体であるにもかかわらず、これらのモデルは、我々はLL-確立肺炎球菌組織向性、病原性のメカニズム、または肺炎球菌ワクチン候補の保護性を解読する。近交系マウス系統の遺伝的背景は、肺炎球菌に対する感受性を決定します。 CBA / CaおよびSJLマウスは、肺炎球菌感染22に対してより感受性あったが、鼻腔内肺炎球菌に感染したBALB / cマウスを、耐性であることが見出された。これは、ヒト、遺伝的背景および宿主防御機構と同様の感染の結果を決定する、ことを意味する。したがって、さらなる努力が肺炎球菌感染症に対してより感受性マウスのゲノムに耐性座を解明するために必要である。知見は、 インビボ病原性プロトコルの変更につながっている。代わりに、多くの場合、過去に使用された近交系BALB / cマウスの、非常に敏感CD-1/MF1近交系マウス系統は、今日では、多くの場合、機能喪失肺炎球菌、病原性や適性26-28因子の影響を研究するために使用されています。また、可用性生物発光肺炎球菌および光学イメージング技術の感染症のリアルタイム生物発光バイオイメージングが可能になる。肺炎球菌では、最適化されたluxABCDE遺伝子カセット（プラスミドポール·Tnは4001たluxABCDEのKm r）は 、トランスポゾン突然変異誘発により染色体の単一の組み込み部位に挿入されている。生物発光肺炎球菌は病原性または適性の要因別26,28-31に1解剖学的部位からの転座を欠損肺炎球菌の変異体の減衰を評価するために使用されてきた。
ここでは、マウスの肺炎や敗血症モデルにおける肺炎球菌感染症のバイオイメージングのためのプロトコルを提供する。鼻腔内または腹腔内に感染させたマウスにおける増幅および生物発光肺炎球菌の普及が容易に異なる時点で撮像光学系と同じ動物を用いて経時的にモニターすることができる。
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Protocol
ここで説明した動物感染実験は、脊椎動物動物の使用のために（ 例えば実験動物学協会連合会の欧州衛生法（FELASA））のガイドラインや規制のローカルおよび国際的に厳密に従って実行する必要があります。実験は、地域の倫理委員会および動物実験委員会によって承認されなければならない。 Sにすべての実験実験室または動物の感染症、肺炎は、クラスIIバイオセーフティキャビネットで行われている。
1。生物発光Pneumococociの感染株式の準備
- 80℃（w / v）の酵母抽出物および保守のための20％グリセロールの最終濃度が1％を補充したトッド - ヒューイットブロス中の肺炎球菌株の培養物を調製
- 血液寒天プレート上に冷凍ストック肺炎球菌培養物の少量をプレートし、5％CO 2中37℃で10時間、細菌を培養する。 T彼血液寒天プレートがゲノムにたluxABCDE遺伝子カセットのトランスポゾン挿入のためのカナマイシン（150μg/ ml）を、適 切な抗生物質を含んでいます。
- 10時間の最大のための新しい血液寒天プレート上に新鮮なコロニーをサブ養う。
- 肺炎球菌とのウシ胎児血清（FBS）不活性化（v / v）の熱（56℃で30分）10％を補充したTHY培地に接種し、OD 600で0.05〜0.07の培養を開始。
- 培養がOD 0.35から0.40の600に到達するまで37℃で攪拌しながら、5％のCO 2なしで肺炎球菌を培養する。成長は3-4時間の間がかかります。
- 10分間3,750×gでの遠心分離によって収穫肺炎球菌および0.5％FBSを補充したリン酸緩衝生理食塩水pH7.4（PBS）中で生物発光肺炎球菌を再懸濁。
- PBS/10％FBS中で所望の濃度に接種材料を調整します。感染量は、使用肺炎球菌菌株とマイクの遺伝的背景に依存E。 Sで鼻腔内に異系交配CD-1マウスに感染させるために肺炎球菌 D39は、感染量は90単位ヒアルロニダーゼを補充した20μLの懸濁液中に1×10 7 CFUに調整する必要がありルクス 。これは自己分解をトリガーするため、肺炎球菌を振ったりボルテックスしないでください。
- 5％CO 2中37℃で一晩増殖させた後、血液寒天とコロニーの計数に10倍連続希釈をメッキすることにより接種濃度を確認してください。
- 光学撮像系を用いて生物発光を測定することにより、肺炎球菌の接種材料生物発光を確認する。
2。生物発光肺炎球菌による鼻腔内およびマウスの腹腔内感染
- 急性肺炎と敗血症モデルのために7月10日週の時代にメス交配マウスを使用してください。これらのマウスの重量は20〜30の間でGでなければなりません。
- ケタミンおよびキシラジンの腹腔内注射によりマウスを麻酔。混合物1.0 mgの準備100μlの滅菌0.9％ケタミンおよびキシラジン0.1mgの20グラムの体重を有するマウスについて（w / v）の塩化ナトリウム。これは、ケタミンおよびキシラジン5 mg / kg体重、50 mg / kg体重の用量と一致する。正確には、麻酔剤の注射前に、マウスを秤量する。
- 腹腔に混合物を注入し、麻酔薬が作用して、動物は、麻酔になるまでバックケージに動物を配置します。マウスの呼吸が非常に遅く、定期的になります。マウスは、細菌懸濁液の鼻腔内接種及び吸入が、それゆえ、くしゃみやで接種物の損失を生じないように、十分に麻酔しなければならない。これは、それらの尾の端にマウスを挟持することによって評価することができ、完全に麻酔したマウスでは応答性を欠くであろう。
- 優しく麻酔したマウスをピックアップし、アップライト（ 図1）鼻と指と親指の間でマウスを押したままにします。
- 細長いチップ（ジェル·ローダーによるピペットを使用してくださいTIPS）とマウス26〜29の鼻孔（10μL/鼻孔）の上に複数の小滴中の生物発光肺炎球菌をドロップします。マウスが思わず菌を吸入します。直立マウス1〜2分間保持し、マウスがくしゃみや接種物を保持するかどうかを観察します。
- リアルタイムで感染を監視するために、それぞれ、歪D39とTIGR4の1×10 7または7.5×10 7肺炎球菌の感染量で鼻腔内7月10日週齢のCD-1マウスに感染する。宿主組織によって吸収されず、任意のシステムの検出限界は約1×10 6生物発光細菌である。
- 敗血症のマウス感染モデルにおいて肺炎球菌の病原性を評価し、バイオイメージする（IP）の腹腔内に感染する。ひずみD39とひずみTIGR4の1×10 4100μlの5×10 3 CFUを使用してください。 IPルートを使用するときにマウスを麻酔されていない。
- PBSで対照マウスに接種する。
図1。S.を収録したCD-1マウスの鼻腔内感染肺炎球菌 。 拡大画像を表示するには、ここをクリックしてください 。
3。イメージングシステムを用いて肺および血液中に肺炎球菌普及を可視化する
インビボイメージングシステムを用いてリアルタイムで雌非近交系CD1マウスの鼻腔内感染後の肺炎球菌の画像普及。
- イメージングシステムのスイッチを入れ、preconfiguratedコンピュータ上にある画像解析ソフトウェアを起動します。
- 撮像システムは、自動的に初期化し、CCDカメラが熱電活性される前に90℃に冷却する。
- 設定とビニングを測定したマウスの数に依存する同時かつ生物発光シグナルの強さ。動物の生物発光をモニターするための視野（FOV）は変数であり、倍率は胸のような動物のマウスのシングルまたは一部を測定するために、5匹のマウスを測定するために、22.5センチメートルの視野の範囲であり、3.9センチFOVまたは頭。
- 日常1分の露光時間、ビニング中程度、22.5センチメートル（集合D）のFOVを使用してください。まず、発光撮像モードを選択して撮像パラメータを設定する。
- シグナルの放出を用いた細菌株及びマウス株及びマウスの顔料に依存し得る。 例えば、C57BL / 6マウスを使用した場合、これらのマウスにおける肺炎の発生を撮像する場合に有利で あり得る、マウスの胸部を剃る。
- 画像はprechosen時間間隔でマウスを感染させた。最大8から12時間の時間間隔で、急性肺炎モデルにおけるマウスの生物発光を測定します。 observiによっても感染マウスの福祉を監視その外観、動作、および体重減少の決定をngの。
- 前にチャンバ内の測定に撮像装置の麻酔システムの麻薬チャンバ内にマウスを麻酔。イソフルランと酸素の混合物の吸入を開始し、マウスは徐々に、定期的に呼吸するまで待ちます。
- 系の結室に麻酔した動物を配置し、仰臥位でマウスを保持します。チャンバーの上部にCCDカメラますし、画像ネズミ気道。
- 麻酔薬の吸入を可能にするためにチューブにに自分の鼻を持つ動物を配置します。
- ガス配管を介して撮像チャンバ内へのエントリはイソフルラン麻酔を維持させる。
- イメージングソフトウェアでチャンバーの上部にCCDカメラを活性化し、生物発光光学イメージングを開始するには、押して「取得」。すぐに密閉チャンバー内のマウスの写真が画面に表示されます。の1分後に生物発光測定データのオーバーレイと写真が示されている。
- イメージオーバーレイは、ソフトウェアのウィンドウに表示された後、麻酔を停止し、戻って自分のケージにマウスを置く。
- マウスは、回復のために監視されています。
図2麻酔及びIVIS麻酔及びIVISスペクトル装置を用いて生物発光肺炎球菌に感染したマウスのモニタリング、それぞれA）IVISスペクトル撮像システム。B）インキュベーションチャンバーとIVIS麻酔システム。インキュベーションチャンバー内で麻酔C）マウス彼らの鼻は麻酔薬を吸入するとIVISスペクトラムイメージングチャンバー内に位置しています。D）マウス。_blank ">拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
4。生物発光Sで感染マウスの生物発光の定量化と評価肺炎球菌
- 画像解析ソフトウェアを用いて総光子放射（光子/秒）を定量化することによってマウス又はマウスの選択された領域の生物発光強度を決定する。
- グラフを作成するExcelのデータシートに記載されている光子放出の値を使用してください。データ変化は、多くの場合、グループ化されたマウス内で高いので、異なる肺炎球菌株に感染したマウスの違いを表示するためのボックスウィスカーグラフを生成する。
- マウス当たりの光子または選択した領域の放射輝度の平均値（光子/秒/ cm 2 / SR）として、代替的な結果を提供します。
- フォトンモードでROI（関心領域）の測定データを定量的に異なるインビボ撮像システムから他間で比較することができる来放射輝度の単位での測定が自動的に考慮カメラ設定を（ 例えば積分時間、ビニング、F /停止、および視野）がかかるため、RAの設定、。
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Representative Results
メチオニンの取得及び取り込みは、そのホストのニッチ32,33内のフィットネスを維持するために、肺炎球菌のための中心的な重要性である。メチオニンABCトランスポーターリポ蛋白は、SPD _ 0151遺伝子（TIGR4：sp_0149）でD39でエンコードされており、MetQ 32という。 （ - ; TIGR4 Sp_0585 - Sp_0586、METEとMETF Spd_0511 Spd_0510 D39）肺炎球菌はさらに、メチオニン生合成酵素を生産する。合成培地中のメチオニンの不足が肺炎球菌の成長と同じような、メチオニン32,33のリポMetQ障害者の取り込みを結合メチオニンの不足に影響を与えます。この不具合は、メチオニンの高濃度の添加により回復することができた。共感染実験で示されているようで示すように、MetQの欠如は、敗血症や肺炎のマウスモデルにおいて肺炎球菌を弱めた状態でマウスのコロニー形成実験でMetQが欠損した変異は、同質遺伝子野生型と病原性で弱毒化されなかった細菌負荷32を決定する。ここで使用IVISスペクトルを用いてリアルタイム光学バイオイメージングは、異なる時点で単感染動物の乗算および細菌の普及を監視することができる。
ここに示す例では、急性肺炎感染マウスモデルを適用することにより、コロニー形成及び毒性にMetQリポタンパク質に結合するメチオニンの影響を評価している。 CD-1非近交系マウス（n = 10）は野生型株のS. 1×10 7個の細菌を鼻腔内感染させた肺炎 D39 ルクス （PN149）またはその同質遺伝子変異体D39 ルクスΔmetQ（ 表1）。 metQ変異体（PN252）が生物発光D39肺炎球菌におけるmetQ遺伝子の挿入、欠失突然変異誘発によって構築した。したがって、metQ遺伝子の5 '配列および3'配列を、プライマー382および385を用いてPCRにより増幅した。 PCR産物をベクターにクローニングしたPGEMT-簡単に、プラスミドP559（ 表1）をもたらした。インバースPCRによりDNA-鋳型としてプラスミドpE89（ 表1）を用いて383および384（ 表2）metQ 配列 （ヌクレオチド777のヌクレオチド58）がPCRにより増幅エリスロマイシン耐性遺伝子カセット（ermBを ）によって削除され、置き換えられたプライマーを用いてプライマー対ermB_105/ermB_106（ 表2）。前述のように34 P563得られたプラスミドをコンピテンス刺激ペプチド-1を用いて肺炎球菌に形質転換した。リポタンパク質MetQ（Spd_0151）中の欠損変異体は、THY又はエリスロマイシン（5μg/ ml）を補充した血液寒天プレート上で培養した。
マウスの健康状態を連続的にモニターした。全く適切な対応や罹患率の兆しを見せていないときに動物を犠牲にした。また、肺や血液への鼻咽頭からの肺炎球菌の普及は、重症肺炎や敗血症につながる、monitoた生物発光を8時間ごとに測定することにより、赤。他の3匹のマウスは全く生物発光を示さず、（ 図3A）生存し、感染したマウスの各群では10匹のマウスのうち7は、病気の深刻な兆候を開発しました。首尾生物発光野生型D39 ルクスに感染したマウスは、32時間、敗血症に8月16日時間以内に進行し、感染後重症の肺感染症、（ 図3A）を開発しました。時点で96時間、すべてのマウスは、D39のルクスと肺炎や敗血症、感染後に発症したことが屈した。機能喪失メチオニン結合リポタンパク質が大幅に肺炎球菌の病原性を損なう。他の人が病気や肺炎の明らかな兆候を示さなかった32時間後にmetQ変異体に感染させた唯一の1のマウスは、弱い肺感染を示した。しかし、48時間後に重度の肺感染症は変異型に感染したマウスでも明らかになった。その結果、これらのマウスは敗血症を発症72時間感染後急性肺炎感染モデルでMetQの欠乏が肺炎を減衰することを実証、後72時間後の感染よりも瀕死状態になりました。
表1。ひずみとプラスミドリスト。
表2。プライマーリスト。制限部位には下線を付している。
| プライマー意図された用途 | プライマー名 | 配列（5'-3 '） |
| 挿入 - 欠失変異誘発 | ||
| + 5 sp_0149 'の増幅と 3 'フランキング領域 | 382 385 | 5'-CTACTACTAGAATTCATGCTGAACACACGGACAAC-3 ' 5'-AACCTTCCAAGCTGCAGCCGCTCCCTCCATGATAAAG-3 ' |
| sp_0149 + 5の逆PCR」と 3 '隣接領域（pGEMTeasy） | 383 384 | 5'-ATCATCATCATCG AAGCTT AGCCAAACCT GCGACTGTAG-3 ' 5'-ACTCACTCACTG AAGCTT ATCGCAGCTTA CCACACAGA-3 ' |
| 抗生物質カセットの増幅 | ||
| エリスロマイシン（ermBを ） | ermB_105 ermB_106 | 5'-GATGATGATGATCCCGGGTACCAAGCTTGA ATTCACGGTTCGTGTTCGTGCTG-3 ' 5'-AGTGAGTGAGTCCCGGGCTCGAGAAGCTT GAATTCGTAGGCGCTAGGGACCTC-3 ' |
図3。鼻腔内感染後のマウスにおける肺炎球菌普及の監視。 D39 ルクス又は同質遺伝子変異体D39luxΔmetQで鼻腔内感染させたマウスのA）生物発光イメージング光学。B）グループ化されたマウス（n = 10）の生物発光強度の値を示すボックスウィスカーグラフ内の示された時点のために。 拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
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Discussion
動物を用いて実施し、すべての実験は、地方自治体や倫理委員会によって承認されなければならない。 インビボ感染実験において、感染した動物の種々の宿主ニッチにおける細菌負荷は、様々な時点で、感染後に決定されなければならない。これらの実験条件下での動物は前の血液、咽頭、bronchoalvelar洗浄、あるいは、肺、脾臓、および脳などの臓器からの細菌の単離犠牲にしなければならない。ホスト·ニッチあたりの細菌数を計算し、病原性細菌に対する因子の効果を評価するために、血液または臓器は、細菌を回収し、固形培地上にプレーティング、続いて単離する必要がある。細菌負荷は、次いでCFUの計数により定量する。統計的に、各時点は、特定の実験条件下によるマウスの高い数に実験を処理する際の困難さをもたらすマウスの群を、必要とする有意データに到達する。
対照的にove_content ">、リアルタイムバイオイメージング法は、より少ない時間が要求するアプローチであり、それぞれの個々の細菌に感染したマウスは、ある期間にわたって複数回モニターすることができる。撮像技術は、異なる時に動物内細菌の可視化を可能にする時間は、感染後またはさらに長期間にわたってポイント。また、光画像解析ソフトウェアを用いて測定した生物発光はさらに、感染した動物によって放出される光子の定量化を可能にする。これは、マウスまたは全体の定義された領域に限定することができる動物を考えることができる。肺炎球菌の広がりが近交系CD-1マウスにおいて急速に進行することができるのでインビボ感染実験の肺炎球菌に感染したマウスでは、8〜12時間の間隔で監視されなければならない。リアルタイム撮像に使用することができる肺や血液中に鼻咽頭から肺炎球菌の輪廻を視覚化し、加えて、血液中の肺炎球菌の乗算腹腔内感染後の生物発光強度26,28,29の劇的な増加によってモニターすることができる。野生型肺炎球菌および同質遺伝子変異体の毒性の可能性を比較した場合、まずインビトロ培養条件下で失型遺伝子の効果を試験することが必須である。野生型細菌および変異体間の成長の違いは、化学的に規定された培地中で、特に、すでに低下し、細菌の適応度26を示している。このように、in vivoの条件下で観察減衰がコロニー形成および侵襲性感染の間にあまり堅牢な肺炎球菌につながる変更された生理機能に関連している。
しかしながら、このイメージング技術は、多くの場合、肺炎球菌病原性に遺伝子ノックアウトの効果を実証するのに十分でないことが述べられなければならない。他の病原性細菌の肺炎球菌と同様に、汎用性の高い微生物であり、多面的なメカニズムトンを進化させてきたOホストに遭遇し、免疫システムを回避する。その結果、肺炎球菌は、アドPspCにとしてマニホールドの機能を1手のタンパク質で生産し、他方では、彼らは、このように原因の変異4,17,18へのタンパク質の欠陥を補うことができ、同様の機能を発揮するいくつかのタンパク質に恵まれている、35。これらのシナリオでは、このような同時感染アプローチなど、他のin vivo感染実験は、植民地化や侵襲性感染27,28のための変異体における喪失タンパク質機能の効果を解読するのに使用されなければなりません。
肺炎球菌定着し、優先的に感染するが、ヒトだけでなく、ペットや動物園の動物4,36,37から単離した。毒性の影響を解読したり、トレーニング因子マウス感染モデルが使用される。ただし、すべての肺炎球菌株は、マウス病原性であり、そしてより重要なことに、マウスの感受性は、動物22の遺伝的背景に依存する。肺炎球菌の病原性の研究と保護の研究は、最近のCD-1交配マウスを用いて実施されています。しかし、ノックアウトマウスやトランスジェニックマウスは、侵襲性肺炎球菌疾患に対する宿主因子の役割を解読するために、高い関心でもある。またはノックアウトトランスジェニックマウスは、多くの場合、又はC57/BL6のBalb / cのようなマウス系統で生成される。これらのマウス株は、肺炎球菌感染症および高い感染用量は致死量を得るために必要とされる、50％（LD 50）に対する感受性が低い。肺炎球菌は、イメージングシステムによって検出に必要な様式で増殖するように制限されるので、感染量に応じてマウスのこの抵抗は、肺または血液に肺炎球菌普及のリアルタイム生体イメージングを損なうおそれがある。この制限を克服するために、画像をリアルタイムで普及することができるように、高い感染用量が利用されなければならない。このアプローチのリスクが普及があまりにも急速に進行するように、宿主の感受性の違いを探索することができないことがあり得る。
を介して感染させたマウスにおける肺炎球菌感染症を監視比較し、特徴づけるための優れたアプローチを示す。このアプローチは、特に野生型および変異体S.の間の病原性の可能性を比較するのに適している肺炎球菌 。
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Disclosures
著者らは、開示することは何もありません。
Acknowledgments
研究室での研究は、SHにドイツ学術振興（DFG HA 3125/3-2、DFG HA 3125/4-2）と、教育研究連邦省（BMBF）医療感染ゲノミクス（FKZ 0315828A）からの補助金によって支えられている。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Todd Hewitt broth | Carl Roth, Karlsruhe, Germany | X936.1 | |
| Yeast extract | Carl Roth, Karlsruhe, Germany | 2363.2 | |
| Blood agar plates | Oxoid, Wesel, Germany | PB5039A | |
| Kanamycin | Carl Roth, Karlsruhe, Germany | T832.2 | |
| Erythromycin | Sigma-Aldrich,Taufkirchen, Germany | E6376 | |
| Fetal bovine serum (FBS) | PAA Laboratories, Coelbe, Germany | A11-151 | |
| CD-1 mice, female | Charles River, Sulzfeld, Germany | CD1SIFE06W08W | female CD-1 mice, six to eight weeks old |
| Ketamin 500 mg, Curamed injection solution | Schwabe-Curamed, Karlsruhe, Germany | ||
| Rompun 2%, injection solution | Bayer Animal Health, Monheim, Germany | ||
| BD Plastipak 1 ml syringes | Becton Dickinson, Heidelberg, Germany | 300015 | sterile Luer-Lok syringes with needle |
| Gel Loader Tips | PeqLab | 81-13790 | MµltiFlex Tips |
| Hyaluronidase | Sigma-Aldrich | H3884-100mg | Hyaluronidase Type IV-S from Bovine test |
| Oxygen | Air Liquide, Düsseldorf, Germany | M1001L50R2A001 | |
| Isoflurane | Baxter, Unterschleißheim, Germany | ||
| pGEM-T Easy | Promega, Mannheim, Germany | ||
| Oligonucleotides | Eurofins MWG, Ebersberg, Germany | ||
| Qiaprep Spin Midiprep Kit | Qiagen, Hilden, Germany | 27104 | |
| PCR DNA purification kit | Qiagen, Hilden, Germany | 28106 | |
| Living Image 4.1 software | Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany | ||
| XGI-8 Gas Anesthesia System | Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany | ||
| IVIS Spectrum Imaging System | Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany | ||
| Biophotometer | Eppendorf AG, Hamburg, Germany |
References
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