Abstract
Rato adulto e medula espinhal células humanas neuronais estaminais / progenitoras (NSPCs) cultivadas em meio de crescimento enriquecido com fator permite a proliferação de multipotentes, e células-tronco neurais expansíveis auto-renovação. Em condições de soro, estes NSPCs multipotentes vai diferenciar, gerando neurônios, astrócitos e oligodendrócitos. O tecido colhido é enzimaticamente dissociada em uma solução de papaína-EDTA e depois dissociados mecanicamente e separado através de um gradiente de densidade descontínuo para produzir uma suspensão de célula única que é banhado em meio neurobasal suplementado com factor de crescimento epidérmico (EGF), factor de crescimento de fibroblastos básico (bFGF ), e heparina. Rato adulto NSPCs medula espinhal são cultivadas como neurospheres livre flutuação e adulto humanos NSPCs da medula espinhal são cultivadas como culturas aderentes. Sob estas condições, adultos NSPCs medulares proliferam, expressam marcadores de células precursoras, e pode ser continuamente aumentada passagem. Estas células pode be estudada in vitro em resposta a vários estímulos, e factores exógenos pode ser usada para promover a restrição de linhagem para examinar a diferenciação de células estaminais neurais. Multipotentes NSPCs ou sua progénie também podem ser transplantadas em vários modelos animais para avaliar a reparação regenerativa.
Introduction
NSPCs são células multipotentes comprometidos com a linhagem neural que podem se auto renovar e expandir rapidamente in vitro. Nós nos referimos a essas células como uma população mista de células estaminais / progenitoras neurais uma vez que eles exibem propriedades de células-tronco multipotentes auto-renovação e progenitores mais restritas. NSPCs são encontradas tanto no cérebro fetal e adulto e na medula espinal 1,2. No adulto, NSPCs são normalmente quiescentes e residir dentro nichos específicas, incluindo a zona subventricular alinhando os ventrículos laterais de 2-4, e a região periventricular torno do canal central da medula espinal 5,6.
Normalmente, NSPCs são cultivadas como neurospheres livre flutuação ou monocamadas como aderentes em meio isento de soro suplementado com EGF e bFGF, mitogens que selecionam para as populações de células estaminais / progenitoras. O ensaio neuroesfera originalmente desenvolvido por Reynolds e Weiss 2, é mais vulgarmente utilizado para a cultura eexpandir as células-tronco neurais. NSPCs mostram multipotência quando eles são plaqueadas em crescimento isento de factor de meio contendo soro, diferenciar-se em neurónios, astrócitos e oligodendrócitos. Multipotentes, NSPCs auto-renovação podem ser isoladas e cultivadas a partir da medula espinal roedor adulto quando o tecido cultivado inclui regiões do canal central 6,7. Uma vantagem potencial na utilização NSPCs gerados a partir da medula espinal adulta em oposição a geração de células a partir de outras regiões é que estas células de tecidos específicos mais se assemelham células na medula espinal que são perdidas ou danificadas após a lesão ou doença.
Trabalhos anteriores mostraram que neuroesferas derivadas da medula espinal adulto humano não podia ser propagada a longo prazo ou passadas para gerar números suficientes de células de 8,9. No entanto, com modificações em condições de cultura, nós informamos a expansão e transplante de NSPCs derivadas de medula espinhal humanos adultos, o que demonstra que a auto-renovaçãoe NSPCs multipotentes podem ser isolados a partir da medula espinal humano adulto de 10 doadores de transplante de órgãos. Em primeiro lugar, a remoção da maior parte da matéria branca durante a dissecção e a cultura destas células em um substrato aderente em meio de crescimento enriquecido com factor seleccionado para a proliferação de adultos humanos NSPCs da medula espinal. Neste protocolo, descrevemos a colheita da medula espinhal de ratos adultos e de dadores humanos de transplante de órgãos, a dissecção do tecido periventricular, e o isolamento, e expansão da cultura NSPCs.
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Protocol
Todos os procedimentos com animais são aprovados pelo Comitê Animal Care da University Health Network, Toronto ON Canadá, em conformidade com as políticas estabelecidas no Guia para o Cuidado e Uso de Animais Experimentais preparados pelo Canadian Council on Animal Care. Para a colheita de tecido da medula espinhal humana, a aprovação foi obtida a partir da Investigação Conselho de Ética University Health Network e do Trillium Gift of-Life Foundation, que supervisiona a doação de órgãos em Ontário, Canadá.
1. Preparação da dissecção Buffers e Meios de Cultura
- Para o isolamento da medula espinal de rato, a preparação de 100 ml de tampão de dissecção (1x PBS + 0,6% de glucose + 2% de penicilina-estreptomicina) e refrigerar. Para medula espinhal humana preparar 100 ml de tampão de dissecção (1x HBSS + 0,6% de glicose + 2% de penicilina-estreptomicina) e leve à geladeira.
- Preparação de 100 ml de meio isento de soro (SFM) e aquecer a 37 ° C. Para preparar SFM, adiciona-se 2 mM de L-glutamina, 100 ug / ml-penicilina estreptomicina, 2% B27, e 10% de mistura de hormona-Neurobasal Um meio. Para preparar a mistura de hormona, fazer uma diluição 1: meio / F12 1 DMEM contendo 0,6% de glucose, 3 mM de NaHCO3, 5 mM de HEPES, 25 ng / ml de insulina, 100 ng / ml de apo-transf errina, putrescina 10 pM, 30 nM de selénio, e 20 nM de progesterona.
- Prepara-se o enriquecida em factor de crescimento de EFH meios seletivos (SFM para adicionar 20 ng / ml de EGF, 20 ng / ml de bFGF, e 2 ug / ml de heparina) e aquecer a 37 ° C. Certifique-se de que EFH humano contém fatores de crescimento recombinantes humanos (ver Tabela de Materiais).
2. Colheita e dissecção de rato adulto Periventricular Spinal Cord Tissue
- Esterilizar instrumentos de dissecação em etanol e lave em soro fisiológico estéril, ou instrumentos de autoclave com antecedência. Submeter rato (6-8 semanas de idade) de uma injecção letal de pentobarbital de sódio (1 cc a 65 mg / ml) ou sobredose de anestésico (ou seja, 4% de isofluorano) de acordo com um protocolo aprovado pela instituição animal. Douse a parte traseira do rato com etanol a 70% e remover a pele na superfície dorsal com grandes tesouras de dissecação.
- Segurando a tesoura perpendiculares à superfície dorsal, transversalmente cortar a coluna vertebral acima dos membros posteriores. Use tesouras pequenas para cortar longitudinalmente o músculo dorsal que se sobrepõe à coluna vertebral em direcção rostral para expor os processos espinhosos.
- Começando na extremidade caudal exposto, inserir fórceps ou um pequeno instrumento de corte de osso romba extradurally para o aspecto lateral do canal vertebral no espaço entre a medula espinal e da coluna vertebral. Faça pequenos cortes na lâmina (arcos ósseos esquerda e direita dos processos espinhosos de cada lado das vértebras) e cuidadosamente descascar a lâmina para expor a medula espinhal (Figura 1A-D). Assegurar o ângulo das pás é raso e paralelo ao cabo de modo a medula espinhal subjacente não é danificado.
- Continue laminectomy na direção rostral para exposum e da medula espinhal torácica e cervical.
- Gentilmente extirpar a medula espinhal da coluna vertebral com uma pinça sem corte e uso microtesoura para cortar cuidadosamente as raízes para liberar o cabo. Coloque a medula espinal excisada numa placa de Petri contendo tampão de 4 ° C dissecção estéril de rato (descrito acima no ponto 1.1). Lave o tecido em tampão C dissecação 4 ° preparados na hora e usando uma tesoura cortar a medula espinhal transversalmente em 1 centímetro segmentos (Figura 1E).
- Para cada segmento de tecido, usar uma mão para segurar o tecido com uma pinça fina. Com a outra mão, usar cuidadosamente microtesouras para remover as meninges sobrejacente, matéria branca, e a maior parte da matéria cinzenta com o auxílio de um escopo de dissecação. Em alternativa, usar uma pinça fina (Dumont # 4) para descascar a maior parte da matéria cinzenta e branca, deixando apenas a região periventricular da medula espinal que inclui o ependyma e uma pequena quantidade de matéria cinzenta circundante (Figura 1F-H).
- A piscina do tecido periventricular dissecado em um prato de 10 centímetros estéril Petri contendo tampão dissecção rato frio.
3. Colheita e Dissecção da Human Adulto Periventricular Spinal Cord Tissue
Nota: O tecido da medula espinal humano é colhido a partir de doadores de transplante de órgãos adultos (dadores variaram na idade de 2 a 60 anos de idade) após os outros órgãos foram removidos para o transplante de órgãos. O Trillium Gift of-Life Program obtém consentimento para a remoção de tecido para fins de pesquisa de familiares do paciente e notifica a nossa equipa de colheita em uma forma oportuna de tal modo que temos sido capazes de colher os cabos dentro de 2 horas de pinçamento aórtico. Doadores adultos masculinos e femininos com sorologia negativa e não há infecções são aceitos.
- Tecido colheita de uma forma estéril na sala de operação através de uma abordagem anterior usando a mesma exposição anterior já dissecados para remoção de órgãos pelo órgão transpequipa de colheita lant.
- Expor a coluna vertebral anterior através de retração com grandes propagadores de costela e grandes afastadores de remo dos restantes tecidos e órgãos, incluindo os grandes vasos sanguíneos.
- Utilize uma serra de esterno montado com uma lâmina longa para cortar através dos discos intervertebrais nas extremidades rostral e caudal do comprimento desejado da coluna vertebral a ser ressecado. Ângulo da serra cerca de 45 ° medial para cortar uma calha triangular a partir da parte lateral dos corpos vertebrais apenas evitando o canal espinhal.
- Retirar em bloco os aspectos medial dos corpos vertebrais dos segmentos desejados com o auxílio de oste�omos curvas e malho tendo o cuidado de evitar o corte através da dura-máter. Em seguida, levante suavemente a dura coberta medula espinal com pinças dentadas e agudamente inciso as extremidades rostrais e caudais do cabo. Use a tesoura e pinça para longas transecto bilateralmente as raízes individuais.
- Colocar o segmento excisado da medula espinhal em 4 °; C tampão estéril (1x HBSS + 0,6% de glucose + 2% de penicilina-estreptomicina) num tubo de ensaio grande para o transporte para a sala de cultura do tecido.
- Nota: Em geral, uma 3 - segmento de 6 cm de medula espinal do torácica superior e / ou no meio-para-baixo nível torácico é removido na sala de operações sob condições estéreis, assim que possível após a interrupção da circulação e colocados em tampão estéril frio . O tempo decorrido entre a cessação da circulação e remoção da medula espinhal varia com o tempo necessário para colher os órgãos visados para doação e variou entre 45 minutos e 2 horas. Se o coração e pulmões também foram removidos, a dissecção pode ser feita muito rostral para a colheita de uma porção da medula cervical inferior bem.
- Dissecar o tecido da medula espinal humana, logo que possível após a colheita, geralmente no prazo de 3 horas. Remover a dura-máter e meninges outros com uma pinça. Lavar o tecido da medula espinhal em tampão C dissecção 4 ° frescos ecortado transversalmente em segmentos de 1 centímetro.
- Com o auxílio de um escopo de dissecação, excisar as meninges sobrejacente, matéria branca, e a maior parte da massa cinzenta usando uma pinça, uma pinça fina e microtesouras para cada segmento de tecido. A piscina do tecido periventricular dissecados, que inclui o ependyma e uma pequena quantidade de matéria cinzenta em redor, em um prato de 10 centímetros estéril Petri contendo tampão dissecação humana frio.
4. Isolamento e Cultura de rato adulto e NSPCs da Medula Espinal Humanos
- Execute as seguintes etapas assepticamente numa câmara de fluxo laminar.
- Picar o rato dissecado ou tecido periventricular humana em um milímetro 3 peças com microtesoura.
- Enzimaticamente dissociar o tecido moído com enzimas proteolíticas, utilizando o kit de dissociação de papaína como indicado na tabela de materiais / reagentes. Nota: Os componentes de reagentes incluem 4 frascos; Frasco 1: Solução Salina Equilibrada de Earle (EBSS), Frasco 2: contend papaínag de L-cisteína e EDTA, Frasco 3: desoxirribonuclease I (ADNase), Frasco 4: inibidor de protease ovomucóide com albumina de soro bovino (BSA).
Nota: Nota: A papaína é uma protease sulfidrilo que tem larga especificidade para substratos proteicos. A papaína aqui é derivado do látex da planta Carica papaya e degrada a maior parte dos substratos proteicos mais ampla do que as proteases pancreáticas. Durante o processo de dissociação há algum dano celular, causando ADN a ser libertado para o meio de dissociação que vai aumentar a viscosidade e tornar difícil a pipetagem. Assim, a DNase é incluída no procedimento de isolamento de células para digerir o DNA, sem danificar as células intactas. Ovomucoids glicoproteína são inibidores da protease utilizados para inibir a actividade da papaína, após o passo de dissociação.
- Na primeira utilização, reconstituir a mistura de inibidor de albumina de ovomucóide (4 frasco) com 32 mL de EBSS (frasco 1), e, em seguida, armazenar a 4 ° C e usado para isolamentos subsequentes.Nota: Isto produz uma solução a uma concentração eficaz de 10 mg de inibidor de ovomucóide e 10 mg de albumina por ml.
- Adiciona-se 5 mL de EBSS (frasco 1) para um frasco de papaína (frasco 2), obtendo-se uma solução a 20 unidades de papaina / ml em 1 mM de L-cisteína com EDTA 0,5 mM. Verificar que a solução de papaína aparece clara, após dissolução completa, de outra forma colocar o frasco num banho de água a 37 ° C durante 10 minutos até que a papaína esteja completamente dissolvido para assegurar a actividade total da enzima.
- Adicionar 500 mL de EBSS (frasco 1) para um frasco de ADNase (frasco 3) e misturar delicadamente como ADNase cisalhamento é sensível à desnaturação. Adicionar 250 ul da solução de ADNase para o frasco contendo a papaína, resultando numa concentração final de aproximadamente 20 unidades / mL de papaína e 0,005% de DNase. Guardar o equilíbrio do frasco ADNase para usar mais tarde.
- Colocar o rato picada ou tecido humano na solução de papaína como foi preparada na etapa 4.4 acima. Para o isolamento de tecido humano, o tecido dividido igualmente entre dois picadafrascos de papaína (cerca de 0,2 g / frasco).
- Incubar a 37 ° C com agitação constante sobre uma plataforma basculante para dissociar o tecido em solução de papaína activada. Incubar tecido de rato durante 45 min a 1 h, e os tecidos humanos durante 1 a 2 horas, dependendo da quantidade de tecido moído, cerca de 0,2-0,4 g, respectivamente.
- Tritura-se a mistura com uma pipeta de 10 ml a dissociar quaisquer pedaços de tecido restantes para se obter uma suspensão de células turva. Transferir a suspensão de célula (não incluem quaisquer pedaços de tecido não dissociado) em um tubo de 15 ml estéril e centrifugar a 300 xg durante 5 min à temperatura ambiente.
- Ressuspender as células peletizadas em meio contendo ovomucóide, um inibidor da papaína.
- Preparar a solução de ovomucóide por mistura de 2,7 mL de EBSS (1 frasco) com 300 ul da solução de inibidor de albumina-ovomucóide reconstituído (frasco 4) em um tubo de 15 ml. Adicione 150 ml de solução de ADNase (frasco 3) guardados no passo 4.4 acima.
- Descartar o sobrenadante a partir deas células sedimentadas e imediatamente ressuspender o sedimento de células na mistura albumina-inibidor ADNase diluída.
- Células intactas a partir de membranas celulares separadas por centrifugação através de um único passo de gradiente de densidade descontínuo.
- Prepara-se o gradiente de densidade descontínuo, adicionando 5 ml de solução de albumina-inibidor (vial 4) para um tubo de 15 ml, e usando uma pipeta de 5 ml, e suavemente camada lentamente a suspensão de células (preparado como descrito acima no passo 4.8) na parte superior de a solução de albumina-inibidor.
- Centrifugar a 70 xg durante 6 minutos à temperatura ambiente.
- Nota: A interface entre as duas camadas do gradiente deverá ser claramente visível, embora mistura mínima neste limite não afecta o resultado. Fragmentos de membrana permanecem na interface e células dissociadas sedimentar no fundo do tubo.
- Para as células de rato, descartar o sobrenadante e ressuspender o sedimento de células em 1 ml de meio de rato EFH (pré-aquecido a 37 ° C).Contagem de densidade de células vivas com um hemocitómetro e as células em placa num frasco de cultura T25, a uma densidade de 10 células / ul em EFH. O rendimento típico de células a partir de tecido de rato é cerca de 2 x 10 6 células, com cerca de 80% viability.If culturas clonais são desejadas células de sementes, com uma densidade de menos de 10 células / ul. Incubar os frascos a 37 ° C em 5% de CO 2 e permitir que as culturas a crescer em repouso durante uma semana para evitar a agregação das esferas.
- Para células humanas, descartar o sobrenadante e ressuspender o sedimento celular em 10 ml de meio de EFH humano (pré-aquecido a 37 ° C). Filtra-se a suspensão de células através de um coador de células de 40 um seguido de nylon com 30 ml de EFH para remover fragmentos de mielina e células de membrana. Centrifuga-se a 300 xg durante 5 minutos e ressuspender o sedimento de células em 1 ml de meio de EFH.
- Contagem de densidade de células vivas com um hemocitómetro e as células humanas placa em placas de cultura de 6 poços a uma densidade de 10 5 células / poço num volume totalde 5 ml de EFH / poço. O rendimento típico de células a partir de tecido humano é de cerca de 1 x 10 6 células, com cerca de 70% de viabilidade. Poços do pré-revestimento com um substrato aderente tal como Matrigel (ver nota abaixo). Dilui-se a uma razão de 40 ul de Matrigel: 1 ml de SFM.
- Nota: Em alternativa, podem ser utilizados outros substratos aderentes, tais como poli-D-lisina / laminina, fibronectina, ou colagénio.
- Incubar as placas a 37 ° C em 5% de CO 2 e permitir que as culturas a crescer em repouso durante uma semana.
5. Passaging de rato adulto e NSPCs medula espinhal humanos
- Rato NSPCs irá formar pequenas neuroesferas cerca de 70 um de diâmetro dentro de 1 semana de sementeira inicial; NSPCs passagem de rato semanais por recolha da suspensão de células, centrifugação a 300 xg durante 5 min, e triturando mecanicamente a pelete de células a dissociar as neuroesferas.
- Semente as células dissociadas em frascos T25 contendo rato fresco meio EFH. Alternativamente,usar 50% de meio condicionado para rato passaging. O rendimento típico de NSPCs rato no passaging é de cerca de 5 x 10 6 células, o que aumenta exponencialmente com o número de passagens.
- Para as culturas humanas, uma semana após o plaqueamento inicial, substituir metade do meio de cultura fresco com EFH duas vezes por semana para permitir que as células aderem ao substrato. Geralmente, 1-2 semanas mais tarde, uma vez que as células tenham anexado ao substrato, substituir todo o volume do meio de cultura duas vezes por semana com EFH fresco.
- Células subcultura antes de atingir confluência entre 4-8 semanas.
- Subcultura de células destacando as células a partir do substrato enzimaticamente (ver Tabela de Materiais) com 2 ml de enzima por poço incubado durante cerca de 10 min a 37 ° C. Recolhe suspensão de células, centrifugar a 300 xg durante 5 min, e ressuspender cuidadosamente a pelete de células em 1 ml de meio de EFH acabado de fazer.
- Contagem de células vivas com um hemocitómetro e as células placa em placas de cultura de 6 poços (pré-co-ATED como acima no passo 4.12) a uma densidade de 10 5 células / poço num volume total de 5 ml de EFH / poço. O rendimento típico de NSPCs humanos no passaging é de cerca de 2 x 10 6 células e, geralmente, isso vai dobrar com passagem. Geralmente, manter culturas com 50% de meio condicionado de EFH 2 - 3 vezes por semana entre passaging.
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Representative Results
Rato adulto células da medula espinhal crescidas em cultura em suspensão em meio EFH irá formar pequenas neurospheres (colônias de células indiferenciadas) dentro de uma semana de plaqueamento inicial. Em culturas primárias, a maioria das células plaqueadas morrerão de crescimento e factor de células estaminais que respondem irão proliferar e são seleccionados de EFH no meio. Por passagem 3, não haverá numerosas neuroesferas livre flutuação de cerca de 100 um de diâmetro (Figura 2A). As neuroesferas são redondos e de fase brilhante, e sob alta ampliação, microspikes-cílios como são vistos a partir de células que sobressai do lado de fora das esferas que são característicos de neuroesferas ao contrário de aglomerados de detritos celulares (Figura 2B). O rendimento típico de células a partir de tecido de rato é cerca de 2 x 10 6 células, com cerca de 80% de viabilidade. As neuroesferas não devem ser semeadas a uma densidade muito alta para evitar a agregação de agregados de células. Além disso, grandes neurospheres tornar-se difícil dissociar e células se tornarãonecrótico no centro da esfera. Isso também vai ocorrer se as culturas são deixados demasiado tempo antes passaging. Na cultura de EFH, rato adulto NSPCs medula espinal proliferar (Figura 2C) e expressam nestina (Figura 2D) um marcador para células percursoras, e baixos níveis de marcadores neuronais maduros (dados não mostrados).
Medula espinhal humano adulto culturas NSPC não crescem tão rapidamente quanto culturas NSPC rato. Se as células humanas da medula espinal são inicialmente cultivadas em suspensão, que vai formar agregados e aglomerados irregulares de pequenos números de células combinadas com detritos (Figura 3A). Passaging subsequente dessas culturas não promove o enriquecimento da população NSPC. No entanto, quando as células humanas são plaqueadas em EFH sobre uma monocamada aderente, o factor de resposta de crescimento NSPCs aderir ao substrato (Figura 3B) e meios de substituição subsequente de mielina e remove os detritos celulares (Figura 3C). O rendimento típico de cvaras de tecido humano é de cerca de 1 x 10 6 células, com cerca de 70% de viabilidade. Quando as culturas NSPC humanos tornam-se bem estabelecida como uma monocamada aderente, as NSPCs pode então também ser banhado em culturas de suspensão para formar neurospheres de livre flutuação. Na cultura de EFH, NSPCs medula espinal humanos adultos proliferam (Figura 3D) e expressam nestina (Figura 3E) e Sox2 (Figura 3F), um factor de transcrição mostrado para ser expressa por células estaminais neuronais, e níveis muito baixos de marcadores neuronais maduros (dados não mostrado).
Figura 1. Laminectomy da medula espinhal de ratos e dissecção da região periventricular. (A) na extremidade caudal exposta da medula espinal, fórceps são inseridos extradurally para o aspecto lateral do canal espinal. (B) as pequenas cortes são feitos na lâmina em cada Side das vértebras e a lâmina é cuidadosamente descascada para expor a medula espinhal. (C) A medula espinhal cervical exposto após laminectomia. (D) esquemática da secção transversal vertebral torácica da medula espinal e que mostra a localização dos cortes feitos por laminectomia (representado com linhas pontilhadas do vermelho). As lâminas e processo espinhoso (região sombreada) são removidos. (E) A espinal-medula é cortado transversalmente em segmentos de 1 centímetro. (F) As meninges sobrejacente, matéria branca, e a maior parte da matéria cinzenta é cuidadosamente removido usando microtesouras. (L ) tecido periventricular triturada. (H) Transversal secção de medula espinhal de ratos corados com Luxol rápido hemotoxilina e eosina azul e com contorno pontilhado que mostra a região periventricular dissecados. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2. rato adulto NSPCs medula espinhal. (A) passagem 3, numerosos neurospheres são vistos quando NSPCs da medula espinhal de ratos são cultivadas em livre flutuação cultura de suspensão. (B) neuroesferas são fase-brilhante e microspikes salientes das neurospheres (setas ) são aparentes em grandes ampliações. (C) dissociado neurospheres (passagem 3, dia 4) são semeadas em poços revestidos com Matrigel em meio EFH, fixos, e imunocoradas e contra-coradas com Hoechst para visualizar núcleos (azul). Em condições efh, ratos adultos NSPCs medula espinhal proliferar (como mostrado com Ki67 immunostaining) e (D) nestin principalmente expressa. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Figura 3. humano adulto NSPCs medula espinhal. (A) Quando inicialmente banhados em frascos de cultura, adultos humanos NSPCs medulares não crescem bem. As culturas primárias de livre flutuação em meio EFH (13 dias após o plaqueamento) mostra agregados de células e detritos. (B) Em contrapartida, em culturas aderentes primárias em EFH, NSPCs ter anexado ao substrato Matrigel (setas), exibido na 17 dias após chapeamento, e (C) em 41 dias in vitro. (D) em meio de EFH, adultos humanos NSPCs medulares proliferar, como mostrado com Ki67 imunocoloração (26 dias in vitro mostrado), e principalmente expresso (E) nestina (26 dias em vitro mostrado) e (F) Sox2 (66 dias in vitro mostrados). Os núcleos são contrastadas com Hoechst (azul)."target =" _ blank /ftp_upload/52732/52732fig3large.jpg "> Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
Durante a dissecção da medula espinal do tecido cuidados devem ser tomados para não danificar a medula espinhal durante a realização da laminectomia. É mais fácil isolar o tecido periventricular quando os segmentos da medula espinal estão intactos. Os segmentos de tecido deve ser totalmente imersa em tampão de dissecação e as meninges que recobrem e substância branca pode ser cortada como tiras longitudinais com microtesoura. Alternativamente, uma pinça fina pode ser usada para descascar a substância branca de distância.
Para o procedimento de isolamento para NSPCs, foi utilizado um método de dissociação de papaína-EDTA combinada com trituração mecânica para dissociar o rato e tecidos da medula espinal humano. Em comparação com outras proteases, papaína é menos prejudicial, mas eficaz, como previamente mostrado com dissociação de ratos pós-natal neurônios corticais 11. Descobrimos que a dissociação com apenas a trituração mecânica, muitas vezes utilizado com o tecido fetal, não é tão eficaz com o tecido a partir do adulto. Depois de the dissociação enzimática, trituração mecânica é importante para quebrar os fragmentos de tecido restantes. A trituração com dispersão celular repetitivo com uma pipeta devem ser realizados para que não haja fragmentos de tecido intactas restantes, resultando numa suspensão de células nublado. No entanto, a trituração não deveria ser realizada com muita força para evitar borbulhamento da suspensão celular e da morte celular resultante.
Para passaging, neuroesferas de rato são dissociadas numa suspensão de células individuais através de trituração mecânica, tal como foi originalmente descrito 2. No entanto, também pode ser neuroesferas dissociadas utilizando métodos enzimáticos, tais como a tripsina-EDTA, que não irão danificar os receptores da superfície celular ou interferir com a formação de esferas, enquanto a exposição enzimática é breve 12.
Há um número de vantagens em utilizar o ensaio de cultura NSPCs neuroesfera. É relativamente simples, reproduzível, e permite a rápida expansão da cel estaminais neuraisls 2,12. No entanto, neuroesferas são heterogéneos composta principalmente de células progenitoras que são mais restrito e apenas um pequeno número de células estaminais. Vários factores, tais como a densidade celular e passaging técnica pode afectar o fenótipo das culturas, e neuroesferas também pode formar a partir de células progenitoras 13. Neurospheres são altamente móveis e podem fundir mesmo sob condições de baixa densidade de células 14. Assim, o número de neuroesferas na cultura não representa o número de células estaminais. Para discriminar células-tronco neurais a partir de células progenitoras, deve-se usar o neural-formadoras de colónias ensaio de células 15,16.
Rato adulto NSPCs medula espinhal crescer bem como neurospheres em cultura em suspensão em meio suplementado EFH e são facilmente expansível. Em contrapartida, verificou-se que NSPCs medula espinhal humanos adultos crescem melhor como uma monocamada aderente 10. As células estaminais neurais humanas derivadas do cérebro pode ser sustentada a longo prazo em monocamada cultoure num meio quimicamente definido, na presença de mitogénios que promovem a sua capacidade proliferativa 17,18. Tal como descrito no presente protocolo, NSPCs pode ser isolado a partir da medula espinal adulta humana a partir de doadores de transplante de órgãos e passadas e expandida como uma monocamada aderente na presença de EGF, bFGF, e heparina 10. É mais fácil isolar NSPCs de mais jovem do que doadores mais velhos como as células expandir mais rápido, embora NSPCs ainda podia ser isolado de doadores até a nossa idade máxima de 60 anos 10. Nós examinamos uma variedade de substratos aderentes tais como Matrigel, fibronectina, colágeno tipo I, e poli-D-lisina / laminina, e encontrou-os para ser eficaz para a adesão de adultos medula espinhal humana NSPCs 10. Inicialmente tanto neurosphere e culturas aderentes conter agregados celulares, detritos e células mortas. No entanto, este detritos é progressivamente removido com repicagem eo crescimento médio neurobasal enriquecido com fator seleciona para as NSPCs proliferando. Também detritos e contaminação da mielina pode ser reduzida com dissecção cuidadosa e remoção de matéria branca dos segmentos de tecido da medula espinhal. Filtrar a suspensão de células resultante através de um filtro antes do plaqueamento também remove mielina.
Temos adultos humanos NSPCs da medula espinal em cultura como monocamadas aderentes durante pelo menos 9 meses, envolvendo cerca de 10 passagens, ainda que em culturas mais velhas há um risco aumentado para anormalidades karyotypic. Foram realizadas análises de cariótipo em NSPCs humanas cultivadas durante 4 meses, e encontraram um cariótipo diplóide normal, sem anormalidades cromossómicas (dados não mostrados). Nós também achamos que a proliferação ea capacidade de se diferenciar em oligodendrócitos de células diminuiu com o aumento do tempo em cultura. Por exemplo, a percentagem relativa de células positivas O4 diminuiu de 1,3% a 1 mês em cultura a 0,01% aos 4 meses, 10 em cultura. Ambos rato e NSPCs humanos são passíveis de criopreservação usando congelamento padrão conheceucochos e não mostram diferenças significativas no perfil fenotípico.
O isolamento e expansão de NSPCs multipotentes na cultura permite várias em aplicações in vitro, incluindo a análise de vários fatores sobre a diferenciação de células-tronco neurais de adultos. O aumento do número de NSPCs pode ser gerado in vitro e transplantadas em modelos animais, tais como lesão da medula espinal, acidente vascular cerebral, doenças neurodegenerativas e para examinar a resposta de reparação dessas células estaminais neurais in vivo.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1x PBS | Life Technologies | #10010023 | Dissection buffer |
| 1x HBSS | Life Technologies | #14175095 | Dissection buffer |
| D-glucose | Sigma | # G-6152 | Prepare 30% glucose stock solution for dissection buffer and hormone mix |
| Penicillin-Streptomycin | Life Technologies | #15140-148 | Dissection buffer and culture medium |
| Neurobasal-A | Life Technologies | #10888-022 | Culture medium |
| L-glutamine, 200 mM | Life Technologies | #25030-081 | Culture medium |
| B27 | Life Technologies | #12587010 | Culture medium |
| DMEM | Life Technologies | #11885084 | Hormone mix |
| F12 | Life Technologies | #21700-075 | Hormone mix |
| NaHCO3 | Sigma | # S-5761 | Prepare 7.5% NaHCO3 stock solution for hormone mix |
| HEPES | Sigma | #H9136 | Prepare 1M HEPES stock solution for hormone mix |
| Insulin | Sigma | #I-5500 | Hormone mix |
| Apo-transferrin | Sigma | #T-2252 | Hormone mix |
| Putrescine | Sigma | # P7505 | Hormone mix |
| Selenium | Sigma | #S-9133 | Hormone mix |
| Progesterone | Sigma | #P-6149 | Hormone mix |
| EGF, mouse | Sigma | #E4127 | Prepare 100 μg/ml stocks in B27 and aliquot; EFH medium |
| EGF, human recombinant | Sigma | #E9644 | Prepare 100 μg/ml stocks in B27 and aliquot; EFH medium |
| bFGF, human recombinant | Sigma | #F0291 | Prepare 100 μg/ml stocks in B27 and aliquot; EFH medium |
| Heparin, 10,000 U | Sigma | #H3149 | Prepare 27.3 mg/ml stocks in hormone mix and aliquot; EFH medium |
| Papain dissociation kit | Worthington Biochemicals | #LK003150 | Contains EBSS, papain, DNase, ovomucoid protease inhibitor with BSA |
| Sodium Pentobarbital | Bimeda – MTC Animal Health Inc | DIN 00141704 | |
| Tissue Forceps: Addisons | Fine Science Tools | #11006-12 | Serrated standard tip; micro-tip also available |
| Fine Forceps: Dumont #4 | Fine Science Tools | #11241-30 | |
| Microscissors | Fine Science Tools | #15024-10 | Round-handled Vannas |
| Rongeurs | Bausch & Lomb | N1430 | |
| 10 mm Petri dishes | Nunc | 1501 | |
| T25 Culture flasks | Nunc | 156367 | |
| 40 μm nylon cell strainer | VWR | CA21008-949 | |
| 6 well plates | Nunc | CA73520-906 | |
| Matrigel, growth factor reduced (100x) | Corning | 354230 | Thaw according to directions and freeze aliquots; use diluted at a ratio of 40 μl Matrigel: 1 ml SFM |
References
- Gage, F. H. Mammalian neural stem cells. Science. 287, 1433-1438 (2000).
- Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
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- Morshead, C. M., et al. Neural stem cells in the adult mammalian forebrain: a relatively quiescent subpopulation of subependymal cells. Neuron. 13, 1071-1082 (1994).
- Weiss, S., et al. Multipotent CNS stem cells are present in the adult mammalian spinal cord and ventricular neuroaxis. J Neurosci. 16, 7599-7609 (1996).
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