Summary
本协议描述了大鼠经同种异体血小板丰富血浆 (PRP) 或盐水溶液取出部分跟腱后愈合肌腱的评价过程。采用不同类型的分析方法对肌腱愈合的进展进行评价。
Abstract
本文介绍了用于观察 PRP 是否能对肌腱愈合有积极影响的实验程序。有4个主要步骤要遵循: 诱发跟腱损伤;准备 PRP 并注入 (或盐水溶液);取下肌腱;并进行生物力学、分子和组织学评价。在每个步骤中, 都详细描述了所有的过程和方法, 因此可以很容易地进行复制。
跟腱已经手术切片 (切除5毫米长的部分)。然后, 注射 prp 或生理盐水来研究 prp 是否对肌腱愈合有积极作用。三组40只动物 (共120只大鼠在本研究中使用) 分为2组: PRP 注射液组和生理盐水注射控制小组。大鼠在增加的时间点牺牲 (A 组: 5 天;B 组:15 天;C 组:30 天) 和肌腱被删除。90肌腱在进行 transcriptomic 分析前进行生物力学测试, 其余30肌腱提交组织学分析。
Introduction
凝血, 炎症过程和血小板的免疫调节作用是众所周知的1。最近, 已经证明它们还具有恢复性属性2,3。事实上, 在脱粒期间血小板释放各种细胞因子和生长因子 (VEGF、血小板因子、TGF、生长因子 I 和 HGF)。这些生长因子促进血管生成, 组织重塑和伤口愈合 (骨骼, 皮肤, 肌肉, 肌腱)2。离心自体血液产生血小板丰富的血浆 (PRP), 其中含有高血小板浓度取决于隔离方法 (3 和10倍的血液基线浓度)。事实上, 各种 PRP 制备技术不能提供相同的最终产品。到目前为止, 在这一问题上尚未达成国际普遍协议。总的来说, PRP 可能是治疗慢性肌肉骨骼疾病的一种有吸引力的治疗方案, 如肌腱、足底筋膜炎、骨关节炎和不愈合的4。它第一次用于口腔外科和种植4 , 以改善和加速骨愈合后放置一个牙科植入。在本研究中, 我们描述了一种可重现的方法, 允许获取 PRP 的动物实验4。
由于肌腱的损伤在运动员和体力工作者中经常被观察到, 加强愈合过程, 从而减少恢复的时间是非常感兴趣的5。新的治疗方法往往涉及使用生长因子, 而 PRP 的管理是一种简单和微创的方式, 以提供混合的内生生长因子4。
一些体外或动物研究表明, 通过释放生物介质来管理含有高水平血小板的血浆, 可以通过释放生物介质来刺激肌腱和韧带的修复6 ,7,8,9。此外, 其他研究表明, PRP 可刺激肌腱细胞的 i 型和 III. 类胶原合成9,10,11。也有人建议, PRP 可以减少基质金属蛋白酶的活化, 从而减少基体的降解。参与炎症过程的细胞可以产生 MMP-9, 它在炎症12引起的组织重塑 (生理学和病理) 中起着作用。
根据这一信息, 我们假设单个 PRP 注射到大鼠的跟腱, 可以改善修复组织的恢复过程和机械强度。这是通过测量愈合肌腱在恢复过程中的生物力学性质, 并通过进行组织学和分子分析, 以评估新形成的组织胶原重塑的测试。本研究的目的是观察单注射同种异体 PRP 是否会影响切片跟腱的愈合。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
对动物的护理和处理是按照国家科学院编写并由国家卫生研究院 (美国) 出版的《护理和使用实验动物指南》进行的。欧洲和国家立法得到了仔细的遵循。
1. 动物制剂
- 使用 132 2 月大的雄性大大鼠重320-450 克 (120 只老鼠进行实验, 12 只老鼠进行血液取样,图 1)。基于 Dell13, 每个组的15只老鼠足够的功率为 0.8 (如果指定的效果存在, 则发现统计意义的概率 80%)。
- 在传统的设施中, 所有的老鼠都在隔离的条件下, 在一个装有变站的常规设备里。在静脉 (单独通风的笼) 架上进行繁殖, 用 SPF (特定病原体免费) 大鼠被专门购买。
- 使用以下住房条件: 温度范围从19-24 °c;相对湿度: 40-60%;通风: 空气更新频率: 每小时 10-15;光/暗循环:12 h-12 h。
- 消毒所有锁定设备, 使用辐照床上用品。通过在笼子内放置无菌纸板托盘和毛巾系统地实施网箱浓缩。
- 允许进入受限条件下的区域: 新的实验室大衣, 面具, 手套, 鞋类, 和头发帽在入口处。
- 根据 Felasa14关于常规设施的建议, 每年对存放在肮脏床上用品上的定点动物进行菌落健康监测。保持四到五动物每笼, 与适当的辐照饮食和提供酸化水ad 随意。每日监控。
- 转移大鼠选择的手术干预, 过滤顶笼到手术室2小时前手术。
2. 手术方法
- 准备手术器械: 细剪刀, 钳, 两个止血钳, 和一个针架。在所有的程序, 戴手套, 面具, 罩, 和实验室大衣。
- 将大鼠随机分为两组 (PRP 和盐水溶液)。
- 把老鼠从笼子里拿出来称重。使用编号的耳朵标记来识别老鼠。为了避免眼部干燥, 请将 waterdrops 放在角膜上。
- 麻醉鼠腹腔与甲苯噻嗪 (10 毫克/千克体重) 和氯胺酮 (80 毫克/公斤的体重)。要确认麻醉, 请将动物置于心肺监测之下, 检查是否有眼部反射。
- 在颈部区域注射50µL 的丁丙诺啡 (0.01-0, 05 毫克/千克, 每8-12 小时) 作为止痛药。
- 用电动剃须刀剃掉左后肢, 用 3 betadine/酒精 (稀释 1:10) 溶液的交替磨擦消毒, 然后将老鼠放在一个温暖的垫子上 (20 °c) 下解剖显微镜。将大鼠放在侧褥疮上, 用腿在上级位置进行手术。用手术钳握住爪子。
- 使用剪刀, 在左跟腱周围的皮肤上做一个小的侧向切口 (20-25 毫米), 用细剪刀解剖筋膜以暴露跟腱复合体 (图 2a)。
- 用剪刀把跖肌腱取下 (图 2b)。
- 剪断跟腱横向5毫米到其跟骨插入, 并删除一个5毫米长的部分使用剪刀。不要缝合肌腱 (图 2c, 2d)。
- 用可吸收纱缝合筋膜, 然后用 overjet 缝合 (连续缝合)。也可以使用单丝缝合, 防止皮肤进入手术切口。
- 把老鼠放在加热灯下, 直到醒来, 然后把老鼠放回笼子里 (58 x 38 厘米) (不给出): 不进行固定化.
3. PRP 准备15
- 麻醉甲苯噻嗪 (10 毫克/千克体重) 和氯胺酮 (80 毫克/千克体重) 的供体大鼠腹腔注射。PRP 注射液术后2小时进行, 无再麻醉。
- 注射50µL 的丁丙诺啡作为止痛药。
- 收集全血 (每只老鼠20毫升, 最终出血) 的心脏穿刺到含有3.2% 缓冲柠檬酸钠 (0.109 米, 抗凝血) 的不育管。然后用心内注射弄死大鼠。
- 为了获得 PRP, 将血液离心10分钟, 在 150 x g 和室温。这一初始的低速离心步骤产生两个不同的阶段: 一个较低的阶段, 由红细胞 (红细胞) 占总体积的约 80-90%, 和一个上阶段由富含血小板的血浆 (PRP) (通常为10-20% 的血液示例)。
- 使用塑料转移吸管轻轻地将 PRP (上部相) 收集在二次塑料管上。由于 PRP 与红细胞之间的界面非常松散, 不能使吸管太靠近界面。如果处理得当, 在 PRP 中污染红细胞应低于 0.05 x 103单元格/µL. 丢弃余下的下部和原血收集管。
- 确定收集的 PRP 的体积和测量血液分析仪的血小板计数。在接下来的步骤中, 需要使用这些值来调整血小板浓度。血液细胞计数也是有用的评估潜在的污染与红细胞和 WBCs. 在 PRP 的血小板浓度在这个阶段通常是 1-1.5 x106/µL。
- 在 1000 x g 和室温下进行10分钟的 PRP 第二次离心。这种高速离心步骤产生松散的血小板颗粒和上清, 由自体血小板贫乏血浆 (PPP) 组成。使用步骤3.6 中确定的值, 计算要丢弃的上清液的体积, 以浓缩 PRP 并达到 2.5 x106/µL 的最终浓度。
- 使用塑料转移吸管轻轻地在二级塑料管中收集上清 (PPP), 在步骤3.7 中计算最终体积的大约两个。由于颗粒松散, 当 PPP 被丢弃时, 大量的血小板丢失, 因此有可能减少最终所需的浓度。
- 用温和重复的吹打仔细并用重悬血小板颗粒与剩余清液。测量这个浓缩的 PRP 的血小板计数。如果需要, 添加适当体积的自体 PPP 达到最终目标浓度。
注: 使用 PRP 在3小时内准备。 - 添加50µL 的 CaCl2 (11 mEq 10 毫升) 每毫升 PRP 激活血小板。
- 将50µL 的新鲜 PRP 或盐水溶液与21G 针直接插入缝合手术部位, 约1小时后进行准备。在这段时间, 保持 PRP 在室温下。
- 在手术后和跟腱切除前密切监测大鼠的功能恢复。
4. 切除跟腱和生物力学测试16
- 5、15或30天后5, 对老鼠进行称量。然后, 麻醉与甲苯噻嗪 (10 毫克/千克体重) 和氯胺酮 (80 毫克/千克体重) 腹腔注射。
- 注射50µL 的丁丙诺啡作为止痛药。在牺牲动物之前去掉肌腱, 尽可能长时间保持生理条件。
- 剃掉左后肢, 把老鼠放在解剖显微镜下。将大鼠放在侧褥疮上, 用腿在上级位置进行手术。用手指握住爪子。
- 在前一个手术部位做一个小切口 (10 毫米), 并延伸至三头肌 suralis 暴露。
- 为了去除跟腱的愈合, 将跟骨横向5-10 毫米的跟腱连接。然后解剖一个部分的三头肌 suralis, 这是附加到跟腱 (图 3b)。肌肉部分必须足够大, 以适应低温颚 (图 3c-d)。使用镊子将样品立即放入冷冻颚 (图 3e)。
- 切除肌肌腱-骨复合物后, 弄死大鼠心内注射戊巴比妥 (200 毫克/千克)。通过评估心脏节律和呼吸缺乏15分钟来确认死亡。
- 将肌肉单元放入下颚 (图 3e), 关闭它并垂直放置到通用测试机 (106.2 kN,图 3a)。然后在机器的下部夹具之间修复骨骼 (图 3f)。
- 在上颌骨的两个盆地中加入液氮, 以冻结肌肉, 使其在拉伸试验期间不变形, 比肌腱坚硬。
- 当冻结区到达金属夹边时, 开始拉伸试验, 这样肌腱就能保持其结构。将机器的位移率设定在1毫米/秒的恒定速度直到破裂。记录在计算机上牛顿 (N) 给出的极限抗拉强度 (众信)。
- 要计算横截面积, 请将两个相机垂直放置, 形成椭圆形形状, 拍照。
- 为了解释愈合肌腱横截面积的差异, 将众信正常化为单位面积 (N 每平方毫米), 代表组织所经历的机械应力。
5. 组织学分析
注: 每组15肌腱进行组织学分析。
- 切除后, 立即将跟腱浸入4% 多聚甲醛以保持其结构 (1 毫米的组织每小时固定, 所以固定时间因肌腱大小而异)。
- 用70% 乙醇代替多聚甲醛, 在这个溶液中至少留出一晚。
- 将肌腱放在一个带有孔的小塑料容器中, 然后将该容器放入新鲜的70% 乙醇溶液中1小时。
- 将容器放置在95% 乙醇中, 重复1小时。
- 将容器放置在100% 乙醇中, 重复1小时。
- 将容器放置在100% 二甲苯中, 重复1小时。
- 现在安置塑料容器, 包含肌腱, 在液体石蜡 (56 °c) 和离开它隔夜。
- 使用嵌入站 (配有熔融蜡、热板和冷板), 选择最适合组织样品的金属模具, 然后用少许液体石蜡填充它, 以使底座覆盖。
注: 定位样品以获得切片的垂直剖面。 - 当样品正确定位时, 用液体石蜡将模具填满, 放到冷冻机上。让它冷却至少15分钟。
- 从石蜡块中取出, 放在冰上至少30分钟。
- 准备几张干净的玻璃滑梯, 把一些去离子水滴在他们身上。
- 在切片, 削减5µm 部分的区块 (只使用部分从肌腱的中部), 并将该节放在幻灯片上。
- 将幻灯片放在65摄氏度的加热烤箱中, 使石蜡开始融化, 将组织粘到玻璃上。
- 将含有石蜡切片的幻灯片放在切片架中。
- 现在 deparaffinize 和水化组织通过放置在以下连续的浴池:
8分钟在二甲苯 (浴 1)
4分钟在二甲苯 (浴 2)
2分钟100% 乙醇
2分钟95% 乙醇
2分钟70% 乙醇
去离子水2分 - 对于苏木精-伊红染色, 将组织置于下列溶液中。
- 将组织浸泡在苏木精溶液中8分钟 (1 克苏木精一水合物, 0.2 g 克钦体3, 50 克 AIK (所以4)2. 12H2O; 200 毫升甘油; 用蒸馏水调整至1升)。
- 在自来水下浸泡8分钟的组织。
- 将组织浸泡在三十年代的伊红溶液中 (0.25% 在100毫升蒸馏水中含有200µL 的未稀释醋酸)。
- 在自来水下浸泡2分钟的组织。
- 对于马尾松的三色染色, 请按照下列步骤操作。
- 在补液后, 将各部分放置在带有铁明矾的容器中 (0.5 克 (NH4) Fe (因此4)2. 12H2o 在10毫升 H2o) 并关闭容器。用微波炉加热3分钟, 280 瓦特。
- 让它冷却一分钟, 然后用去离子水冲洗。
- 将节放在一个封闭的容器中, Regaud 的苏木精溶液 (0.5 克苏木精溶解在50毫升 H2O 在50°c, 然后添加5毫升95% 乙醇和5毫升甘油), 加热它九十年代在 280 W。
- 用去离子水冲洗。
- 将剖面放置在苦味酸酸溶液中 (在甲醇饱和度) 为3分钟, 在运行自来水下冲洗5分钟, 然后将其放在去离子水中几秒钟。
- 现在放置在酸性品红 (0.5 克50毫升 H2O 包含0.25 毫升未稀释的乙酸) 为 5 s 和冲洗在自来水下, 直到染料消失。
- 在钼酸溶液中孵育切片 (0.5 克, 50 毫升 H2O) 为5分钟, 将其放在去离子水中几秒钟。
- 将各节置于浅绿色 (0.5 克50毫升 H2O, 含有0.25 毫升未稀释醋酸) 溶液, 另5分钟, 并将其置于自来水中, 直到染料消失。
- 现在再次脱水组织。
- 将切片浸入70% 乙醇中1分钟。
- 将切片浸入95% 乙醇中1分钟。
- 将切片浸入100% 乙醇中1分钟。
- 将该剖面浸入二甲苯 (浴 1) 中1分钟。
- 将该剖面浸入二甲苯 (浴 2) 中1分钟。
- 拆卸部分, 而不去除过多的二甲苯, 并在样品上放一滴安装介质。
- 在上面放一个盖玻片 (不引发任何气泡), 让它硬化至少2小时。
- 水解 6% HCl 中每组5个组织学切片 (每个不同的肌腱), 并测定胶原蛋白的浓度, 方法是在5µm 无瑕切片中测定羟脯氨酸作为指数。
- 使用制造商的软件对分区区域的结果进行规范化。
- 通过计算机辅助分析, 对部分带有浅绿色染色的部分进行染色, 以可视化和量化纤维胶原蛋白。
- 扫描各部分, 并使用 IrfanView 软件转换为灰色细微差别的图片。使用软件进行半量化 (例如, 数量一)。
6. 分子评价
- 肌腱破裂后, 在机械测试发生, 采取的样品, 捕捉冻结他们在液氮, 并储存在-80 °c (PRP 和盐水溶液)17。
- 使用商业总 rna 套件隔离总 rna17。
- 通过 rt-pcr17,18, 测量胶原蛋白 (i. 和 III.)、基质金属蛋白酶 (MMP-2、MMP-3 和 MMP-9) 和 tenomodulin (TNMD) 的表达。
- 将 mRNA 的表达式级别规范化为 28S19的级别。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
结果以平均标准偏差表示, 并与方差分析进行了比较。使用了双向方差分析和后端测试 de Scheffé (即参数测试)。
引起大鼠非损伤性跟腱断裂的最终抗拉强度为 42.0, 5.7 n (n = 10)。5天后, 两组抗拉强度显著增加 (p < 0.0001)。对照组比较, 在任何时间测量, 特别是在15和30天, PRP 组的信众均较高。通过测量在进行生物力学评估前被移除的肌腱的横截面积 (11.4 5.5 毫米的非损伤肌腱), 发现在5天, 它在生理盐水治疗组中较大.但在15和30天, PRP 组的横截面积较大, 但与生理盐水处理组 (图 4和图 5) 相比, 此数量更具变数。
用苏木精-伊红染色法对肌腱进行组织学评价, 显示5天细胞构成高, 术后减少 (生理盐水与 PRP 组无显著性差异)。马尾松的三色染色显示, 在5和15天, PRP 组的纤维胶原蛋白含量较高。然而, 两组的染色强度在注射后30天是相似的 (图 6)。通过对样品的光绿染色得到的半量化结果表明, 在5和15天, PRP 组的强度较高 (没有统计学意义), 但在30天, 两组之间没有观察到差异。
数据通过测量氨基酸, 羟脯氨酸的量, 这是特定于胶原蛋白, 确认组织学半定量 (5 天: PRP 组更大的价值) 规范化。PRP 组胶原浓度不稳定, 两组30天稳定。对愈伤组织的体积进行了测量, 发现在治疗过程的第一阶段, 经 PRP 处理的动物体内的生长量明显较大。结合起来, 这些结果意味着, PRP 注射到受损的肌腱导致了重要数量的纤维胶原沉积。
测量几个分子的表达水平表明, 在无损伤肌腱, III. 和 TNMD 比在15天的愈合肌腱的数量少 (2.5-3.0 倍), 但在组之间的表达没有差异。基质金属蛋白酶存在于愈合肌腱的12倍高浓度。此外, 在30天, PRP 组 COL1A1 显著增加, 并发现 COL1A1 表达与信众的正相关。在这两组中, 据发现, 三人在1天至14天之前以很高的数量表示, 在减少之前 (两组相同)。MMP-9 浓度在两组均无改变, 但 MMP-2 和 MMP-3 在愈合期内存在较高浓度。在5天, TNDM 在 PRP (p < 0.03) 中的表达量较高, 但在15天和30日之间减少。
图 1: 研究的实验设计.请单击此处查看此图的较大版本.
图 2: 外科手术。
(a)在切除周围筋膜后肌腱复合体。
(b)删除跖肌腱的.
(c)删除跟腱的一段。
(d)已删除的2个肌腱。请单击此处查看此图的较大版本.
图 3: 生物力学测试
(a)万能试验机 (106.2 kN)。
(b)将固定在冷冻颚内的肌肉肌腱骨复合物。
(c)上、下低温颚
(d)上和下低温颚
(e)将复杂放入低温颚
(f)包含固定在机器中的肌肉-肌腱-骨复合体的闭合的低温颚。请单击此处查看此图的较大版本.
图 4: 生物力学测试结果
术后不同时间点, 在对照组和 PRP 组织中以牛顿 (N) 表达的抗拉强度。随着时间的推移, 两组中的信众均有增加, 而 PRP 组在手术后15天和30日表现出显著的高值。
误差线定义标准偏差 (SD)。请单击此处查看此图的较大版本.
图 5: 生物力学测试结果
用平方毫米表示的肌腱横截面积 (mm2)。PRP 组的横截面积明显大于15天。之后, 这一节在两组中都相似。
误差线定义标准偏差 (SD)。请单击此处查看此图的较大版本.
图 6: 组织学结果
由控制和 PRP 组成的跟腱的典型纵断面, 沾有马尾松的三色。刻度条 = 100 µm。5天, PRP 组肌腱内有更强的绿色染色。请单击此处查看此图的较大版本.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
血小板对肌腱愈合过程的早期炎症期至关重要。当这些血小板暴露于结合组织或诱发凝血的因素时, 它们将释放在α颗粒中储存的生长因子。由于这种相互作用, 胞外基质大分子综合升华, 间充质细胞增殖。血小板也有一个趋化活性的祖细胞在血液循环, 增强血管生成和刺激细胞分化6,20。
生物力学测试是使用专门为体外拉伸试验的大鼠与 15的跟腱进行的一种夹紧装置进行的。冷冻颚通过添加液氮使肌肉结冰, 而跟骨是标本的下部, 直接固定在机器中。当肌肉完全僵硬时, 开始拉伸试验是非常重要的, 但是肌腱仍然是灵活的。该技术避免了组织损伤, 保持了机械完整性。此外, 此技术简单、安全、不可压缩, 而且可明显重现, 因为一些研究使用了此方法4,15。
为支持机械效果, 部分肌腱进行组织学评价。苏木精-伊红染色显示了愈合组织的伟大概述, 并提供了有关细胞数量和胶原蛋白的一般信息。此外, 测量 hydroxyprolin 是有用的, 因为它是一个氨基酸, 只有在胶原蛋白, 并允许 objectivation 的组织学数据。然而, 有必要做马尾松的三色染色, 因为它显示了更详细的信息, 胶原纤维的沉积和浓度的 4.
虽然 prp 治疗肌腱的 III. 型胶原 mrna 水平未发生改变, 但在30天的 i. 型肌损伤肌腱中的浓度较高。此前已表明, PRP 干扰巨噬细胞的增殖和 IL-121的生产, 从而避免在愈合过程的早期阶段11中出现过度的炎症反应。PRP 有可能刺激细胞的增殖, 活化代谢通路, 并将间充质干细胞转化为活跃的肌腱细胞。
在 PRP 组肌腱中高浓度的 TNDM 表明, 注射分子可以吸引血液循环中的细胞, 并诱导分化为 tenocyte 表型11。这些结果表明, 只有一个人注射 PRP 入破裂的跟腱对早期愈合阶段有积极的影响, 并导致更高的机械强度。
一些前临床研究已经表明, PRP 改善愈合过程, 和不同的生长因子有特定的行动在这个过程中22。Mazzocca 和他的团队表明, PRP 刺激细胞增殖的肌肉, 骨骼和肌腱。在不同的准备, 强烈集中的 PRP 没有任何白细胞被证明是最有效的治疗23。McCarrell et al。做了类似的实验, 测试了在马腱上含有不同浓度的 prp 和白细胞的 prp 的几种制剂。含有血小板中间浓度和高浓度白细胞的制剂导致了更高的炎症细胞因子的释放, 如 IL-1ß和 TNFa, 胶原蛋白合成较低。与高浓度血小板和白细胞的混合物也导致炎症细胞因子的增加, 但抑制胶原合成。总之, 这意味着如果血小板浓度过高, 胶原合成和细胞代谢减慢了24。et al。已确认这些发现25。因此, 最有效的 PRP 制剂将含有血小板浓度低于 106血小板/µL 和无白细胞。
使用 PRP 的一个主要优点是 autogenity。虽然在我们的研究中, 我们使用同种异体 PRP 牺牲捐献的老鼠有足够的血量。此外, 从手术鼠身上取血会使他们的血液过度衰弱。这项研究的另一个局限性是, 所有的破裂都是急性的, 并表现在健康的肌腱上, 这在人类中并不总是如此, 因为肌腱经常因为先前的变性而破裂。这种模型是基于尖锐肌腱损伤, 没有明确的结论可以得出的退化 tendinopathies。
使用这种方法, 有一些关键的步骤要记住, 第一个是准备的 PRP, 应尽可能重复。另一个关键步骤是外科手术: 切除肌腱和肌肉肌腱复合体应以可重复的方式进行, 以避免任何偏见。最后, 生物力学测试的准备工作: 添加液氮, 以冷冻肌肉, 这是非常重要的是, 肌腱没有冻结在这个过程中, 因为它可能导致有偏见的结果, 因为肌腱僵硬将改变。这也是研究的一个局限性, 因为没有标准化的协议来保证肌腱的弹性不被修改。
我们基于 Virchenko et al开发的方法。26, 但它使用了可保护肌腱免受夹具诱导的外部侵略的低温颚。这种方法的主要优点是它是可重现的, 即使它还没有标准化。它给出了如何在人类身上治疗肌腱损伤的想法, 尽管老鼠的实验并不总能很好地治疗人体损伤。这种方法的适应版本很可能在将来治疗这些损伤时有用, 因为它易于使用, 成本相对较低, 而且比其他方法更少侵入。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
没有宣布利益冲突。
Acknowledgments
这项研究得到了里昂 Frédéricq 基金标准 de 列日和勒琼-Lechien 赠款的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Xylazine (Xyl-M) | VMD | none | anesthetic |
| Ketamin (Jétamine 1000 CEVA) | CEVA Santé Animale | none | anesthetic |
| Buprenorphin (Vetergésic Multidosis) | ALSTOE | none | Painkiller |
| iso-Betadine | MEDA-Pharma | none | Desinfectant |
| resorbable yarn Vicryl 6/0 | Johnson & Johnson | ||
| Nembutal | CEVA Santé Animale | none | Anesthetic |
| Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | P6148 | Preserves structure of the tissue |
| Isopropanol 100% | VWR | 20,922,364 | |
| Ethanol 95% | VWR | 20,823,362 | |
| Xylene | VWR | 28973.363 | |
| Paraffin | VWR | LEIC3950.1006 | |
| Hematoxylin | Millipore | 1.15938.0025 | Colorant |
| Eosin | Millipore | 1.15935.0100 | Colorant |
| Eukitt | Sigma-Aldrich | 3989 | Mounting Medium |
| CaCl2 |
References
- Kaux, J., Degrave, N., Crielaard, J. Platelet rich plasma traitement des tendinopathies chroniques? Revue de la littérature. Platelet rich plasma treatment of chronic tendinopathies? Review of literature. J. Traumatol. du Sport. 24, 99-102 (2007).
- Anitua, E., et al. Autologous preparations rich in growth factors promote proliferation and induce VEGF and HGF production by human tendon cells in culture. J. Orthop. Res. 23, 281-286 (2005).
- Bosch, G., et al. Effects of platelet-rich plasma on the quality of repair of mechanically induced core lesions in equine superficial digital flexor tendons: A placebo-controlled experimental study. J. Orthop. Res. 28, 211-217 (2010).
- Kaux, J. F., Drion, P., Croisier, J. L., Crielaard, J. M. Tendinopathies and platelet-rich plasma (PRP): From pre-clinical experiments to therapeutic use. J. Stem Cells Regen. Med. 11, P7-P17 (2015).
- Maffulli, N., Wong, J., Almekinders, L. C. Types and epidemiology of tendinopathy. Clin. Sports Med. 22, 675-692 (2003).
- Molloy, T., Wang, Y., Murrell, G. The roles of growth factors in tendon and ligament healing. Sports Med. 33, 381-394 (2003).
- Lyras, D. N., et al. The effect of platelet-rich plasma gel in the early phase of patellar tendon healing. Arch. Orthop. Trauma Surg. 129, 1577-1582 (2009).
- Aspenberg, P., Virchenko, O. Platelet concentrate injection improves Achilles tendon repair in rats. Acta Orthop. Scand. 75, 93-99 (2004).
- Visser, L. C., et al. Growth Factor-Rich Plasma Increases Tendon Cell Proliferation and Matrix Synthesis on a Synthetic Scaffold: An In Vitro Study. Tissue Eng. Part A. 16, 1021-1029 (2010).
- Zhang, J., Wang, J. H. -C. Platelet-Rich Plasma Releasate Promotes Differentiation of Tendon Stem Cells Into Active Tenocytes. Am. J. Sports Med. 38, 2477-2486 (2010).
- Kajikawa, Y., et al. Platelet-rich plasma enhances the initial mobilization of circulation-derived cells for tendon healing. J. Cell. Physiol. 215, 837-845 (2008).
- Pasternak, B., Aspenberg, P. Metalloproteinases and their inhibitors-diagnostic and therapeutic opportunities in orthopedics. Acta Orthop. 80, 693-703 (2009).
- Dell, R. B., Holleran, S., Ramakrishnan, R. Sample size determination. ILAR J. 43, 207-213 (2002).
- Mähler Convenor, M., et al. FELASA recommendations for the health monitoring of mouse, rat, hamster, guinea pig and rabbit colonies in breeding and experimental units. Lab. Anim. 48, 178-192 (2014).
- Kaux, J. -F., et al. Étude comparative de cinq techniques de préparation plaquettaire (platelet-rich plasma). Pathol. Biol. 59, 157-160 (2011).
- Wieloch, P., Buchmann, G., Roth, W., Rickert, M. A cryo-jaw designed for in vitro tensile testing of the healing Achilles tendons in rats. J. Biomech. 37, 1719-1722 (2004).
- Kaux, J. -F., et al. Vascular Endothelial Growth Factor-111 (VEGF-111) and tendon healing: preliminary results in a rat model of tendon injury. Muscles. Ligaments Tendons J. 4, 24-28 (2014).
- Docheva, D., Hunziker, E. B., Fässler, R., Brandau, O. Tenomodulin is necessary for tenocyte proliferation and tendon maturation. Mol. Cell. Biol. 25, 699-705 (2005).
- Lambert, C. A., Colige, A. C., Munaut, C., Lapière, C. M., Nusgens, B. V. Distinct pathways in the over-expression of matrix metalloproteinases in human fibroblasts by relaxation of mechanical tension. Matrix Biol. 20, 397-408 (2001).
- Nurden, A. T., Nurden, P., Sanchez, M., Andia, I., Anitua, E. Platelets and wound healing. Front. Biosci. 13, 3532-3548 (2008).
- Woodall, J., Tucci, M., Mishra, A., Benghuzzi, H. Cellular effects of platelet rich plasma: a study on HL-60 macrophage-like cells. Biomed. Sci. Instrum. 43, 266-271 (2007).
- Taylor, D. W., Petrera, M., Hendry, M., Theodoropoulos, J. S. A systematic review of the use of platelet-rich plasma in sports medicine as a new treatment for tendon and ligament injuries. Clin. J. Sport Med. 21, 344-352 (2011).
- Mazzocca, A. D., et al. The positive effects of different platelet-rich plasma methods on human muscle, bone, and tendon cells. Am. J. Sports Med. 40, 1742-1749 (2012).
- McCarrel, T. M., Minas, T., Fortier, L. A. Optimization of leukocyte concentration in platelet-rich plasma for the treatment of tendinopathy. J. Bone Joint Surg. Am. 94 (1-8), e143 (2012).
- Boswell, S. G., et al. Increasing platelet concentrations in leukocyte-reduced platelet-rich plasma decrease collagen gene synthesis in tendons. Am. J. Sports Med. 42, 42-49 (2014).
- Virchenko, O., Aspenberg, P. How can one platelet injection after tendon injury lead to a stronger tendon after 4 weeks?: Interplay between early regeneration and mechanical stimulation. Acta Orthop. 77, 806-812 (2006).
