Summary

Arbeidsflyt basert på kombinasjonen av isotopanrikning Tracer eksperimenter for å undersøke mikrobiell metabolismen av flere næringsstoffer kilder

Published: January 22, 2018
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver en eksperimentelle prosedyren kvantitativt og omfattende undersøke metabolismen av flere næringsstoffer kilder. Denne arbeidsflyten, basert på en kombinasjon av isotopanrikning tracer eksperimenter og en analytiske prosedyren kan skjebnen til brukte næringsstoffer og metabolske opprinnelsen til molekyler synthetized av mikroorganismer skal fastsettes.

Abstract

Studier innen mikrobiologi stole på gjennomføringen av en rekke metoder. Spesielt bidrar utviklingen av egnede metoder vesentlig til å gi omfattende kunnskap om metabolismen av mikroorganismer vokser i kjemisk definerte mediet som inneholder unike nitrogen og karbon kilder. Derimot forblir styring gjennom metabolisme av flere næringsstoffer kilder, til tross for sin brede tilstedeværelse i natur- eller industrielle miljøer, nesten ukjente. Denne situasjonen skyldes hovedsakelig mangel på passende metoder, som hindrer undersøkelser.

Vi rapporterer en eksperimentell strategi kvantitativt og omfattende utforske hvordan stoffskiftet fungerer når et næringsstoff som finnes som en blanding av ulike molekyler, i.e., en omfattende ressurs. Her beskriver vi sin søknad for å vurdere partisjonering flere nitrogen kilder gjennom gjær metabolske nettverket. Arbeidsflyten kombinerer informasjon innhentet under stabil isotop tracer eksperimenter med valgte 13C- eller 15N-merket underlag. Den første består av parallelle og reproduserbar fermentations i samme medium, som inneholder en blanding av N inneholder molekyler; men er en valgte nitrogen kilde merket hver gang. En kombinasjon av analytisk prosedyrer (HPLC, GC-MS) er gjennomført å vurdere merking mønstre av målrettet forbindelser og å kvantifisere forbruk og gjenoppretting av underlag i andre metabolitter. En integrert analyse av hele datasettet gir en oversikt over skjebnen til brukte underlag i celler. Dette krever en presis protokoll for innsamling av prøver-tilrettelagt av en robot-assistert system for avlytting av fermentations- og oppnåelse av mange tidkrevende analyser. Til tross for disse begrensningene er lov det forståelse for første gang, partisjonering av flere nitrogen kilder på gjær metabolske nettverket. Vi belyst videreformidling av nitrogen fra mer rikelig kilder mot andre N-forbindelser og bestemt metabolske opprinnelsen til ustabile molekyler og proteinogenic aminosyrer.

Introduction

Forstå er hvordan mikrobiell metabolisme driver en viktig sak for utformingen av effektive strategier for å forbedre gjæring prosesser og modulere produksjonen av fermentative forbindelser. Fremskritt i genomics og funksjonell genomforskning i disse to siste tiårene i stor grad bidratt til å utvide kunnskapen om topologien for metabolske nettverk i mange mikroorganismer. Tilgang til denne informasjonen førte til utviklingen av tilnærminger som mål for en omfattende oversikt over cellulære funksjoner1. Disse metodene er ofte avhengige av en modell-basert tolkning av målbare parametere. Disse eksperimentelle data omfatter, på den ene siden metabolitten opptak og produksjon priser, og på den annen side, kvantitativ intracellulær informasjon som hentes fra isotop tracer eksperimenter. Disse dataene inneholder viktig informasjon om fradrag i vivo aktivitet av ulike veier i en definert metabolske nettverk2,3,4. Foreløpig tilgjengelig analytiske teknikker bare aktiverer nøyaktig påvisning av merking mønstre av molekyler ved en ett element isotop og muligens når co merking med to isotopanrikning elementer. Videre under de fleste vekst forhold består karbon kilde bare av én eller to-forbindelser. Følgelig ble tilnærminger basert på 13C-isotopanrikning tracers fra karbon underlag utbredt og vellykket brukt til å utvikle en fullstendig forståelse av karbon metabolske nettverk operasjoner5,6,7 ,8.

I kontrast i mange naturlige og industrielle miljøer består tilgjengelig nitrogen ressursen som støtter mikrobiell vekst ofte av en rekke molekyler. For eksempel i vin eller øl gjæring leveres nitrogen som en blanding av 18 aminosyrer og ammonium variabel konsentrasjoner9. Dette rekke N forbindelser som er tilgjengelige for anabolism gjør disse komplekse media forholdene svært forskjellig fra de som vanligvis brukes for fysiologiske studier, som sistnevnte er oppnådd ved hjelp av en unik kilde til nitrogen, vanligvis ammonium.

Samlet internalisert nitrogen forbindelser kan være direkte innlemmet i proteiner eller catabolized. Nettverkets struktur av nitrogen stoffskiftet i mange mikroorganismer, inkludert gjær Saccharomyces cerevisiae, er svært kompleks i samsvar med mangfoldet av underlag. Skjematisk, er dette systemet basert på kombinasjonen av den sentrale kjernen av nitrogen stoffskifte som gir interconversion glutamin, glutamat og α-ketoglutarate10,11, transaminaser og deaminases. Gjennom dette nettverket, Amin grupper fra ammonium eller andre aminosyrer er samlet og α-keto syrer utgitt. Disse mellomprodukter er også synthetized til sentrale karbon metabolisme (CCM)12,13. Antall forgrenet reaksjoner og mellomprodukter, involvert i både katabolisme eksogene nitrogen kilder og anabolism av proteinogenic aminosyrer, oppfyller kravene anabole cellene. Aktiviteten gjennom disse forskjellige sammenkoblede ruter resulterer også i utskillelse av metabolitter. Spesielt kan α-keto syrer bli sendt gjennom Ehrlich sti å produsere høyere alkoholer og deres acetate ester derivater14, som er viktige bidragsytere til sensorisk profil av produkter. Deretter spiller hvordan nitrogen metabolisme opererer en nøkkelrolle i biomasse produksjon og dannelsen av flyktige molekyler (aroma).

Reaksjoner, enzymer og gener involvert i nitrogen metabolisme er grundig beskrevet i litteraturen. Men har spørsmålet om distribusjon av flere nitrogen kilder gjennom et metabolske nettverk ikke ennå blitt adressert. Det er to hovedgrunner som forklarer denne mangelen på informasjon. Først lys viktig kompleksiteten av nitrogen metabolisme nettverket, en stor mengde kvantitative data er nødvendig for en fullstendig forståelse av driften som ikke var tilgjengelig før nå. Andre, mange eksperimentelle begrensninger og begrensninger av analytiske metoder hindret gjennomføringen av tilnærminger som tidligere ble brukt til utviklingen av CCM-funksjonen.

For å overvinne disse problemene, valgte vi å utvikle en systemnivå tilnærming basert på avstemming av data fra en rekke isotopanrikning tracer eksperimenter. Arbeidsflyten inneholder:
-Et sett av fermentations utført under samme miljømessige forhold, mens en annen valgte næringsstoffer kilde (substrat) er merket hver gang.
-En kombinasjon av analytisk prosedyrer (HPLC, GC-MS) for en nøyaktig bestemmelse, på ulike stadier av gjæring, gjenværende konsentrasjonen av merket substrat og konsentrasjonen og isotopanrikning anriking av forbindelser som er avledet fra katabolisme av merket molekyl, inkludert avledede biomasse.
– En beregning av masse og isotopanrikning saldoen for hver fortært merket molekylet og en mer integrert analyse av datasettet å få en generell oversikt over forvaltningen av flere næringsstoffer kilder av mikroorganismer gjennom bestemmelse av flux prosenter .

Hvis du vil bruke denne metoden, må oppmerksomhet betales i reproduserbar virkemåten til den belastning/microorganism mellom kulturer. Videre må prøver fra ulike kulturer tas under samme veldefinerte gjæring utviklingen. I eksperimentelle arbeidet i dette manuskriptet, brukes en robot-assistert system for avlytting av fermentations å ta hensyn til disse begrensninger.

Det er viktig å velge et sett med merket underlag (sammensatte, natur og plasseringen av merkingen) som passer til til vitenskapelige problemet av studien. Her, ble 15N-merket ammonium, glutamin og arginin valgt som tre store nitrogen kildene funnet i druesaft. Dette tillot vurdere mønster av nitrogen omfordeling fra brukte forbindelser til aminosyrer proteinogenic. Vi har også som mål å undersøke skjebnen til karbon ryggraden i brukte aminosyrer og deres bidrag til produksjonen av flyktige molekyler. For å oppfylle dette målet, jevnt 13C-merket leucine, ble isoleucin, threonin og Valin inkludert i studien som aminosyrer som er avledet fra store intermediates av Ehrlich veien.

Samlet utforsket vi kvantitativt hvordan gjær administrerer en kompleks nitrogen ressurs ved å omfordele eksogene nitrogen kilder for å oppfylle sin anabole krav gjennom gjæring under i tillegg fjerning overskytende av karbon prekursorer som flyktige molekyler. Den eksperimentelle prosedyren i notatet kan brukes for å undersøke andre flere næringsstoffer kilder brukes av noen andre microorganism. Det synes å være en passende tilnærming for analyse av virkningen av genetisk bakgrunn eller miljøforhold på metabolske virkemåten av mikroorganismer.

Protocol

1. gjæring og prøvetaking Utarbeidelse av media og fermentersMerk: Alle fermentations er utført parallelt, bruker den samme stammen og på samme kjemisk definert syntetiske medium (SM, komposisjon i tabell 1), som inneholder en blanding av ammonium og aminosyrer nitrogen kilder15. For hver gjæring tilbys et enkelt nitrogen sammensatt utelukkende i jevnt merket 13C eller 15N skjemaer (100%), mens andre fortsatt umerket. For …

Representative Results

Figur 3 viser en skjematisk diagram for arbeidsflyten som ble gjennomført for å undersøke forvaltningen av gjær flere nitrogen kilder finnes i vin gjæring.For ulike steder av prøvetaking, biologiske parametere-vekst egenskapene, nitrogen forbruksmønstre og profilen proteinogenic aminosyrer-Vis en høy reproduserbarhet blant fermentations (Figur 4). Konsistens validerer relevansen av tilnærming basert på en kombinasjo…

Discussion

Kvantifisere partisjonering av forbindelser via metabolske nettverk som bruker isotopanrikning tracer eksperimenter er en lovende tilnærming for å forstå drift av mikrobielle metabolisme. Nå denne metodikken, mens ble brukt med en eller to merket underlag, kan ikke implementeres for å studere metabolisme av ulike kilder ved hjelp av flere merket elementær isotoper (dvs., mer enn to underlag). Faktisk kan tilgjengelig analytiske teknikker nøyaktig bestemmelse av merking mønstre av proteinogenic aminosyrer…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Jean-Roch Mouret, Sylvie Dequin og Jean-Marie Sabalyrolles for å bidra til oppfatningen av robot-assistert gjæring og Martine Pradal, Nicolas Bouvier og Pascale Brial deres kundestøtte. Midler til prosjektet ble gitt av Ministère de l’Education Nationale de la Recherche et de la Technologie.

Materials

D-Glucose PanReac 141341.0416
D-Fructose PanReac 142728.0416
DL-Malic acid Sigma Aldrich M0875
Citric acid monohydrate Sigma Aldrich C7129
Potassium phosphate monobasic Sigma Aldrich P5379
Potassium sulfate Sigma Aldrich P0772
Magnesium sulfate heptahydrate Sigma Aldrich 230391
Calcium chloride dihydrate Sigma Aldrich C7902
Sodium chloride Sigma Aldrich S9625
Ammonium chloride Sigma Aldrich A4514
Sodium hydroxide Sigma Aldrich 71690
Manganese sulfate monohydrate Sigma Aldrich M7634
Zinc sulfate heptahydrate Sigma Aldrich Z4750
Copper (II) sulfate pentahydrate Sigma Aldrich C7631
Potassium iodine Sigma Aldrich P4286
Cobalt (II) chloride hexahydrate Sigma Aldrich C3169
Boric acid Sigma Aldrich B7660
Ammonium heptamolybdate Sigma Aldrich A7302
Myo-inositol Sigma Aldrich I5125
D-Pantothenic acid hemicalcium salt Sigma Aldrich 21210
Thiamine, hydrochloride Sigma Aldrich T4625
Nicotinic acid Sigma Aldrich N4126
Pyridoxine Sigma Aldrich P5669
Biotine Sigma Aldrich B4501
Ergostérol Sigma Aldrich E6510
Tween 80 Sigma Aldrich P1754
Ethanol absolute VWR Chemicals 101074F
Iron (III) chloride hexahydrate Sigma Aldrich 236489
L-Aspartic acid Sigma Aldrich A9256
L-Glutamic acid Sigma Aldrich G1251
L-Alanine Sigma Aldrich A7627
L-Arginine Sigma Aldrich A5006
L-Cysteine Sigma Aldrich C7352
L-Glutamine Sigma Aldrich G3126
Glycine Sigma Aldrich G7126
L-Histidine Sigma Aldrich H8000
L-Isoleucine Sigma Aldrich I2752
L-Leucine Sigma Aldrich L8000
L-Lysine Sigma Aldrich L5501
L-Methionine Sigma Aldrich M9625
L-Phenylalanine Sigma Aldrich P2126
L-Proline Sigma Aldrich P0380
L-Serine Sigma Aldrich S4500
L-Threonine Sigma Aldrich T8625
L-Tryptophane Sigma Aldrich T0254
L-Tyrosine Sigma Aldrich T3754
L-Valine Sigma Aldrich V0500
13C5-L-Valine Eurisotop CLM-2249-H-0.25
13C6-L-Leucine Eurisotop CLM-2262-H-0.25
15N-Ammonium chloride Eurisotop NLM-467-1
ALPHA-15N-L-Glutamine Eurisotop NLM-1016-1
U-15N4-L-Arginine Eurisotop NLM-396-PK
Ethyl acetate Sigma Aldrich 270989
Ethyl propanoate Sigma Aldrich 112305
Ethyl 2-methylpropanoate Sigma Aldrich 246085
Ethyl butanoate Sigma Aldrich E15701
Ethyl 2-methylbutanoate Sigma Aldrich 306886
Ethyl 3-methylbutanoate Sigma Aldrich 8.08541.0250
Ethyl hexanoate Sigma Aldrich 148962
Ethyl octanoate Sigma Aldrich W244910
Ethyl decanoate Sigma Aldrich W243205
Ethyl dodecanoate Sigma Aldrich W244112
Ethyl lactate Sigma Aldrich W244015
Diethyl succinate Sigma Aldrich W237701
2-methylpropyl acetate Sigma Aldrich W217514
2-methylbutyl acetate Sigma Aldrich W364401
3-methyl butyl acetate Sigma Aldrich 287725
2-phenylethyl acetate Sigma Aldrich 290580
2-methylpropanol Sigma Aldrich 294829
2-methylbutanol Sigma Aldrich 133051
3-methylbutanol Sigma Aldrich 309435
Hexanol Sigma Aldrich 128570
2-phenylethanol Sigma Aldrich 77861
Propanoic acid Sigma Aldrich 94425
Butanoic acid Sigma Aldrich 19215
2-methylpropanoic acid Sigma Aldrich 58360
2-methylbutanoic acid Sigma Aldrich 193070
3-methylbutanoic acid Sigma Aldrich W310212
Hexanoic acid Sigma Aldrich 153745
Octanoic acid Sigma Aldrich W279900
Decanoic acid Sigma Aldrich W236403
Dodecanoic acid Sigma Aldrich L556
Fermentor 1L Legallais AT1357 Fermenter handmade for fermentation
Disposable vacuum filtration system Dominique Deutscher 029311
Fermenters (250 ml) Legallais AT1352 Fermenter handmade for fermentation
Sterile tubes Sarstedt 62.554.502
Fermentation locks Legallais AT1356 Fermetation locks handmade for fermentation
BactoYeast Extract Becton, Dickinson and Company 212750
BactoPeptone Becton, Dickinson and Company 211677
Incubator shaker Infors HT
Particle Counter Beckman Coulter 6605697 Multisizer 3 Coulter Counter
Centrifuge Jouan GR412
Plate Butler Robotic system Lab Services BV PF0X-MA Automatic instrument
Plate Butler Software Lab Services BV Robot monitor software
RobView In-house developed calculation software
My SQL International source database
Cimarec i Telesystem Multipoint Stirrers Thermo Fisher Scientific 50088009 String Drive 60
BenchBlotter platform rocker Dutscher 60903
Ammonia enzymatic kit R-Biopharm AG 5390
Spectrophotometer cuvettes VWR 634-0678
Spectrophotometer UviLine 9400 Secomam
Amino acids standards physiological – acidics and neutrals Sigma Aldrich A6407
Amino acids standards physiological – basics Sigma Aldrich A6282
Citrate lithium buffers – Ultra ninhydrin reagent Biochrom BC80-6000-06
Sulfosalycilic acid Sigma Aldrich S2130
Norleucine Sigma Aldrich N1398
Biochrom 30 AAA Biochrom
EZChrom Elite Biochrom Instrument control and Data analysis software
Ultropac 8 resin Lithium Biochrom BC80-6002-47 Lithium High Resolution Physiological Column
Filter Millex GV Merck Millipore SLGVX13NL Millex GV 13mm (pore size 0.22 µm)
Membrane filter PALL VWR 514-4157 Supor-450 47mm 0.45µm
Vacuum pump Millivac Mini Millipore XF5423050
Aluminium smooth weigh dish 70mm VWR 611-1380
Precision balance Mettler Specifications AE163
Dimethyl sulfoxid dried Merck 1029310161 (max. 0.025% H2O) SeccoSolv
Combustion oven Legallais
Pierce BCA protein assay kit Interchim UP40840A
Formic acid Fluka 94318
Hydrogen peroxide Sigma Aldrich H1009
Hydrochloric Acid Fuming 37% Emsure Merck 1003171000 Grade ACS,ISO,Reag. Ph Eur
Lithium acetate buffer Biochrom 80-2038-10
Commercial solution of hydrolyzed amino acids Sigma Aldrich AAS18
L-Methionine sulfone Sigma Aldrich M0876
L-Cysteic acid monohydrate Sigma Aldrich 30170
Pyrex glass culture tubes Sigma Aldrich Z653586
Pyridine Acros Organics 131780500 99% Extrapure
Ethyl chloroformate Sigma Aldrich 23131
Dichloromethane Sigma Aldrich 32222
Vials Sigma Aldrich 854165
Microinserts for 1.5ml vials Sigma Aldrich SU860066
GC/MS Agilent Technologies 5890 GC/5973 MS
Chemstation Agilent Technologies Instrument control and data analysis software
Methanol Sigma Aldrich 34860 Chromasolv, for HPLC
Acetonitrile Sigma Aldrich 34998 ChromasolvPlus, for HPLC
N,N-Dimethylformamide dimethyl acetal Sigma Aldrich 394963
BSTFA Sigma Aldrich 33024
DB-17MS column Agilent Technologies 122-4731 30m*0.25mm*0.15µm
Sodium sulfate, anhydrous Sigma Aldrich 238597
Technical nitrogen Air products 14629
Zebron ZB-WAX column Phenomenex 7HG-G007-11 30m*0.25mm*0.25µm
Helium BIP Air products 26699
Glass Pasteur pipettes VWR 612-1702

References

  1. Osterlund, T., Nookaew, I., Nielsen, J. Fifteen years of large scale metabolic modeling of yeast: developments and impacts. Biotechnol Adv. 30, 979-988 (2012).
  2. Gombert, A. K., Moreirados Santos, M., Christensen, B., Nielsen, J. Network identification and flux quantification in the central metabolism of Saccharomyces cerevisiae under different conditions of glucose repression. J Bacteriol. 183, 1441-1451 (2001).
  3. Wiechert, W. 13C metabolic flux analysis. Metab Eng. 3, 195-206 (2001).
  4. Fischer, E., Zamboni, N., Sauer, U. High-throughput metabolic flux analysis based on gas chromatography-mass spectrometry derived 13C constraints. Anal Biochem. 325, 308-316 (2004).
  5. Rantanen, A., Rousu, J., Jouhten, P., Zamboni, N., Maaheimo, H., Ukkonen, E. An analytic and systematic framework for estimating metabolic flux ratios from 13C tracer experiments. BMC Bioinformatics. 9, 266 (2008).
  6. Zamboni, N. 13C metabolic flux analysis in complex systems. Curr Opin Biotechnol. 22, 103-108 (2011).
  7. Kruger, N. J., Ratcliffe, R. G. Insights into plant metabolic networks from steady-state metabolic flux analysis. Biochimie. 91, 697-702 (2009).
  8. Quek, L. -. E., Dietmair, S., Krömer, J. O., Nielsen, L. K. Metabolic flux analysis in mammalian cell culture. Metab Eng. 12, 161-171 (2010).
  9. Perpete, P., Santos, G., Bodart, E., Collin, S. Uptake of amino acids during beer production: The concept of a critical time value. J Am Soc Brew Chem. 63, 23-27 (2005).
  10. Magasanik, B., Kaiser, C. A. Nitrogen regulation in Saccharomyces cerevisiae. Gene. 290, 1-18 (2002).
  11. Ljungdahl, P. O., Daignan-Fornier, B. Regulation of amino acid, nucleotide, and phosphate metabolism in Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 190, 885-929 (2012).
  12. Cooper, T. G., Strathern, J. N., Jones, E. W., Broach, J. R. Nitrogen metabolism in Saccharomyces cerevisiae. The molecular biology of the yeast Saccharomyces: Metabolism and gene expression. , 39-99 (1982).
  13. Jones, E. W., Fink, G. R., Strathern, J. N., Jones, E. W., Broach, J. R. Regulation of amino acid and nucleotide biosynthesis in yeast. The molecular biology of the yeast Saccharomyces: Metabolism and gene expression. , 182-299 (1982).
  14. Hazelwood, L. A., Daran, J. -. M., van Maris, A. J. A., Pronk, J. T., Dickinson, J. R. The Ehrlich pathway for fusel alcohol production: a century of research on Saccharomyces cerevisiae metabolism. Appl Environ Microbiol. 74, 2259-2266 (2008).
  15. Bely, M., Sablayrolles, J. M., Barre, P. Automatic detection of assimilable nitrogen deficiencies during alcoholic fermentation in oenological conditions. J Ferment Bioeng. 70, 246-252 (1990).
  16. Forster, J., Famili, I., Fu, P., Palsson, B. O., Nielsen, J. Genome-scale reconstruction of the Saccharomyces cerevisiae metabolic network. Genome Res. 13, 244-253 (2003).
  17. Millard, P., Letisse, F., Sokol, S., Portais, J. C. IsoCor: correcting MS data in isotope labeling experiments. Bioinformatics. 28, 1294-1296 (2012).

Play Video

Cite This Article
Bloem, A., Rollero, S., Seguinot, P., Crépin, L., Perez, M., Picou, C., Camarasa, C. Workflow Based on the Combination of Isotopic Tracer Experiments to Investigate Microbial Metabolism of Multiple Nutrient Sources. J. Vis. Exp. (131), e56393, doi:10.3791/56393 (2018).

View Video