Это исследование описывает упрощенный хирургическая процедура и технику для выполнения кавернозных нерва стимуляции с изоляцией нерв электрод комплекс с помощью силиконового клея и измерения интракавернозные давления.
Стимулирование кавернозных нерв (CN) и измерение интракавернозные давления (ИКП) широко использовались для тестирования и оценки терапии для лечения эректильной дисфункции. Однако методы, используемые варьируются между лабораториями, и ловушки по-прежнему существуют. Целью данного исследования было для описания хирургическая техника, которая обеспечит надежное и воспроизводимые модели. Предоставляя ischiocavernosus мышцы ее точке вставки на седалищного бугра, полового члена голени можно cannulated с минимальными диссекции и повреждения структур, участвующих в эректильной функции. Повторной стимуляции CN, без необходимости для подъема и сушки, был достигнут с помощью 125 мкм биполярного серебряного электрода и биосовместимых кремния клея для изолировать комплекс электрод нерва. Этот метод предотвращает neuropraxia путем уменьшения растяжения и сушки нерва и обеспечивает полную изоляцию нерва, отрицая электрической утечки и предотвращения стимуляция альтернативных путей.
В естественных условиях изучения эректильной функции у подопытных животных началась в 1863 году с новаторские экспериментальные работы Экхард1. Электростимуляция тазовых нервов было использовано для стимулировать рост МСП в собак. На протяжении 20-го века аналогичные экспериментальные протоколы были использованы в более крупных животных, таких как собаки, обезьяны, кошек и кроликов. Оценке эректильной функции в крыса была впервые разработана Куинлан et al. 19892. С тех пор метод был изменен и дополнен ряд других группы34. Сегодня крыса является наиболее широко используемых животных моделей для изучения патологии эректильной дисфункции и оценки возникающих вариантов лечения. Основные этапы процедуры включают, запись системного артериального давления с помощью строки в сонной артерии, катетеризации полового члена голени меру ПМС и стимулирование CN побудить увеличение ICP. Хотя некоторые исследователи уточнили модель, его воспроизводимости остается проблемой, и переменная результаты были получены в разных лабораториях. По-прежнему сохраняются некоторые недостатки.
Предыдущие статьи5,6,,78,9,10 описывают использование полного полового контакта с degloving пениса для катетеризации пещеристые тела. Это не оптимальный подход как манипуляции и подрывной рассечение вызывает повреждения структур, которые необходимы для эректильной функции. Рассечение CN была хорошо описана в10,11, но стимуляции нерва не является оптимальным из-за многочисленных факторов, которые могут повлиять на результаты экспериментов. Методика стимуляции CN включает в себя лифтинг нерв от окружающих тканей, потянув на электрод биполярный крюк, который располагается вокруг нерва, и сушки перед каждой стимуляцией нерва. Это может привести к различной степени повреждения нерва и электрического тока утечки, что приводит к снижению ответ или ложных увеличение МСП путем стимуляции альтернативные пути например, мышцы тазового дна, мочевого пузыря и желудочно-кишечного тракта тракт12. Все эти факторы ограничивают воспроизводимость.
В ходе нашего исследования мы наблюдали, как глубина, так и тип анестезии имеют глубокое влияние на МСП. Анестетики используемые являются Пентобарбитал натрия, кетамин/Ксилазина или кетамина/мидазолама инъекций или изофлюрановая/Кислородные ингаляции.
Здесь мы описываем упрощенная хирургический метод и представить данные в поддержку стандартизации экспериментальный протокол.
Основной целью данного исследования было описать упрощенная хирургическая техника катетеризации Крю полового члена для записи ПМС и изоляции CN для электростимуляции. Мы ввели изменения рассечение пещеристые тела, чтобы упростить операции и воспроизводимых записей увеличения числа ?…
The authors have nothing to disclose.
Авторы имеют без подтверждений.
Adson forceps | Fine Science Tool | 11006-12 | |
Dumont #7 forceps | Fine Science Tool | 11271-30 | |
Dumont #5 forceps | Fine Science Tool | 11273-20 | |
ToughCut Mayo scissor | Fine Science Tool | 14110-15 | |
Miniature Vannas Spring scissor | Fine Science Tool | 15006-09 | |
Ultra Fine Hemostat | Fine Science Tool | 13020-12 | |
Crile Hemostat | Fine Science Tool | 13004-14 | |
Kwik-Sil Adhesive | World Precision Instruments | KWIK-SIL | |
Teflon coated silver wire 0.125 mm | World Precision Instruments | AGT0510 | |
Elastic wire retractors | Custom made | ||
Scalpel blade | Fine Science Tool | 10023-00 | |
PE-50 tubing | Warner Instruments | 64-0753 | |
23 G Needle | Kruuse | 121272 | |
SD-9 Square Pulse Stimulator | Somatco | 1077/183 | |
Blood pressure transducer and cable | World Precision Instruments | BLPR2 | |
Raucotupf Cotton-tipped Applicators | Lohmann-Raucher | 11966 | |
Pro-ophta Ocular Sticks | Lohmann-Raucher | 16515 | |
NaCl 0,9 % 100 mL | Local pharmacy | ||
Heparin | Local pharmacy | ||
25 mL Syringe | Odense University Hospital | ||
Vet eye ointment – Viscotears | Local pharmacy | ||
silver wires | Science Products GmbH, Heidelberg, Germany | ||
Silicon Glue | Kwik-Sil, World Precision Instruments, Sarasota, FL, USA |