Summary
Это исследование описывает упрощенный хирургическая процедура и технику для выполнения кавернозных нерва стимуляции с изоляцией нерв электрод комплекс с помощью силиконового клея и измерения интракавернозные давления.
Abstract
Стимулирование кавернозных нерв (CN) и измерение интракавернозные давления (ИКП) широко использовались для тестирования и оценки терапии для лечения эректильной дисфункции. Однако методы, используемые варьируются между лабораториями, и ловушки по-прежнему существуют. Целью данного исследования было для описания хирургическая техника, которая обеспечит надежное и воспроизводимые модели. Предоставляя ischiocavernosus мышцы ее точке вставки на седалищного бугра, полового члена голени можно cannulated с минимальными диссекции и повреждения структур, участвующих в эректильной функции. Повторной стимуляции CN, без необходимости для подъема и сушки, был достигнут с помощью 125 мкм биполярного серебряного электрода и биосовместимых кремния клея для изолировать комплекс электрод нерва. Этот метод предотвращает neuropraxia путем уменьшения растяжения и сушки нерва и обеспечивает полную изоляцию нерва, отрицая электрической утечки и предотвращения стимуляция альтернативных путей.
Introduction
В естественных условиях изучения эректильной функции у подопытных животных началась в 1863 году с новаторские экспериментальные работы Экхард1. Электростимуляция тазовых нервов было использовано для стимулировать рост МСП в собак. На протяжении 20-го века аналогичные экспериментальные протоколы были использованы в более крупных животных, таких как собаки, обезьяны, кошек и кроликов. Оценке эректильной функции в крыса была впервые разработана Куинлан et al. 19892. С тех пор метод был изменен и дополнен ряд других группы34. Сегодня крыса является наиболее широко используемых животных моделей для изучения патологии эректильной дисфункции и оценки возникающих вариантов лечения. Основные этапы процедуры включают, запись системного артериального давления с помощью строки в сонной артерии, катетеризации полового члена голени меру ПМС и стимулирование CN побудить увеличение ICP. Хотя некоторые исследователи уточнили модель, его воспроизводимости остается проблемой, и переменная результаты были получены в разных лабораториях. По-прежнему сохраняются некоторые недостатки.
Предыдущие статьи5,6,,78,9,10 описывают использование полного полового контакта с degloving пениса для катетеризации пещеристые тела. Это не оптимальный подход как манипуляции и подрывной рассечение вызывает повреждения структур, которые необходимы для эректильной функции. Рассечение CN была хорошо описана в10,11, но стимуляции нерва не является оптимальным из-за многочисленных факторов, которые могут повлиять на результаты экспериментов. Методика стимуляции CN включает в себя лифтинг нерв от окружающих тканей, потянув на электрод биполярный крюк, который располагается вокруг нерва, и сушки перед каждой стимуляцией нерва. Это может привести к различной степени повреждения нерва и электрического тока утечки, что приводит к снижению ответ или ложных увеличение МСП путем стимуляции альтернативные пути например, мышцы тазового дна, мочевого пузыря и желудочно-кишечного тракта тракт12. Все эти факторы ограничивают воспроизводимость.
В ходе нашего исследования мы наблюдали, как глубина, так и тип анестезии имеют глубокое влияние на МСП. Анестетики используемые являются Пентобарбитал натрия, кетамин/Ксилазина или кетамина/мидазолама инъекций или изофлюрановая/Кислородные ингаляции.
Здесь мы описываем упрощенная хирургический метод и представить данные в поддержку стандартизации экспериментальный протокол.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Животные были размещены в университете Южной Дании животных ухода объекта согласно институциональных руководящих принципов. Все эксперименты на животных были проведены в соответствии с руководством национальных институтов здравоохранения для ухода и использования лабораторных животных. Это острый, не выживание хирургии процедура.
1. Подготовка трубки, электроды и инструменты для хирургической процедуры
- Используйте следующие микрохирургические инструменты: Ножницы хирургические, угловой микро ножницы, пинцет ткани, пара Дюмон #7 и #5 изогнутые микро щипцы, держатель микро иглы и ретракторы.
Примечание: Как это острый процедуры, документы не нужно стерилизовать. После использования чистота и протрите советы с 70% этиловом спирте. - Замочите труб в 70% этанола и затем промойте его с стерильным 0,9% NaCl с 100 ед/мл гепарина перед использованием. Оставьте трубы заполнены во избежание введения пузырьков воздуха в систему.
- Отрежьте кусок длиной 20-30 см полиэтилен (ПЭ) труб-50 сделать катетер для измерения МСП. Убедитесь, что трубка максимально сократить гашения давления.
- Согните стерильные 24G иглы--бокового, до тех пор, пока игла разрывов в середине. Соедините кусок с скоса до конца трубы PE для вставки в полового члена голени. Вставьте другой половины концентратор для подключения датчика давления. Заполните систему гепаринизированным физраствора (100 ед/мл).
- Чтобы сделать биполярный электрод с покрытием Teflon, вырежьте две 125 мкм серебряные провода к одинаковой длины. Используйте кусок ленты для Подключите провода к краю стола и свяжите их вместе. Впоследствии придаем черная плита электрода.
- Сделать небольшой надрез в тефлон и использовать #5 микро щипцы для полосы длиной 4-5 мм тефлоновому покрытию от кончиков электродов. Отрезать советы с помощью скальпеля для достижения даже длины и создания крючки, сгибая концы вокруг краю тупым лезвием скальпеля.
- Лента электрод с конца, слегка расширяя над краем черная плита с крючками, вверх. Смешайте кремния клея на пластиковой пластине для 10 s и обернуть клей пузырь вокруг электрода 1-2 мм от крючка.
- Позвольте ему высохнуть в течение приблизительно 5 минут перед использованием (рис. 1). Лента тефлоновая длиннее секции на другом конце, для подключения к стимулятор.
Примечание: С повторно делать захваты на дистальном конце, электрод может использоваться много раз.
2. Подготовка животного
- После обезболивающим животного, брить нижней части живота, шеи и промежности. Вымыть животное с 70% спирта следуют повидон йод в три раза. Место крысы на площадку с подогревом хирургические в лежачем положении. Применить ветеринар глазную мазь и переключения анестезии носовой конус с 2,5% изофлюрановая и 0,8 Л/мин кислорода в качестве перевозчика.
Примечание: Отрегулируйте уровень изофлюрановая и кислорода для достижения приемлемого уровня анестезии.
3. Прехирургическая подготовка
- Выполнять весь хирургическая процедура под операционных микроскопов: увеличение, начиная от 3,15 X 20 X является достаточным. Использовать перчатки и чистоты окружающей среды всей операции. Место крысы на пелерина.
4. Ischiocavernosus мышцы диссекции для измерения ICP
- Использовать скальпель, прямые ножницы, и Дюмон #7 изогнутых микро щипцы сделать 1 см вертикальный разрез кожи 5 мм бокового от средней линии, начиная с уровня основания пениса и расширение вниз (рис. 2A). Использование Q-tip и аккуратно отделить фасции сбоку мошонки (рис. 2B). После рассечения фасции, приложите ретракторы и пальпировать с хлопка наконечником своп найти седалищного бугра (рис. 2 c).
- Вскрыть через медиальной жировой ткани этой точки, до тех пор, пока визуализируется ischiocavernosus мышцы (рис. 3A). Используйте пару Дюмон #7 изогнутых микро щипцов и продольно отдельные мышцы. Белочной будет отображаться как яркий белый структуру (рис. 3B). С помощью микро щипцы и микро ножниц, разоблачить белочной адекватно, чтобы увидеть свой курс (рис. 3 c).
- После калибровки параметров систем вставьте трубки через кожу на промежности, убедившись, что она проходит параллельно с полового члена Крю (рис. 4). Оставьте строку на месте и держать разрез влажным с saline.
5. CN диссекции для стимуляции
- Сделайте 2 см ниже, срединная брюшной разрез через кожу, с использованием, во-первых, скальпелем, а затем пару прямые ножницы и микро щипцами. Создайте соответствующий разрез через фасции вдоль linea alba и основной мышечной ткани подвергать мочевого пузыря и предстательной железы.
- Использование ретракторы для достижения хорошее воздействие. Использовать тампоны хлопок подсказка для разделения простаты от жировой ткани для получения четкой визуализации основных таза ганглии (MPG) и CN, работает на Дорсолатеральное аспект предстательной железы (рис. 5).
- После визуализации MPG и CN тщательно надрезать фасции, обволакивающие нерва дистальнее MPG 2-5 мм с углом микро ножницы (рис. 6a). С использованием #5 микро щипцы распространение ткани на каждой стороне нерва и под его, чтобы освободить часть длиной 4 мм (Рисунок 6b) и слайд 9-0 швов под нерва (рис. 6 c).
- Поднимите нерва слегка с помощью шов (рис. 7a) для облегчения размещения крючки биполярного электрода вокруг нерва (рис. 7b). Пусть смесь помощник кремния двухкомпонентный клей с кончика инсулина игл для 5 s. сухой нерва и применять клей в район вокруг крючки и нерв (рис. 7 c, d). Держите нерва повышенных, слегка потянув на электроде примерно 1 мин, чтобы клей для просушки.
- Удаление ретракторы, за исключением втягивающих устройств на правой стороне, чтобы избежать каких-либо потянув или скручивание электрода. Влажные подвергаются органы с физиологическим и лежал марлю, смоченную в соленой через разрез.
6. пещеристые тела катетеризации для измерения ICP
- Восстановление визуализации с помощью ретракторы белочной. Убедитесь в том, не придавать ретракторы в ischiocavernosus мышцу, как она будет искажать голени.
- Прикрепить иглы и Очистка труб с гепаринизированным засолены до введения его в белочной. Удерживайте белочной растягивается, используя Дюмон #7 изогнутых микро щипцами в одной руке (недоминирующих), белочной и остальная часть вышележащих мышц дистальных к точке вставки. Удерживая иглу с прямо микро щипцами в другой доминирующей и не забудьте ввести его параллельно с курсом пещеристые тела (рис. 8).
- Вставьте иглу 5-8 мм в пещеристые тела. Очистка труб и нажмите на голени для тестирования линии (рис. 9). Убедитесь, что есть нет утечки. Закрепите трубку к таблице с лентой для предотвращения случайного потянув на линии. Удаление ретракторы.
7. стимулирование CN
- С помощью программы записи (например, Спайк 2) работает, непрерывно записывать интракавернозные и среднее артериальное давление.
- Задайте следующие параметры на стимулятора (см.например, SD9 трава инструментов, Таблица материалов) для стимуляции CN: ток на 1,5 мА, частота в 16 Гц, напряжение на 3 V и импульса в 5 Мисс применить 50 s стимуляции с минимум 1 мин отдых между стимуляцию.
Примечание: Первый стимуляцию обычно приводит к снижению реакции (рис. 10).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Использование этого протокола с параметрами рекомендуется стимуляции, при ингаляционной анестезии с изофлюрановая 2,0% кислорода 0,8 Л/мин, должны давать результаты, как показано на рисунке 11 и рис.12, где есть несколько спина к спине стимуляцию между 75-80 мм Hg. Рисунок 13 показывает тот же стабильный ответ над 20-мин стимуляции с ответом стабильным на уровне 73-77 мм Hg. тест линии для МСП измерения промывка труб и выстукивать на голени (рис. 9). Быстрого реагирования обратно к базовой является отличительной чертой хорошо размещены линии. При повреждении целостности белочной тест приведет к нижней пиковое давление и медленный ответ обратно базовой после промывки и выстукивать и снижение реакции при стимулировании (рис. 14). Там будет также быть утечки гепаринизированным NaCl при промывки и кровотечение во время стимуляции.
Типы и уровни анестезии, а также использование кислорода имел существенное влияние на МСП. Рисунок 15 показано влияние различных уровней изофлюрановая на МСП, снижение реакции и менее стабильные плато. С изофлюрановая на 2%, был стабильный ответ в ICP измерений с несколькими стимуляцию на 78 мм Hg. повышение концентрации изофлюрановая до 3,5%, однако, привело к быстрому уменьшению 50% 34 мм Hg в нескольких последующих стимуляцию. Тот же эффект наблюдался при переключении изофлюрановая от 2,0% до 3,0%, где 19% снижение в ответ было отмечено, и от 2,5% до 5%, где даже более быстрым снижением ответ 70% был замечен. Кровяное давление остается стабильным на протяжении всех стимуляцию. В крыс под наркозом с использованием изофлюрановая/кислорода анестезии во время операции и первоначальный стимуляцию, которые затем получил 25% рекомендуемой дозы фентанила/мидазоламом (в то время, как изофлюрановая было прекращено) была аналогичным образом стабильный ответ, но он увеличилось на 25% во время анестезии фентанила/мидазолама по сравнению с изофлюрановая (рис. 16).
Администрация кислорода через носовой конус увеличила сатурации кислорода в крови от 61-75% до 99-100% в около 20 s. Когда была остановлена оксигенацию, же снижение был замечен над приблизительно 1 мин кровяное давление было стабильным на протяжении стимуляцию, но администрация кислорода через носовой конус (0,8 Л/мин) имели большое влияние на измерении максимального ICP, сокращения его 35-45% в увязке стимуляцию (Рисунок 17).
Рисунок 1 . Биполярное тефлоновым покрытием серебряного электрода. (A) клей пузырь в переходной зоне между электродами с покрытием и без покрытия. (B) Distal 2 см электрода плотно braded. (C) параллельных немелованной крючки 1 мм друг от друга. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2 . Рассечение пещеристые тела – достопримечательностей. (A) 1 см вертикальный разрез, вниз боковые начиная 2 мм от основания пениса. (B) фасции сбоку мошонки разделяются с помощью ватным наконечником тампоны. (C) вид эксплуатации поля после размещения ретракторы (pm: пирамидальная мышца, это: точка вставки голени до седалищного бугра). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3 . Разоблачение белочной. (A) ischiocavernosus мышц (стрелка). (B) белочной (стрелка). (C) малой мощности увеличение показаны курс пещеристые тела. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4 . Строка для записи кавернозных давления. Игла вводится через кожу на промежности, параллельно с пещеристые тела (стрелка). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 5 . Экспозиции MPG отмечен стрелкой и CN, работает вертикальная на Дорсолатеральное аспект простаты. Основные таза ганглии (MPG), отмечен стрелкой, кавернозных нерв (CN). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 6 . Рассечение кавернозных нервов. (A) резка фасции, обволакивающие кавернозных нервов с микро ножницами. (B) разделение нерв из основной ткани, используя микро щипцами. (C) размещение 9-0 вязь под нерва. Основные таза ганглии (MPG), отмечен стрелкой, кавернозных нерв (CN). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 7 . Закреплять нерва. (A) подъемные нерва, осторожно потянув на шов. (B) нерва, отдыхая в крючки электрода. (C) нерва и электродный комплекс изолированных с биосовместимыми кремния клея. (D) дополнительные клей пузырь добавляется полностью изолировать нерв электродный комплекс. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 8 . Катетеризации белочной. Иглой 23 G подключен к PE-50 трубки вставляется в белочной. Точка вставки, отмечен стрелкой. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 9 . Тестирование линии интракавернозные. Ответы, видели с размещением правильную линию. Обратите внимание, промывка линии и ответ на нажатие на голени. Кроме того Обратите внимание, падение давления быстро обратно в базовый. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 10 . Первоначальные ответы на кавернозных нерва стимуляции. Снижение первый ответ. Первый стимуляции 50 мм Hg и колебания плато. Второй и третий стимуляции 66 мм ртутного столба. Следующие измерения были записаны на обычном уровне 73 мм Hg. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 11 . Неоднократные кавернозных нерва стимуляции и интракавернозные давление записи. Показаны стабильность результатов, используя этот протокол. Десять компенсационный стимуляцию между 75-78 мм Hg. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 12 . Кавернозных нерва стимуляции и давление записи. Около 30 компенсационный стимуляцию с < 6 мм Hg изменчивости в давление. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 13 . Непрерывное стимулирование, продолжительностью 20 мин Увеличение колебаний в конце, но последующие стимуляцию, после 1 минуты отдыха, производится стабильной ответ. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 14 . Утечка белочной. Длительное ответ обратно базовой после промывки и выстукивать. Снижение реакции после стимуляции. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 15 . Влияние анестезии дозы на интракавернозные давления. Снизился и более колебаний ответ на увеличение изофлюрановая по сравнению с стабильный ответ на 2% в первом два и три последние стимуляцию. Синий след на вершине показаны постоянной означает артериального давления. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 16 . Влияние типа анестезии на интракавернозные давления. Первоначальный стимуляцию выступал под изофлюрановая наркозом шоу повышение давления 80 мм ртутного столба, после того, как вводили фентанила/мидазолама было увеличение в ответ на 110 мм Hg. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 17 . Влияние кислорода администрации через носовой конус. Прекращенные кислородная через носовой конус привели к значительному сокращению увеличение кавернозных давления с кавернозной нерва стимуляции. Было отмечено, не влияет на среднее артериальное давление (синий след выше). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 18 . Влияние напряжения на давление ответ на стимуляцию. Напряжение между 1,5-6 V производятся идентичные давления ответ. Ответ уменьшается ниже 1.5 V. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Основной целью данного исследования было описать упрощенная хирургическая техника катетеризации Крю полового члена для записи ПМС и изоляции CN для электростимуляции. Мы ввели изменения рассечение пещеристые тела, чтобы упростить операции и воспроизводимых записей увеличения числа МСП с CN стимуляции. С 1 см вертикальный разрез боковые к основанию пениса, используя ощутима седалищного бугра в качестве руководства, мы достигли хорошее воздействие ischiocavernosus мышц и белочной оболочки. Эта процедура быстрее (до 15 мин) чем те, которые описаны в литературе и причины минимальный тканей срыв2,3,4.
В настоящее время используемый метод стимуляции CN включает в себя подключение, подъема, и сушка CN перед каждой электростимуляции прикладной10. Этот метод не гарантирует, что условия остаются неизменными для каждой стимуляции. Кроме того отмена нерва требует использования микроманипулятор и повторил растяжения и освобождения нерва, которая может привести к neuropraxia. По сравнению с текущей метод стимуляции CN, использования биосовместимых кремния клея изолировать нерв электродный комплекс уменьшает частоту нерва простирается до двух экземпляров; один раз, чтобы поместить биполярный электрод вокруг нерва и один раз, чтобы изолировать нерва и электрод с помощью клея. Впоследствии несколько neurostimulations может быть выполнена без необходимости нерва манипуляции.
Вставка иглу в пещеристые тела для измерения давления представляет собой критический шаг. Новые пользователи этой техники должны практиковать эту часть до начала экспериментов. При развертывании иглы в голени, важно что Крю растягивается и иглы развертывается параллельно с его курса. Другим важным шагом является нерва, обработка во время его рассечения от окружающих тканей и размещения электрода под. В то время как рассечение, сам не является сложной задачей, любое растянуть или раздавить нерва может привести к повреждениям. Наши модификации этот шаг делает потребность микроманипулятор ненужных и упрощает нерва обработка. Использование биосовместимых кремния клея изолировать нерва и обеспечить стабильный и надежный контакт между электродом и нерва уменьшает необходимые манипуляции. Силиконовый клей может также использоваться в других моделях животных, где применяется в vivo нейростимуляция.
Параметры стимуляции, перечисленные в многочисленных исследованиях варьируются от 14-20 Гц и 1,5-12 V11,,1314. Этот метод показал, что стимуляция с помощью 1,5 мА, 16 Гц, 3 V и 5 мс пульс производится полный ответ. С увеличением параметров стимуляции, МСП не увеличивается (рис. 18). Это предполагает, что стимуляция с помощью любых параметров, которые являются выше порога для инициирования артериальной (кавернозных артерии), расслабление гладких мышц артериол и синусоидальных, достаточно вызвать рефлекс и приведет к полной физиологической ответ. Последующее увеличение частоты, амплитуды или ширина импульса не приведет к сильной физиологическая реакция, и он мог разрушающих медиаторы или даже вызвать травмы нерва. С помощью параметров, описанных выше, мы смогли добиться воспроизводимости ответ с периодом отдыха как короче 30 s более чем в 40 раз подряд.
Глубина анестезии явно влияет на физиологические реакции. С ингаляционной анестезии она может быть также под контролем, однако пик ответ поступает примерно на 25% меньше, по сравнению с фентанилом/мидазолама анестезии в ведении инъекций. Мы наблюдали, что доза изофлюрановая может поддерживаться на уровне определяется минимальный изофлюрановая концентрации, необходимо устранить мыс щепотку ответ. Большинство исследователей, использование анестезии инъекции с Пентобарбитал натрия, фентанил/мидазолама, кетамин/Ксилазина или кетамина/мидазолама15.
Ни одна из опубликованных статей упоминается использование контролируемых оксигенации. Результаты этого исследования показывают, что это оказало существенное влияние на МСП. Таким образом важно, что, независимо от типа анестезии используется, животное получает кислород через носовой конус.
Использование крыс выгодно из-за их размера и устойчивости. Как в ранее опубликованных исследований и подтвердил в этом исследовании, крысах Sprague-Dawley, было показано, что нетронутыми ответ на стимуляцию CN в диапазоне 6-12 недель и массой 200-550 г. использование мыши является более сложным, но выгодно из-за наличие12трансгенные технологии.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не имеют ничего сообщать.
Acknowledgments
Авторы имеют без подтверждений.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Adson forceps | Fine Science Tool | 11006-12 | |
| Dumont #7 forceps | Fine Science Tool | 11271-30 | |
| Dumont #5 forceps | Fine Science Tool | 11273-20 | |
| ToughCut Mayo scissor | Fine Science Tool | 14110-15 | |
| Miniature Vannas Spring scissor | Fine Science Tool | 15006-09 | |
| Ultra Fine Hemostat | Fine Science Tool | 13020-12 | |
| Crile Hemostat | Fine Science Tool | 13004-14 | |
| Kwik-Sil Adhesive | World Precision Instruments | KWIK-SIL | |
| Teflon coated silver wire 0.125 mm | World Precision Instruments | AGT0510 | |
| Elastic wire retractors | Custom made | ||
| Scalpel blade | Fine Science Tool | 10023-00 | |
| PE-50 tubing | Warner Instruments | 64-0753 | |
| 23 G Needle | Kruuse | 121272 | |
| SD-9 Square Pulse Stimulator | Somatco | 1077/183 | |
| Blood pressure transducer and cable | World Precision Instruments | BLPR2 | |
| Raucotupf Cotton-tipped Applicators | Lohmann-Raucher | 11966 | |
| Pro-ophta Ocular Sticks | Lohmann-Raucher | 16515 | |
| NaCl 0,9 % 100 mL | Local pharmacy | ||
| Heparin | Local pharmacy | ||
| 25 mL Syringe | Odense University Hospital | ||
| Vet eye ointment - Viscotears | Local pharmacy | ||
| silver wires | Science Products GmbH, Heidelberg, Germany | ||
| Silicon Glue | Kwik-Sil, World Precision Instruments, Sarasota, FL, USA |
References
- Eckhard, C. Untersuchungen über die Erektion des Hundes In: Beiträge zur Anatomie und Physiologie. , Vol. Band III Giessen: Ferber 123-166 (1863).
- Quinlan, D. M., Nelson, R. J., Partin, A. W., Mostwin, J. L., Walsh, P. C. The rat as a model for the study of penile erection. J Urol. 141 (3), 656-661 (1989).
- Heaton, J. P., Varrin, S. J., Morales, A. The characterization of a bio-assay of erectile function in a rat model. J Urol. 145 (5), 1099-1102 (1991).
- Martinez-Pineiro, L., et al. Rat model for the study of penile erection: pharmacologic and electrical-stimulation parameters. Eur Urol. 25 (1), 62-70 (1994).
- Hayashi, N., et al. The effect of FK1706 on erectile function following bilateral cavernous nerve crush injury in a rat model. J Urol. 176 (2), 824-829 (2006).
- Burnett, A. L., Becker, R. E. Immunophilin ligands promote penile neurogenesis and erection recovery after cavernous nerve injury. J Urol. 171 (1), 495-500 (2004).
- Yamashita, S., et al. Nerve injury-related erectile dysfunction following nerve-sparing radical prostatectomy: a novel experimental dissection model. Int J Urol. 16 (11), 905-911 (2009).
- Burnett, A. L., et al. GGF2 is neuroprotective in a rat model of cavernous nerve injury-induced erectile dysfunction. J Sex Med. 12 (4), 897-905 (2015).
- Lin, H., et al. Nanoparticle Improved Stem Cell Therapy for Erectile Dysfunction in a Rat Model of Cavernous Nerve Injury. J Urol. 195 (3), 788-795 (2016).
- Kapoor, M. S., Khan, S. A., Gupta, S. K., Choudhary, R., Bodakhe, S. H.
- Mehta, N., Sikka, S., Rajasekaran, M. Rat as an animal model for male erectile function evaluation in sexual medicine research. J Sex Med. 5 (6), 1278-1283 (2008).
- Cellek, S., Bivalacqua, T. J., Burnett, A. L., Chitaley, K., Lin, C. S. Common pitfalls in some of the experimental studies in erectile function and dysfunction: a consensus article. J Sex Med. 9 (11), 2770-2784 (2012).
- Chung, E., De Young, L., Brock, G. B. Investigative models in erectile dysfunction: a state-of-the-art review of current animal models. J Sex Med. 8 (12), 3291-3305 (2011).
- Mullerad, M., Donohue, J. F., Li, P. S., Scardino, P. T., Mulhall, J. P. Functional sequelae of cavernous nerve injury in the rat: is there model dependency. J Sex Med. 3 (1), 77-83 (2006).
- Albersen, M., et al. Injections of adipose tissue-derived stem cells and stem cell lysate improve recovery of erectile function in a rat model of cavernous nerve injury. J Sex Med. 7 (10), 3331-3340 (2010).
