Summary
一過性エクソソーム通常筋前駆細胞由来の移植によるデュシェンヌ型筋ジストロフィー マウスの心機能を改善するためにプロトコルを紹介します。
Abstract
デュシェーヌ型筋ジストロフィー (DMD) は、X 連鎖劣性遺伝病機能ジストロフィン蛋白質の欠乏によって引き起こされます。病気を治癒することはできませんと進行するにつれて、患者は拡張型心筋症、不整脈、うっ血性心不全の症状を開発します。DMDMDX変異マウスは、ジストロフィンを発現していないと、DMD のマウスのモデルとして使われます。最近の研究では、我々 は観察幅広タイプ (WT) 心筋内注射すること-筋前駆細胞由来エクソソーム (MPC-エキソ) は一過性だった関連付けられている DMDMDX変異マウスの心筋内のジストロフィンの発現を復元示唆して心臓の機能の一時的な改善で WT MPC エキソ DMD の心臓の症状を緩和するためのオプションがあります。この記事では、MPC-エキソ精製と DMDMDX変異マウスの心移植の手法について説明します。
Introduction
デュシェンヌ型筋ジストロフィー (DMD) は X 連鎖劣性、進歩的な神経筋疾患です DMD 遺伝子と機能ジストロフィン1の損失の突然変異によって引き起こされます。ジストロフィンは主に骨格筋や心筋、表し、少ない平滑筋と腺内分泌ニューロン2,3で表されます。DMD は、3,500 に 5,000 新生児男の子世界4、5の 1 の発生率と筋ジストロフィーの最も一般的なタイプです。個人は通常進行性筋壊死、思春期、および心不全と呼吸不全6のための彼らの生命の第 2 から第十年の死によって歩行自立の損失を開発します。
拡張型心筋症、不整脈、うっ血性心不全は、DMD7,8の一般的な心血管症状です。病気を治癒することはできません、支持療法が症状を改善したり、心不全の進行を遅らせるが、心臓機能9,10を改善するために非常に困難です。
DMD 患者は、X-リンクされている筋ジストロフィーのよう (MDX) マウスはジストロフィン蛋白質および11心筋症の症状を呈するに欠乏しているし、関連付けられている DMD 心筋症研究で広く使用されしたがって。影響を受ける筋肉のジストロフィンを復元、するために同種造血幹細胞治療は、DMD12,13,14の効果的な治療であると証明しました。各種細胞から分泌される 30-150 nm 膜小胞エクソソームはメッセンジャー RNA (mRNA)、非コーディング RNAs15,16,17 などの遺伝学的物質輸送による細胞間コミュニケーションの重要な役割を再生します。 ,18,19,20,21。
私たちの以前の研究に由来する筋前駆細胞 (MPC)、C2C12 細胞株などエクソソームはジストロフィンを転送できることを示されているホスト心筋心臓噴22後の同種の配信にしたを示す mRNAMPC 派生エクソソーム (MPC-エキソ) 一過性 MDX マウスにおける DMD 遺伝子発現を復元できます。MPC-エキソ精製と移植技術について説明します。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
動物は、承認されたプロトコルおよび機関動物ケアとオーガスタ大学ジョージア医科大学の利用委員会の動物福祉規則に従って処理されていました。
1 MPC 派生エクソソームの分離, 精製
- 20 mL 完全・ ダルベッコと 15 cm 細胞培養皿の中シード 5 x 106 C2C12 細胞変更イーグル培地 (DMEM) 10% 牛胎児血清 (FBS)、100 U/mL ペニシリン G および 100 μ g/mL ストレプトマイシンを含みます。37 ° C と 5% CO2で孵化させなさい。
- FBS の 100,000 × gで遠心スイング バケツの回転子を使用して 4 ° C で 18 h のエキソソーム枯渇媒体を準備します。ペレットを破棄します。
- 単層細胞培養皿で 80% の合流点に達するときエキソソーム枯渇の中で完全な DMEM を置き換えます。
- 転送ピペットを使用して、細胞培養ディッシュ計 3 回のすべての 48 h から上澄みを収集します。50 mL 遠沈管で残りのセルを削除する 10 分間 150 × gで遠心上清を収集します。
- 細胞の残骸を除去するために 0.22 μ m のフィルターを通して、上澄みをフィルターします。遠心フィルター エクソソームを沈殿させる 4 ° C で 120 分 100,000 × gでスイング バケツの回転子を使用して超クリアなチューブ中。
- リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) でエキソソームを含むペレットを再懸濁します、PBS と全体の超クリアなチューブを埋めます。汚染タンパク質を除去するために 4 ° C で 120 分のこの懸濁液 100,000 × gで遠心を実行します。
- 上澄みを廃棄し、100 μ L の PBS でエキソソーム ペレットを再懸濁します。将来の使用に備えて-80 ° C で保存します。
- 電子顕微鏡による解析、室温で 5 分間 200 メッシュ ホルムバール被覆銅電子顕微鏡グリッド上 exosomal 懸濁液の 3 μ L を配置します。23の染色標準 005. を続行します。透過電子顕微鏡によるセミドライ グリッドを確認します。
2. 心筋エキソソーム配信
注:各グループの六つのマウスを使いました。
- DBA/2 j-DMDMDXマウス (男性; 年齢 > 10 ヶ月、体重 (BW) > 18 g) を 100 mg/kg BW ケタミン 10 mg/kg BW、キシラジンの併用腹腔注射で麻酔し、つま先ピンチによって麻酔の深さを確認します。
- 臥位手術のプラットフォーム上で各マウスを修正するには、テープを使用して各肢を確保し、3-0 縫合場所で上顎を保持する上の歯の下に水平に配置します。
- 脱毛クリームを皮膚から毛皮を削除するマウスの胸の左側に適用されます。
- 24 G カテーテルを用いた口腔内から気管内挿管を行いマウス齧歯動物人工呼吸器を使用して 195 の呼吸/分の速度で部屋の空気を換気 (材料の表を参照してください)。
- 75% アルコール 10% ポビドン ヨードと皮膚を消毒します。
- 10\u201215 mm 斜切開左胸骨端から向かって左側の脇の下を作る、はさみ、によって、大胸筋および小胸筋をカット、第 4 肋間スペースを通って左開胸を行います。10 mm の幅に胸腔を広げるためリトラクター バンドをそっと挿入します。左の肺への損傷を避けるために注意してください。
- 心膜を削除し、それらを抜く際、中心部を公開するリトラクター ヒントの背後にそれらを置く 2 つのストレート ピンセットを使用します。MPC Exo を注入 (30 μ L の PBS で 50 μ g) または 1 つのサイトで 31 G インスリンの針を使用して左心室の前壁に 30 μ L の PBS (コントロール) として intramyocardially。
- 6-0 ナイロン縫合糸を使用して、シーケンスの胸腔内、大胸筋の筋肉と皮膚を閉じます。
- マウスを回復します。リズミカルな自発呼吸があれば、一度人工呼吸器と extubate から、マウスを削除します。観察し、手術後マウスの状態を記録します。
3. 心エコー
注:実験群に目がくらんで、単一の観察者は、心エコー検査、データ分析を行います。
- PBS/エキソソーム移植後 2 日間は麻酔 1\u20122% イソフルランとマウスです。
- テープを使用して仰臥位の位置でマウスを修正し、左胸の部分に予熱音響ゲルを適用します。
-
前述の16,24として、心エコー法による左室機能を評価します。
- 2 次元 (B モード)、左心室 (LV) の傍胸骨長軸ビューを取得し、乳頭筋レベルで LV の短い軸のビューを取得する超音波プローブ 90 ° を回転します。
- M モード心エコー画像を記録し、メジャー左心室末期径 (LVEDD)、左室収縮末期容積 (LVESD)、左心室末期容積 (LVEDV)、左室収縮末期容積 (LVESV)。
注:短縮率 (FS %) = [(LVEDD − LVESD)/LVEDD 】 x 100、および左室駆出率 (LVEF %) = [(LVEDV − LVESV)/LVEDV] x 100。
4. 免疫組織化学
- PBS/エキソソーム移植後 2 日間は (参照ステップ 2.1) マウスを麻酔し、胸骨を切開胸腔内を公開します。下大静脈の解剖、3 ml の PBS、常温で 4% パラホルムアルデヒドの 3 mL に続いて 5 mL 注射器に付いている 25 G 針と蝶カテーテルを用いた左心室尖を通して心臓を灌流します。
- 固定の心を埋め込むパラフィンで、5 μ m 厚いセクションにカットします。
- キシレンのスライドを deparaffinize、次の順序でのエタノール溶液から水分補給: 100% キシレン (3 分)、100% キシレン (3 分)、100% エタノール (1 分)、100% エタノール (1 分)、95% エタノール (1 分)、80% エタノール (1 分)、H2O (1 分)。
- 組織切片を室温で 8 分 4% パラホルムアルデヒドで固定します。
- クエン酸ナトリウム (0.01 M、pH 6.0) のスライドを没頭し、抗原レトリーバーを用いた抗原検索を実行します。
- PBS で 1% ポリエチレング リコール tert-オクチルフェニル エーテルと室温で 1 時間のセクションを permeabilize します。
- 室温で 1 時間 PBS で 5% ヤギ血清を使用してセクションをブロックします。
- 希釈した一次抗体 (抗ジストロフィン抗体) PBS (1: 100) で 4 ° C で一晩でセクションをインキュベートし、5 分 3 回を PBS で洗浄します。
- セクション希釈した二次抗体 (Alexa Fluor 488 標識ヤギ抗うさぎ IgG) PBS (1: 400) で常温で 45 分間、インキュベートします。
- 蛍光が蛍光消光キット (材料の表を参照) を使用してコントロールします。
- 使用マウント培 DAPI (材料の表を参照)、スライドをマウントします。
- 共焦点顕微鏡のスライドを確認します。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
分離し、C2C12 細胞からエクソソームを浄化のフローチャートを図 1に示します。エクソソームの存在を確認するには、透過電子顕微鏡による解析を行った。透過電子顕微鏡像 (図 1B) は、派生した C2C12 エクソソームの明るいとラウンド形状の小胞の形態を示しています。西部のしみの分析は CD63 と TSG101 を含むエキソソーム マーカーの存在を確認した (図 1C)。
心筋注入の成功を示す心筋 MDX マウス (図 2)、左心室の前壁に PBS/MPC-エキソ注入後半透明浮腫領域を観測しました。
免疫蛍光染色、ジストロフィンと共焦点顕微鏡とイメージングを行った心臓 MPC-エキソ配信 MDX 心の中でジストロフィン蛋白発現の復元をするかどうかを確認します。部分的に復元で (図 3A) 心筋細胞の膜のローカリゼーションとジストロフィン式を見ました。私たちが、2 日後心筋 PBS 心エコー法による心機能を測定 MPC Exo の移植が MDX マウスの心臓の機能を向上させるかどうかを確認するのに/MPC-エキソ配信。図 3Bのように、MPC-エキソ治療は PBS、MPC-エキソ移植が MDX マウスの心機能を改善することを示唆するいると比較して前方壁運動を改善しました。
図 1: エキソソーム浄化と電子顕微鏡法によるキャラクタリゼーション。図 (A) 分離の各ステップと MPC Exo の精製を示しています。(B) イメージは、電子顕微鏡下でラウンドとカップ状の小胞を示しています。スケールバー = 100 nm。(C) 西部のしみの分析は、エキソソーム マーカー CD63 と TSG101 の存在を確認しました。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 2: PBS または MPC Exo の心筋内注入。半透明の浮腫は左心室の前壁心筋 PBS/エキソソーム配信後に観察されました。(A) PBS 注入。(B) MPC-エキソ注入。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 3: MPC Exo の心筋内配信は部分的に MDX 心の中でジストロフィン式を回復し、心エコー検査を用いて心機能を改善します。(A) 共焦点免疫蛍光染色の MDX マウスの心臓セクション 2 日後心筋 PBS/MPC-エキソ配信。ブルー グリーン DAPI を = = 抗ジストロフィン抗体。(B) 心機能の PBS/MPC-エキソ治療 2 日後心エコー測定。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
純粋なエクソソームを分離する方法は、エクソソームの機能を研究するために不可欠です。エキソソーム分離の一般的なテクニックの 1 つはポリエチレン グリコール (ペグ) を介した降水量17,18,25です。エクソソームを釘で沈殿し、低速遠心分離によってペレットできます。ペグを介した浄化は非常に便利で、低コスト、それは任意の高度な機器を必要はありませんが、他のリポタンパク質一緒に沈殿することがあります、削除しにくいのでエクソソームの純度についての懸念があります。限外濾過は分子量と除外サイズ制限26に基づいてエキソソーム分離のため定期的な方法です。限外ろ過分離による遠心分離より高速ですが、大きい小胞構造上の損傷を引き起こすことができます。膜エクソソーム CD9、CD63 と CD8127などのさまざまなエピトープの存在は、これらのエピトープと抗体磁性ビーズに結合イムノアフィニティーカラム相互作用によってエクソソームを分離する方法を提供します。免疫は高い特異性28が、この手法はのみ合計エキソソーム人口のサブセットの特定の欠点があり、実験の結果を歪めることがあります。したがって、遠心はエキソソーム機能に関するこの研究に適してするようです。
連続超遠心法によるエクソソーム浄化のための方法を提案する.150 g細胞の残骸、アポトーシス小体、小胞 220 を超える x での遠心分離によって細胞上清から残りを削除後上澄みを 0.22 μ m のフィルターを通過して nm を取り外した。エクソソームはあった、100,000 × gで初期超遠心法による小球形。削除可能な蛋白質の汚染は、PBS でエキソソーム ペレットを再後g遠心 x 2 つ目 100,000 を実行しました。私たちの経験に従って連続超遠心法の利点は、純度の高いエクソソームの生産、コスト効率、しかし、それは低収量の不利な点。
左心室のほとんどをカバーし、漏れを避けるため注入エクソソームを許可するために約 20 ° に曲げて先端で 31 G インスリンの針を使用して 1 つの心筋内注入を行った。このテクニックは、心筋にほとんどエクソソームの配信の成功にとって重要です、ホスト心筋細胞に注入されたエクソソームの露出を最大化します。また、左心室の前壁の中央部にエクソソームを注入することをお勧めします。注入が完了したら、通常液体の漏れを防ぐために 1 分の注射部位に針を保持します。成功した注射は注射部位周囲の半透明浮腫の存在によって確認されました。
本研究では、同種の MPC-エキソ移植できる一過性心でジストロフィン式を復元し、MDX マウス22, DMD 患者の症状緩和のための新しい戦略を提供する可能性がありますの心臓機能を改善ことを発見します。これは、改良された心臓機能のメカニズムは、ただし、我々 は抗炎症; などの他のメカニズムを除外することはできません仮定 MDX マウス心の回復されたジストロフィン蛋白質の表現を見ましたので最近の報告書を示した、間葉系幹細胞由来エクソソーム抗炎症29と血管新生に貢献する梗塞心筋の微小環境を向上させるため、また、Aminzadeh ら30は最近ことを報告丹治由来細胞 (CDCs) と、エクソソームは一過性 DMD マウスの完全な長さのジストロフィンの発現を復元できます。DMD は複数の臓器を含む全身性の疾患であることを考慮、エキソソームのローカル心筋配信、横隔膜筋が原因の呼吸不全を治療するため適していません。したがって、エクソソーム、静脈注射などの全身投与が治療の可能性、しかし、主要な課題は複数の筋肉組織にエクソソームをターゲットに効果的な戦略を開発します。もっと重要なは、エキソソーム治療、部分的にジストロフィンの発現を復元し、心臓機能を改善にのみ一時的な影響であります。効果的で長期的な DMD の治療が必要です。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
すべての著者は、利害の対立があるないことを宣言します。
Acknowledgments
唐は部分的に米国心臓協会によって支えられた: GRNT31430008, NIH AR070029, NIH HL086555, NIH HL134354。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.22 μm Filter | Fisherbrand | 09-720-004 | |
| 15 cm Cell Culture Dish | Thermo Fisher Scientific | 157150 | |
| 24 G catheter | TERUMO | SR-OX2419CA | |
| 31 G insulin needle | BD | 328291 | |
| 4% paraformaldehyde | Affymetrix | AAJ19943K2 | |
| 50 mL Centrifuge Tubes | Thermo Fisher Scientific | 339652 | |
| 6-0 suture | Pro Advantage by NDC | P420697 | |
| Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgG | Thermo Fisher Scientific | A-11008 | |
| Antibiotic Antimycotic Solution | Corning | 30-004-CI | |
| Anti-Dystrophin antibody | Abcam | ab15277 | |
| Antigen retriever | Aptum Biologics | R2100-US | Antigen recovery |
| Autofluorescence Quenching Kit | Vector Laboratories | SP-8400 | |
| C2C12 cell line | ATCC | CRL-1772 | |
| Centrifuge | Unico | C8606 | |
| Change-A-Tip High Temp Cauteries | Bovie Medical Corporation | HIT | |
| Confocal microscopy | Zeiss | Zeiss 780 Upright Confocal | |
| DBA/2J-mdx mice | The Jackson Laboratory | 013141 | |
| DMEM | Corning | 10-013-CM | |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Corning | 35-011-CV | |
| Goat serum | MP Biomedicals, LLC | 191356 | |
| Isoflurane | Patterson Veterinary | 07-893-1389 | |
| Ketamine | Henry Schein | 056344 | |
| Mounting Medium with DAPI | Vector Laboratories | H-1500 | |
| Mouse Retractor Set | Kent Scientific | SURGI-5001 | |
| Polyethylene glycol tert-octylphenyl ether | Fisher Scientific | BP151-100 | |
| Rodent ventilator | Harvard Apparatus | 55-7066 | |
| SW-28 Ti rotor | Beckman | 342207 | |
| The Vevo 2100 Imaging Platform | FUJIFILM VisualSonics | Vevo 2100 | Ultrasound System |
| Ultracentrifuge | Beckman | 365672 | |
| Ultra-Clear Tubes | Beckman | 344058 | |
| Xylazine (XylaMed) | Bimeda-MTC Animal Health Inc. | 1XYL003 8XYL006 |
References
- Yiu, E. M., Kornberg, A. J. Duchenne muscular dystrophy. Journal of Paediatrics and Child Health. 51 (8), 759-764 (2015).
- Nudel, U., et al. Duchenne muscular dystrophy gene product is not identical in muscle and brain. Nature. 337 (6202), 76-78 (1989).
- Rae, M. G., O'Malley, D. Cognitive dysfunction in Duchenne muscular dystrophy: a possible role for neuromodulatory immune molecules. Journal of Neurophysiology. 116 (3), 1304-1315 (2016).
- Mah, J. K., et al. A systematic review and meta-analysis on the epidemiology of Duchenne and Becker muscular dystrophy. Neuromuscular Disorders. 24 (6), 482-491 (2014).
- D'Amario, D., et al. A current approach to heart failure in Duchenne muscular dystrophy. Heart. 103 (22), 1770-1779 (2017).
- Koeks, Z., et al. Clinical Outcomes in Duchenne Muscular Dystrophy: A Study of 5345 Patients from the TREAT-NMD DMD Global Database. Journal of Neuromuscular Diseases. 4 (4), 293-306 (2017).
- Kamdar, F., Garry, D. J. Dystrophin-Deficient Cardiomyopathy. Journal of the American College of Cardiology. 67 (21), 2533-2546 (2016).
- Wang, Z., et al. Regenerative Therapy for Cardiomyopathies. Journal of Cardiovascular Translational Research. , (2018).
- Fayssoil, A., Nardi, O., Orlikowski, D., Annane, D. Cardiomyopathy in Duchenne muscular dystrophy: pathogenesis and therapeutics. Heart Failure Reviews. 15 (1), 103-107 (2010).
- Hagan, M., Ashraf, M., Kim, I. M., Weintraub, N. L., Tang, Y. Effective regeneration of dystrophic muscle using autologous iPSC-derived progenitors with CRISPR-Cas9 mediated precise correction. Medical Hypotheses. 110, 97-100 (2018).
- Quinlan, J. G., et al. Evolution of the mdx mouse cardiomyopathy: physiological and morphological findings. Neuromuscular Disorders. 14 (8-9), 491-496 (2004).
- Siemionow, M., et al. Creation of Dystrophin Expressing Chimeric Cells of Myoblast Origin as a Novel Stem Cell Based Therapy for Duchenne Muscular Dystrophy. Stem Cell Reviews and Reports. 14 (2), 189-199 (2018).
- Sienkiewicz, D., Kulak, W., Okurowska-Zawada, B., Paszko-Patej, G., Kawnik, K. Duchenne muscular dystrophy: current cell therapies. Therapeutic Advances in Neurological Disorders. 8 (4), 166-177 (2015).
- Zhang, Y., et al. Long-term engraftment of myogenic progenitors from adipose-derived stem cells and muscle regeneration in dystrophic mice. Human Molecular Genetics. 24 (21), 6029-6040 (2015).
- Ju, C., et al. Transplantation of Cardiac Mesenchymal Stem Cell-Derived Exosomes for Angiogenesis. Journal of Cardiovascular Translational Research. 11 (5), 429-437 (2018).
- Ju, C., et al. Transplantation of Cardiac Mesenchymal Stem Cell-Derived Exosomes Promotes Repair in Ischemic Myocardium. Journal of Cardiovascular Translational Research. 11 (5), 420-428 (2018).
- Ruan, X. F., et al. Suxiao Jiuxin pill promotes exosome secretion from mouse cardiac mesenchymal stem cells in vitro. Acta Pharmacologica Sinica. 39 (4), 569-578 (2018).
- Ruan, X. F., et al. Exosomes from Suxiao Jiuxin pill-treated cardiac mesenchymal stem cells decrease H3K27 demethylase UTX expression in mouse cardiomyocytes in vitro. Acta Pharmacologica Sinica. 39 (4), 579-586 (2018).
- Chen, Y., Tang, Y., Fan, G. C., Duan, D. D. Extracellular vesicles as novel biomarkers and pharmaceutic targets of diseases. Acta Pharmacologica Sinica. 39 (4), 499-500 (2018).
- Chen, Y., Tang, Y., Long, W., Zhang, C. Stem Cell-Released Microvesicles and Exosomes as Novel Biomarkers and Treatments of Diseases. Stem Cells International. 2016, 2417268 (2016).
- Murphy, C., et al. Emerging role of extracellular vesicles in musculoskeletal diseases. Molecular Aspects of Medicine. 60, 123-128 (2018).
- Su, X., et al. Exosome-Derived Dystrophin from Allograft Myogenic Progenitors Improves Cardiac Function in Duchenne Muscular Dystrophic Mice. Journal of Cardiovascular Translational Research. , (2018).
- Hu, G., et al. Exosome-mediated shuttling of microRNA-29 regulates HIV Tat and morphine-mediated neuronal dysfunction. Cell Death & Disease. 3, 381 (2012).
- Bayoumi, A. S., et al. A carvedilol-responsive microRNA, miR-125b-5p protects the heart from acute myocardial infarction by repressing pro-apoptotic bak1 and klf13 in cardiomyocytes. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 114, 72-82 (2018).
- Wang, Y., et al. Exosomes/microvesicles from induced pluripotent stem cells deliver cardioprotective miRNAs and prevent cardiomyocyte apoptosis in the ischemic myocardium. International Journal of Cardiology. 192, 61-69 (2015).
- Cheruvanky, A., et al. Rapid isolation of urinary exosomal biomarkers using a nanomembrane ultrafiltration concentrator. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 292 (5), 1657-1661 (2007).
- Oksvold, M. P., Neurauter, A., Pedersen, K. W. Magnetic bead-based isolation of exosomes. Methods in Molecular Biology. 1218, 465-481 (2015).
- Pedersen, K. W., Kierulf, B., Neurauter, A. Specific and Generic Isolation of Extracellular Vesicles with Magnetic Beads. Methods in Molecular Biology. 1660, 65-87 (2017).
- Teng, X., et al. Mesenchymal Stem Cell-Derived Exosomes Improve the Microenvironment of Infarcted Myocardium Contributing to Angiogenesis and Anti-Inflammation. Cellular Physiology and Biochemistry. 37 (6), 2415-2424 (2015).
- Aminzadeh, M. A., et al. Exosome-Mediated Benefits of Cell Therapy in Mouse and Human Models of Duchenne Muscular Dystrophy. Stem Cell Reports. 10 (3), 942-955 (2018).
