Summary
מאמר זה מתאר שיטה עבור culturing וניתוח החוצה הקודקוד הקודקודית תא האפיתל של פקולי כדורית מבודדים מכליה העכבר. שיטה זו יכולה לשמש לחקר מסלולים המעורבים התפשטות התא הקודקודית והגירה.
Abstract
תא האפיתל הקודקוד (הפעלה) הוא אחד הגורמים העיקריים המעורבים בפיתוח והתקדמות של טרשת נפוצה. עיכוב של מסלולים המעורבים ההפעלה התא אפיתל הקודקוד יכול אפוא להיות כלי כדי להחליש את ההתקדמות של מחלות פקפיות. מאמר זה מתאר שיטה לתרבות ולנתח את הצמיחה של תא אפיתל הקודקוד של פקולי כדורית מבודדים מכליה העכבר. לאחר ניתוח כליות מבודדות של העכבר, הרקמה היא כתוש, ו גלואראולי מבודדים על ידי ניפוי. פקאולי באנקפסולציה נאספים, ו פקולי בודד הם מתורבתים עבור 6 ימים כדי לקבל את הצמיחה של התאים הקודקודית של תאי אפיתל. במהלך תקופה זו, התפשטות הדופן הקודקודית והגירה ניתן לנתח על ידי קביעת מספר התא או שטח המשטח של תאים מתרחב. לפיכך, ניתן להשתמש באפשרות זו ככלי לחקר ההשפעות של ביטוי גנטי משתנה בטרנסגניים-או בעכברים או בהשפעות של תנאי התרבות על מאפייני הצמיחה של תאים אפיתל הקודקוד ואיתות. באמצעות שיטה זו, מסלולים חשובים המעורבים בתהליך של הפעלת תא אפיתל הקודקוד וכתוצאה מכך ניתן ללמוד טרשת נפוצה.
Introduction
מחלות פקבוליות הם קבוצה חשובה של הפרעות כליות ומייצגים הגורם העיקרי של מחלת כליות בשלב הסיום (ESRD). למרבה הצער, אפשרויות טיפול ספציפיות מוגבלות התקדמות כדי ESRD הוא בלתי נמנע. מחלות פקפיות מוגדרות על ידי נוכחות של פציעה פקפיות וניתן לקבץ במחלות דלקתיות ושאינן דלקתיות. למרות העלבון הראשוני הוא שונה, מחקרים שנעשו לאחרונה הראו כי מנגנון הסלולר המשותף מוביל היפרפלזיה תאית האפיתל התאים ובסופו של דבר כדי גלולוולוטרשת בכל מחלות פקאיות, ללא קשר לגורם הבסיסי1,2,3,4.
באופן ספציפי, זה הוכח כי נגעים גלובליים מורכבים בעיקר של הפעלת תאים אפיתל הקודקוד5,6. התאים האפיתל הם שטוחים בתאים. שעומדים בתור הקפסולה של באומן עם זאת, כל פציעה גלובציט או בגלל מוטציות גנטיות (למשל, מסוים או cytopathies ספציפי או מיטוכונדריאלי), דלקת או היפרסינון (למשל, נגרמת על ידי מסה כליות מופחתת, יתר לחץ דם, השמנה או סוכרת) יכול להפעיל את ההפעלה של תאים אפיתל הקודקוד. תאי אפיתל הופעל הקודקוד מתרבים הפקדה לחילוץ מטריקס אשר תוצאות היווצרות של crescents סלולריים או נגעים מאוים5,7,8. ההתקדמות של תהליכים אלה גורמת לאובדן תפקוד הכליות9. לכן, ההפעלה תא אפיתל הקודקוד הוא גורם מפתח בפיתוח והתקדמות של טרשת נפוצה במחלות פקפיות דלקתיות ולא דלקתיות,1,2,3,4,10.
התהליכים המולקולריים של הפעלת תאי האפיתל הקודקודית עדיין אינם ידועים ברובו. מחקרים שנעשו לאחרונה מראים כי הופעל תאים אפיתל הקודקוד דה נובו אקספרס CD44, קולטן כי חשוב להפעלת מסלולים שונים המעורבים התפשטות הסלולר והגירה. יתר על כן, עיכוב של CD44 הוכח לעכב את ההפעלה תא אפיתל הקודקוד והחליש את ההתקדמות של היווצרות הסהר לבין טרשת נפוצה במודלים של בעלי חיים של דלקת, כמו גם מחלות פקפיות דלקתיות לא דלקתית11,12.
כמו ההפעלה תא האפיתל הקודקוד הוא נגן מפתח לפיתוח של טרשת נפוצה והיווצרות הסהר, עיכוב של תאים אלה יכול להאט את ההתקדמות של מחלות פקפיות. ההסבר של מסלולים מולקולריים הנהיגה הקודקודית התא ההפעלה עלולה להוביל לפיתוח של התערבויות טיפוליות ספציפיות כי החליש את היווצרות של הנגעים hyperplastic ו גלובאפיללותטיות במחלות פקפיות.
בדגמי בעלי חיים ניסיוניים, קשה לעתים קרובות לספק ראיות להשפעה ישירה של ביטוי גנטי משתנה (מודלים של מודלים או העכבר הטרנסגניים) או טיפול תרופתי בתאי האפיתל הקודקודית. בתוך העכבר הרגיל להוריד את הנצפים שינויים vivo עשוי להיות מוסבר על ידי שינויים ישירים בתאי אפיתל הקודקוד. עם זאת, מאחר שביטוי הגנים משתנה גם בסוגי תאים אחרים בתוך העכבר, אין אפשרות לכלול אפקטים עקיפים המתווכת על-ידי סוגי תאים אחרים. התפתחות של עכברים מותנה -לקס מונע על ידי יזמים פעילים בעיקר בתאי אפיתל הקודקוד סיפק פתרון במקרים מסוימים13. עם זאת, מודלים טרנסגניים מותנים הם מורכבים ולמרות שקווים מותנים יותר הופכים לזמינים, עבור רבים מקווי העכבר הרגילים או הטרנסגניים, אין עדיין תחליף מותנה.
כדי ללמוד את ההשפעות הישירות על התאים האפיתל הקודקודית, הקבוצה שלנו פיתחה שיטת vivo ex באמצעות בודד כדורית לשעבר מבודדים מכליות העכבר כדי למדוד ולנתח את התפשטות התא אפיתל הקודקוד והגירה. שיטה זו תאפשר לנו לקבוע הקודקודית תא האפיתל אפקטים ספציפיים כדי למצוא מסלולים אחראיים ההפעלה התא אפיתל הקודקוד ולבדוק אפשרויות טיפול כדי לעכב את ההפעלה.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
כל ניסויי החיות בוצעו על פי ההנחיות של ועדת האתיקה לבעלי חיים של אוניברסיטת רדבעוד בניימכן.
הערה: עכברים שאינם מטופלות, מסוג פראי בריא (n = 4) ו -cd44-/- (n = 4) הוקריבו בגיל 12 עד 16 שבועות. שימשו את שני העכברים הזכריים והנקביים. כל העכברים היו על הרקע C57Bl/6.
1. ניתוח כליה של העכבר
- הקריבו עכברי WT בריאים או עכברים ששונו גנטית על ידי פריקה צוואר הרחם.
- לנתח את כל הכליות העכבר ישירות לאחר הקרבת העכברים. בשביל זה, לבצע את הניתוח החציוני באמצעות מספריים הבטן, חיתוך העור ולאחר מכן שרירי הבטן. להסיר את המעיים ולמקם אותו ליד העכבר.
- לשחרר את הכליות מרקמת חיבור ולהוציא את הכליה באמצעות מלקחיים כירורגי, חיתוך עורק הכליה, וריד הכליה ו שופכן עם מספריים.
- הסר את קפסולות כליות מן הכליות על ידי החזקת הכליה עם מלקחיים כירורגי למשוך את הקפסולה באמצעות זוג אחר של מלקחיים.
- מניחים את הכליות בלוח של 6-היטב התרבות התא (2 כליות/ובכן) הכין 2 מ ל של הנקס ' מאוזנת תמיסת מלח (HBSS) לכל טוב ומקום על הקרח.
2. בידוד פקאולי מכליות העכבר
- העבר את הכליות לצלחת פטרי 100 מ"מ והוא משתמש בכליות לחתיכות קטנות של 1-2 מ"מ באמצעות שני מנתחים. לשמור את חתיכות כליה טחון רטוב באמצעות 1-2 מ ל של HBSS.
- מניחים את חתיכות כליה טחון על גבי מסננת מתכת 300 יקרומטר ולחץ על הכליה דרך המכתש באמצעות בוכנה של מזרק 20 מ ל. שוב ושוב את המסננת עם hbss בין לאסוף את הזרימה-דרך בצלחת פטרי נקי באמצעות pipet סרולוגית. לאסוף גם כל מה שנשאר/מקלות בצד התחתון של המסננת ידי לגרד אותו עם אזמל ולהעביר אותו לזרימה שנאספו דרך (הומוגון כליה ate).
- לשטוף את הכליות הכליה לאכול דרך מסננת 75 יקרומטר עם hbss. לאסוף את הזרימה-דרך ולאחר מכן לשטוף את זה זרימה-דרך דרך מסננת 53 יקרומטר. שטוף את שני הצדדים באמצעות HBSS כדי להסיר את כל המבנים הקטנים.
הערה: בשלב זה הזרימה-אף היא שוטפים אך לא לחצה דרך 75 יקרומטר ו 53 יקרומטר מסננת. כביסה עם HBSS היא הכרחית להסרת פסולת ומבנים קטנים יותר על הסיבס. לכן בדרך כלל 200-300 mL של HBSS משמשים בסך הכל. - לאסוף את מבני הכליה/חומר שנשאר על 75 יקרומטר ו 53 יקרומטר מסננת ידי שטיפת המשטח העליון של הסיבס עם בינונית שונה של מדיום של הנשר (dmem) שיושלם עם 20% סרום לעגל עוברי (fcs) ולהעביר את החומר לתוך 6-ובכן אולטרה מצורף מיקרופלייט.
הערה: לשטוף את המשטח העליון של המכתש, לשטוף את המכתש בתנוחה מוטה (> 45 °) ולאסוף את חומר הכליה בקצה המכתש. החומר שנאסף מועשר עבור כימוס, כמו גם פקולי עריפת ראש, מציג רק כמה רסיסים צינורי. . פקולי האנקפסולציה הם דביקים מאוד כדי לאסוף בודד פקולי, ולכן חשוב למנוע פקולי לדבוק במשטח של צלחת פטרי או צלחת טובה. כדי להימנע מדבקות, השתמש במדיום עם 20% FCS והשתמש בלוחות מצורפים אולטרה-נמוכים לשלב זה.
3. התפתחות מגדילה של פקפיות
- הביאו את המיקרו-לוחית המצורפים האולטרה-נמוכה למיקרוסקופ אור הפוך ואספו כימוו/או פקעיות מעריפת ראש בתוספת של 20 μL. הימנע ללטף מבנים אחרים פסולת. לאחר איסוף פקעית בודדת בקצה הפיפטה, הוסיפו בינונית DMEM דיום טרייה מבלי לאסוף חומר כליות לאותו קצה הפיפטה לנפח של 20 μL.
- העבר את הגלובולוס היחיד עם 20 מדיום μL Dמאמ למרכז הבאר של לוח התרבות 24-התאים והדגירה עבור 3 h ב 37 ° צ' ו 5% (v/v) CO2 כדי לאפשר חיבור של הפקעית למרכז הבאר. בזהירות להעביר את הצלחת כדי להימנע מרחף של הפקעית אל הדיירים של הבאר.
- לאחר 3 שעות דגירה, הפקעית מחוברת למרכז הבאר. בקפידה להוסיף 500 μl של המדיום בסיס אנדותל (ebm) בתוספת עם ערכת פקטור גידול המכיל הידרוקורטיזון, גורם הצמיחה של האדם אנדותל, המוח פרה תמצית ו gentamicin סולפט-אמפוריטיצין B (לוח החומרים) ו נוספים 5% (v/v) fbs ו 1% (v/v) פניצילין/סטרפטומיצין (עט/ה
- תרבות הפקולי בודד עבור 6 ימים ב 37 ° c, 5% (v/v) CO2.
הערה: בתוך 6 ימים הצמיחה המורכבת של תאים אפיתל הקודקוד נוצרות. אם אדם שמטרתו לבדוק את ההשפעות של תרכובות או תרופות ספציפיות על התאים האפיתל הקודקודית זה צריך להיות מתווסף למדיום בתוך תקופה זו של ששה ימים.
4. ניתוח הפצת תאים אפיתל הקודקוד
- . לנתח את הגדילה לאחר 6 ימים קח תמונות מיקרוסקופיים באמצעות מיקרוסקופ אור הפוכה דיגיטלית.
- השתמש בתוכנת ניתוח תמונה (לדוגמה, ImageJ/פיג'י) כדי לקבוע את שטח פני השטח ואת קוטרו של הצמיחה של הפקפיות, ואת מספר התאים הצומחים או הגדלים החשופים.
- כדי לקבוע את פני השטח של צמיחה פקפיות, לפתוח את tif. קובץ של התפתחות הפקפיות עם סרגל בקנה מידה ב-ImageJ. לצייר קו ישר על סרגל סולם ולקבוע את המרחק בפיקסלים על ידי לחיצה על לנתח ולמדוד (למשל, 1 מ"מ = 460 פיקסל).
- לקבוע את הסולם על ידי לחיצה על לנתח, לקבוע קנה מידה ולהקליד את המרחק הידוע בפיקסל (למשל, 460), גם להקליד את המרחק הידוע (למשל, 1) ואת יחידת האורך (למשל, 1 מ"מ). לחץ על אישור.
- קבע אילו תוצאות יופיעו בטבלת התוצאות על-ידי לחיצה על ניתוח ולאחר מכן הגדר מדידות. כדי לקבוע את אזור פני השטח של צמיחת הפקפיות, הפעל את אזור האפשרויות ותווית התצוגה. לחץ על אישור.
- כדי לקבוע את פני השטח של צמיחת הפקפיות, לצייר בחירה ביד חופשית סביב הצמיחה הפקפיות. לחץ על לנתח ולאחר מכן למדוד, הטבלה התוצאה יצוץ ב-imagej מראה את שטח פני השטח של הצמיחה בקנה מידה מוקדם יותר נקבע (ראה שלב 4.4, למשל, mm2).
5. אפיון התפתחות התא הפקייתי
הערה: כדי להעריך את ההרכב הסלולארי של outgrowth, כתמים immunofluorescence לסמנים ספציפיים לתא מתבצעים על הoutgrowth הפקאופיות ב t = 6 ימים.
- בזהירות להסיר את המדיום בעדינות לשטוף את הפקולי פעמיים באמצעות מלוחים מאגור פוספט (PBS).
- מיקוד עבור 10 דקות בטמפרטורת החדר באמצעות 2% (w/v) שיושלם עם 4% (w/v) סוכרוז ב-PBS ולשטוף בזהירות 2x באמצעות PBS.
- דגירה עם הנוגדן העיקרי עם ריכוזמתאים (טבלה של חומרים) מדולל ב-PBS-ovine סרום אלבומין (bsa) 1% (v/v) עבור 1 h בטמפרטורת החדר.
- הסר את פתרון נוגדן ולשטוף בזהירות 3x עם PBS.
- דגירה עם נוגדן משני (טבלת חומרים) מדולל ב-PBS-bsa 1% (v/v) בחושך עבור 45 דקות בטמפרטורת החדר.
- לשטוף בזהירות 3x עם PBS ו-mount באמצעות 1-2 טיפות של בינונית הרכבה מימית עם 4 ′, 6-diamidino-2-פנילילינדול (DAPI) כדי להמחיש גרעינים ולכסות את הבאר עם שובר כיסוי עגול.
- לקחת תמונות מיקרוסקופיים באמצעות מיקרוסקופ פלורסנט.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
דיאגרמה שיטתית של השיטה לביצוע שיטת הגדילה הבין-מרבית מוצגת באיור 1. איור 2א-ד מציג את הגידולים המגלוניים של פקולי האנקפסולציה בנקודות זמן שונות כפי שנצפתה באמצעות מיקרוסקופ אור. גידולים החוצה מוצגים ביום 2, 4 ו 6 (איור 2ב-D) בתרבות לאחר בידוד פקעית מכליה העכבר. על מנת לוודא כי התאים הגוברת הם תאים אפיתל הקודקוד, פקולי עריפת ראש יש גם מבודדים ותרבותי עבור 6 ימים כפי שמוצג באיור 2E, F. במהלך תקופת הדגירה. בתוך 6 ימים באיור 3, כתמים אימונוofor, בוצע עבור סמנים שונים הקודקוד תאים אפיתל, סמנים ספציפיים podocyte ייט, כמו גם סמנים תא אנדותל. התוצאות לאמת כי התאים הגוברת אכן הם תאים אפיתל הקודקוד. איור 4 מראה את הצמיחה של בידוד פקולי מבודדים מcd44-/- לעומת עכברים WT לאחר 6 ימים בתרבות. פקאולי מבודדים מ -cd44-/- עכברים הראו מספר ירידה של תאים הגוברת, כמו גם שטח המשטח ירד של הצמיחה המאפידית לעומת הפקולי מבודדים מעכברים WT, מציע תפקיד חשוב עבור cd44 ההפעלה התא אפיתל הקודקוד כפי שפורסם בעבר11. באיור 5, ניתן לקבל דוגמה, שבה שטח המשטח של התאים האפיתל העיליים המגודלים נקבע באמצעות imagej.
איור 1: סקירה סכימטית של השיטה כדי לבצע שיטת הגדילה של התפתחות המוח כדי לנתח את התפשטות התא אפיתל הקודקוד. (1) הכליות הן גזור מן העכבר הוקרב וכתוש לחתיכות קטנות. (2) רקמת כליות לחצה דרך מסננת 300 יקרומטר ושטפה דרך 75 יקרומטר ו 53 יקרומטר sieves. (3) פקעיות שנשארות על גבי הסירים נאספים באמצעות בינוני + 20% (v/v) FCS ומועברים לצלחת מצורף אולטרה-נמוכה. (4) גלווראולי יחיד נאספים באמצעות מיקרוסקופ אור הפוך ומועברים ללוחות התרבות 24 שעות ביממה. (5) לאחר הדגירה ב 37 ° צ', 5% (v/v) CO2 עבור 6 ימים, ניתן לנתח את הצמיחה של האור באמצעות מיקרוסקופ היפוך דיגיטלי הפוכה. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.
איור 2: מגדילה את הצמיחה של פקולי מבודדת מבודדים מן הכליות לגזור מפני עכברים WT. הצמיחה של הפקולי המארגו1 ב-37 ° c מוצגת בנקודות זמן שונות: (א) 0 ימים, (ב) 2 ימים, (ג) 4 ימים, ו (ד) 6 ימים. בנוסף, הייתה מבודדת ותרבותית ב-37 ° c ותמונות מיקרוסקופיים שצולמו ב-(E) יום 0 ו-(ו) יום 6 מראה לא תאים הגדלים. סרגלי קנה מידה: (A, E, F) 200 μm, (ב) 400 μm, (C, D) 1000 μm. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגירסה גדולה יותר של איור זה.
איור 3: התאים המגודלים להראות ביטוי של הסמן תא אפיתל הקודקוד. כתמים immunofluorescence התבצע ביום 6 לאחר בידוד של פקולי כדוריות יחיד כדי לאפיין את התאים האפיתל הגוברת. תאים הגוברת ויטראז ' לסמנים הקודקודית תאהאפיתל: (א) CD44, (ב) ssecks ו (ג) קלודין -1, אבל לא הראה הביטוי של (ד) הסמן הסגולי-synaptopodin או (E) את התא האנדותל ספציפי לסמן CD31, אשר היו מותאמים בלעדית בתוך הפקעית. סרגלי קנהמידה: (A, B, D, E) 100 μm, (C) 50 μm. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגירסה גדולה יותר של איור זה.
איור 4: הצמיחה של הפקפיות הוא לקוי בגלואראולי מבודד CD44 עכברים. פקולי כליה היתה מבודדת מפני כליות גזור (א) עכברים WT ו (ב) cd44-/- עכברים. תמונות מיקרוסקופיים צולמו לאחר 6 ימים בתרבות באמצעות מיקרוסקופ אור הפוכה דיגיטלית. מספר התאים האפיתל הגוברת הקודקודית, כמו גם שטח פני השטח של נטש הוגדלה ב גלואראולי מ עכברים WT לעומת cd44- עכברים, מציע תפקיד חשוב עבור cd44 ההפעלה התא אפיתל הקודקוד. סרגלי קנה מידה: 1000 μm. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.
איור 5: דוגמה לניתוח של שטח פני השטח של הצמיחה הגלומדית כסמן עבור הפצת תאים האפיתל באמצעות ImageJ (פיג'י). (א) פקפה הצמיחה של פקעית מומסת של עכבר WT לאחר 6 ימים בתרבות ב 37 ° c. (ב) ראשון, הסולם נקבע לנתח את שטח הפנים ב-mm2. כאן: 1 מ"מ = 460 פיקסל. (ג) לאחר הגדרת קנה המידה, קו בחירה מצויר סביב האזור של הצמיחה פקפיות. (ד) אזור שנבחר זה יכול להיות נמדד (שטח שטח בדוגמה זו = 2.235 מ"מ2). סרגלי קנה מידה: 1000 μm. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
באמצעות הפרוטוקול המתואר במאמר זה, ניתן להשתמש באחד לפקולי שעברו שימוש בודד כדי להעריך את התפשטות התא אפיתל הקודקוד שהיא תוצאה של הפעלת תא אפיתל הקודקוד. זה מודל vivo ex יאפשר לנו ללמוד בפירוט מסלולים מולקולריים, אשר מעורבים ההפעלה התא אפיתל הקודקוד. השיטה המתוארת מתבססת על המושג הפשוט של ניתוח כליות והניפוי לבידוד והתרבות המומסת התרבותית ולהשוות בין התפשטות ו/או הגירה של תאים אפיתל הקודקוד בתנאים ניסיוניים שונים. התוצאות שניתן לנתח לאחר 6 ימים בתרבות הם, למשל, שטח או קוטר של הצמיחה או מספר תאים הגוברת של capsulated פקעית יחיד. יישום נוסף עבור היכולת הזאת יכול להיות ללמוד את ההשפעות של תרופות לגרום או לעכב מסלולים מולקולריים שעשויים להיות מעורבים בהפעלת תא אפיתל הקודקוד.
Immunofluorescence הכתמים אישר כי התאים הגוברת לאחר 6 ימים בתרבות הם בתאי אפיתל הקודקוד כפי שהם מוכתם חיובי עבור סמנים תא האפיתל הקודקוד (CD44, קלודין-1, SSeCKS) אבל לא לבטא את הסמן הספציפי ביותר synaptopodin, וגם את הסימון תא אנדותל CD31. בשורה עם התוצאות של ההכתמים, לא התאים הגדלים יכול להיות נצפתה 6 ימים לאחר בידוד והתרבות של פקולי עריפת ראש אחת, המציינת כי יש זיהום מוגבל של תאים אחרים בעלי הזרע בצמיחה החוצה בתוך תקופה זו 6 ימים. מחקר נוסף ניתח את הצמיחה הפקפיות והראה כי התאים המתרבים מהירה נגזר מן הצמיחה פקאפיות הם אכן צאצא של תאים אפיתל הקודקוד14.
פרוטוקול הצביעת ששימש לניתוח ביטוי הסמן של התאים הגדלים ניתן גם להתאים כדי לבדוק מולקולות אחרות של עניין. הנוגדנים בוצעו בתוך הבארות של לוחיות הרישוי שבהן הוודלו במשך 6 ימים. בארות אלה לא היו מצופות אך בלתי מצופים בבארות במהלך הדגירה הראשונה של 2 ל -3. דגירה על מוסיף זכוכית או מערכת שקופית קאמרית אשר יגרום הדמיה טובה יותר לא היה אפשרי כמו גלואראולי לא לצרף לחלוטין את פני השטח ואת הצמיחה התהודה היה לקוי. פרוטוקול ספציפי זה הוגדר לאחרונה כדי ללמוד את התא epithelia מחוצה הצמיחה מן פקולי של WT בריא ו -cd44-/- עכברים11. באמצעות שיטה זו, הוכח כי התאים האפיתל CD44-לקוי להראות קצב התפשטות ירידה, אשר הפגינו גם באיור 4. שיטה זו יכולה לשמש גם עבור עכברים של זנים אחרים גם עבור עכברים אחרים שהשתנו גנטית. במחקר קודם למשל, גישה דומה שימש כדי לנתח את ההשפעות של glucocorticoid הקולטן איתות15.
השימוש בטכניקה זו כדי לבודד את גלואראולי מן העכברים ולנתח את outgrowths סלולריים יש יתרונות רבים כלפי השימוש של קווי האפיתל הקודקודית תאים לניתוח של מסלולים מעורבים ההפעלה תא אפיתל הקודקוד או תרופות שיכול להשפיע על תהליך של התפשטות התא אפיתל. ראשית, בשיטה זו, התאים הראשוניים משמשים אשר באופן ישיר לצמוח מן הפקעית והינם רק 6 ימים בתרבות. לכן, התאים האפיתל הקודקודית מפני גלומליים עבר שינויים פחות פנוטיפ לעומת קווי תאים מונצח, אשר צריך מעברים צמיחה נוספים כדי ליצור את קו התא16. יתר על כן, השיטה המתוארת כאן יכול לשמש כדי להשוות את ההשפעה של הסתרה גנטית ספציפית על התפשטות התא הקודקודית גם עבור מסלולים קשה להפיל את קווי התאים בגלל לקויי צמיחה או יעילות של הסתרה גנטית באמצעות שיטות השתקה.
כדי להתאים את הפרוטוקול למודלים אחרים של בעלי חיים או לרקמת כליות אנושית, יש למטב את הגודל של הנפות כדי להשיג את התוצאה הטובה ביותר. זה בגלל הגודל הפקייתי שונה בין מינים ולכן גודל הסיבס שעליו ניתן לאסוף את הפקולי משתנה. כמו כן, חשוב לבודד את הפקולי המכושל שלמות למטרת שיטה זו. לכן, אין ללחוץ על הגלופקולי, אך לשטוף בעדינות דרך הנפות הקטנות יותר.
שלב קריטי נוסף בפרוטוקול הוא האוסף של הגלואראולי המומסת לאחר ניפוי. כאן, חשוב להשתמש בינוני עם 20% FCS כדי למנוע הצמדה של פקולי. בנוסף, הפתרון מועשר עם גלווראולי צריך להיות מועבר ישירות ללוחות הדבקה אולטרה נמוכה כי, אחרת, גלואראולי יהיה ישירות לצרף את פני השטח של לוחיות התרבות התא רגיל ואפילו על פני השטח של צינורות פלסטיק אשר מקשה על ללכוד ולבודד גלווראולי יחיד.
לאחר אוסף של פקולי שעברו אנקפסולציה אחת, אלה צריכים להיות מתורבתים 3 h בנפח קטן של מדיום culturing במרכז הבאר כדי לאפשר דבקות. צפה של הפקולי לעבר הדייר של הבארות יש להימנע כדי למטב את הקריאה במהלך ניתוח תמונה.
כדי להשיג את התוצאות הטובות ביותר באמצעות הפרוטוקול המתואר כאן, היינו ממליצים על התרבות לפקולי בודד ולבצע את הקריאה ביום 6. בשלב זה, הצמיחה הומוגנית הסלולר המורכב של תאים אפיתל הקודקוד ניתן לצפות. בשלב מאוחר יותר נקודות, הצמיחה הפקפיות הופך פנוטיפים הטרוסוגני המציין מוצלח של סוגי תאים אחרים. לכן, הפרוטוקול אינו נראה מתאים לתקופות דגירה ארוכות מאוד. יש לזכור כי זמני דגירה של תאים הקודקודית הדופן מוצלח יכול להשתנות בין מינים או בין זנים שונים של העכבר. לכן, זמני תרבות יש לבדוק וממוטב עבור כל מאמץ של העכבר או מינים. בנוסף, המקור של הצמיחה פקמדית צריך תמיד להיות מאומת על ידי כתמים עבור סמנים הקודקוד האפיתל תאים ספציפיים.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
. למחברים אין מה לגלות
Acknowledgments
מחקר זה נתמך על ידי קרן כליות הולנדית (גרנט 14A3D104) ואת הארגון הולנד למחקר מדעי (NWO VIDI מענק: 016.156.363).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 24-well cell culture plate | Corning Costar | ||
| anti-CD31 | BD Pharmingen | Endothelial cell marker (used concentration 1:200) | |
| chicken-anti-rat Alexa 647 | Thermo Fisher | (used concentration 1:200) | |
| DAPI-Fluoromount G | Southern Biotech | Mounting medium containing DAPI | |
| Digital inverted light microscope | Westburg, EVOS fl microscope | ||
| donkey-anti-goat Alexa 568 | Thermo Fisher | (used concentration 1:200) | |
| donkey-anti-rabbit Alexa 568 | Thermo Fisher | (used concentration 1:200) | |
| Dulbecco's Modified Eagle's medium | Lonza | ||
| EBM Medium | Lonza | ||
| EBM-MV Single Quots kit | Lonza | containing hydrocortisone, hEGF, GA-1000, FBS and BBE | |
| Fetal Bovine Serum | Lonza | ||
| Fetal Calf Serum | Lonza | ||
| Fluorescent microscope | Leica Microsystems GmbH | ||
| goat-anti-synaptopodin | Santa Cruz | Podocyte marker (used concentration 1:200) | |
| Hanks'Balanced Salt Solution | Gibco | ||
| ImageJ software | FIJI 1.51n | ||
| petri dish | Sarstedt | size 100 | |
| rabbit-anti-claudin1 | Abcam | Parietal epithelial cell marker (used concentration 1:100) | |
| rabbit-anti-SSeCKS | Roswell Park Comprehensive Cancer Center,Buffalo, NY, USA | kindly provided by Dr. E. Gelman, Parietal epithelial cell marker | |
| rat-anti-CD44 | BD Pharmingen | Parietal epithelial cell marker (used concentration 1:200) | |
| scalpel | Dahlhausen | size 10 | |
| Sieves | Endecotts Ltd | size 300 µm, 75 µm, 53 µm, steel | |
| syringe | BD Plastipak | size: 20 ml | |
| Ultra-Low Attachment Microplates | Corning Costar | 6-well plates |
References
- Fatima, H., et al. Parietal epithelial cell activation marker in early recurrence of FSGS in the transplant. Clinical journal of the American Society of Nephrology: CJASN. 7 (11), 1852-1858 (2012).
- Dijkman, H. B., et al. Proliferating cells in HIV and pamidronate-associated collapsing focal segmental glomerulosclerosis are parietal epithelial cells. Kidney International. 70 (2), 338-344 (2006).
- Kuppe, C., et al. Common histological patterns in glomerular epithelial cells in secondary focal segmental glomerulosclerosis. Kidney International. 88 (5), 990-998 (2015).
- Dijkman, H., Smeets, B., van der Laak, J., Steenbergen, E., Wetzels, J. The parietal epithelial cell is crucially involved in human idiopathic focal segmental glomerulosclerosis. Kidney International. 68 (4), 1562-1572 (2005).
- Smeets, B., et al. Parietal epithelial cells participate in the formation of sclerotic lesions in focal segmental glomerulosclerosis. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 22 (7), 1262-1274 (2011).
- Smeets, B., et al. Tracing the origin of glomerular extracapillary lesions from parietal epithelial cells. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 20 (12), 2604-2615 (2009).
- Smeets, B., Moeller, M. J. Parietal epithelial cells and podocytes in glomerular diseases. Seminars in Nephrology. 32 (4), 357-367 (2012).
- Ryu, M., et al. Plasma leakage through glomerular basement membrane ruptures triggers the proliferation of parietal epithelial cells and crescent formation in non-inflammatory glomerular injury. The Journal of Pathology. 228 (4), 482-494 (2012).
- Eymael, J., Smeets, B. Origin and fate of the regenerating cells of the kidney. European Journal of Pharmacology. 790, 62-73 (2016).
- Smeets, B., et al. Renal progenitor cells contribute to hyperplastic lesions of podocytopathies and crescentic glomerulonephritis. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 20 (12), 2593-2603 (2009).
- Eymael, J., et al. CD44 is required for the pathogenesis of experimental crescentic glomerulonephritis and collapsing focal segmental glomerulosclerosis. Kidney International. 93 (3), 626-642 (2018).
- Roeder, S. S., et al. Activated ERK1/2 increases CD44 in glomerular parietal epithelial cells leading to matrix expansion. Kidney International. 91 (4), 896-913 (2017).
- Appel, D., et al. Recruitment of podocytes from glomerular parietal epithelial cells. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 20 (2), 333-343 (2009).
- Yaoita, E., et al. Visceral epithelial cells in rat glomerular cell culture. European Journal of Cell Biology. 67 (2), 136-144 (1995).
- Kuppe, C., et al. Investigations of Glucocorticoid Action in GN. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 28 (5), 1408-1420 (2017).
- Ohse, T., et al. Establishment of conditionally immortalized mouse glomerular parietal epithelial cells in culture. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 19 (10), 1879-1890 (2008).
