Summary

Kombinerad mekanisk och enzymatisk dissociation av mushjärnans hippocampala vävnad

Published: October 21, 2021
doi:

Summary

Detta neurala celldissociationsprotokoll är avsett för prover med en låg mängd utgångsmaterial och ger en mycket livskraftig encellssuspension för nedströms analys, med valfria fixerings- och färgningssteg.

Abstract

Detta neurala dissociationsprotokoll (en anpassning av protokollet som åtföljer ett kommersiellt dissociationspaket för vuxna hjärnor) optimerar vävnadsbehandling som förberedelse för detaljerad nedströmsanalys såsom flödescytometri eller encellssekvensering. Neural dissociation kan utföras via mekanisk dissociation (såsom användning av filter, huggningstekniker eller pipetttriturering), enzymatisk matsmältning eller en kombination av dessa. Den känsliga naturen hos neuronala celler kan komplicera ansträngningarna för att erhålla den mycket livskraftiga, sanna encellssuspensionen med minimalt cellulärt skräp som krävs för encellsanalys. Data visar att denna kombination av automatiserad mekanisk dissociation och enzymatisk matsmältning konsekvent ger en mycket livskraftig (>90%) encellssuspension, vilket övervinner de ovan nämnda svårigheterna. Medan några av stegen kräver manuell fingerfärdighet, minskar dessa steg provhantering och potentiell cellförlust. Detta manuskript beskriver varje steg i processen för att utrusta andra laboratorier för att framgångsrikt dissociera små mängder neural vävnad som förberedelse för nedströms analys.

Introduction

Hippocampus beskrevs först av en bolognesisk anatom, Giulio Cesare Aranzio, på 1500-talet1. Vid namngivningen av denna nyfunna struktur inspirerades Aranzio troligen av dess kusliga likhet med sjöhästen i släktet Hippocampus1. Hippocampus är involverad i stressreaktioner men är allmänt känd för sin roll i lärande och minne. Mer specifikt är hippocampus ansvarig för kodning och hämtning av deklarativt och rumsligt minne1.

Hippocampus, eller hippocampus korrekt, är uppdelad i CA1 (cornu ammonis), CA2 och CA3 delfält1. Jämfört med resten av nervsystemet har hippocampus flera unika definierande egenskaper, inklusive dess plasticitet och potential för pågående neurogenes2. Neurogenes är processen för spridning och differentiering av neurala stamceller, följt av deras integration i det befintliga neuronala nätverket. Neurogenes är begränsad till den subgranulära zonen i dentate gyrus och subventrikulär zon i laterala ventriklar (och luktlökarna)3. Medan neurogenes är riklig i embryogenes, är det en livslång process 3,4. Som sådan kommer denna diskussion att fokusera på vuxen neurogenes i hippocampus.

De subventrikulära och subgranulära zonerna är neurogena nischer som innehåller ependymala och vaskulära celler, liksom omogna och mogna linjer av neurala stamceller5. Microglia bidrar till dessa nischer som immunceller för att reglera neurogenes6. Neurala stamceller är icke-stamcellsavkomma från neurala stamceller7. Tre typer av neurala förfäder finns i den subventrikulära zonen: radiella glialiknande typ B-celler, typ C transitförstärkande förfäder och typ A-neuroblaster 3,8. De långsamt delande typ B-neurala stamcellerna i den subventrikulära zonen kan differentieras till snabbt delande typ C-celler8. Därefter differentieras typ C-celler till typ A-celler8. Dessa neuroblaster migrerar genom rostral migrationsströmmen till luktlampan innan de differentieras till interneuroner eller oligodendrocyter9. Dessa olfaktoriska bulbinterneuroner är nyckeln till olfaktoriskt korttidsminne och associativt lärande, medan oligodendrocyterna myeliminerar axoner i corpus callosum9. Majoriteten av vuxen neurogenes förekommer i den subgranulära zonen i dentate gyrus, där radiella typ 1 och icke-radiella typ 2 neurala förfäder finns3. De flesta neurala stamceller är avsedda att bli dentatgranulneuroner och astrocyter10. Anslutna med gapkorsningar bildar astrocyter nätverk för att modulera plasticitet, synaptisk aktivitet och neuronal excitabilitet5. Som den primära excitatoriska neuronen i dentate gyrus ger granulatceller inmatning från entorhinal cortex till CA3-regionen11.

Neurala stamcellspopulationer kan isoleras med hjälp av immunomagnetiska eller immunofluorescerande isoleringsstrategier12,13. Neural vävnad är särskilt svår att dissociera; Ansträngningar att göra det resulterar ofta i prover med dålig cellviabilitet och / eller misslyckas med att producera den nödvändiga encellssuspensionen för nedströms analys. Neural dissociation kan utföras via mekanisk dissociation (såsom användning av filter, huggningstekniker eller pipetttriturering), enzymatisk matsmältning eller en kombination av tekniker 14,15. I en studie som utvärderade neurala dissociationsmetoder jämfördes livskraften och kvaliteten på manuell mekanisk dissociation genom pipetttriturering jämfört med kombinationer av pipetttriturering och matsmältning med olika enzymer15. Kvaliteten graderades baserat på mängden cellklumpar och DNA eller subcellulärt skräp i den beredda suspensionen15. Suspensioner av glialtumörer som utsattes för manuell mekanisk dissociation ensam hade signifikant lägre cellviabilitet än behandlingar med dispas eller en kombination av DNas, kollagenas och hyaluronidas15. Volovitz et al. erkände variationen i lönsamhet och kvalitet mellan de olika metoderna och betonade att otillräcklig dissociation kan minska noggrannheten i nedströmsanalys15.

I en separat studie jämförde författarna över 60 olika metoder och kombinationer av dissociation av odlade neuronala celler14. Dessa metoder inkluderade åtta olika variationer av manuell mekanisk dissociation genom pipetttriturering, en jämförelse av inkubation med fem individuella enzymer med tre olika intervall och olika kombinationer av mekanisk dissociation med enzymatisk matsmältning eller kombinationen av två enzymer14. Ingen av de mekaniska metoderna gav en encellig suspension14. Fyra av de enskilda enzymbehandlingarna, tio av de enzymatiska kombinationsbehandlingarna och fyra av kombinationerna av mekanisk dissociation med enzymatisk matsmältning gav en encellig suspension14. Enzymatisk matsmältning med TrypLE följt av Trypsin-EDTA mest effektivt dissocierade prover14. För övrigt tenderade prover behandlade med TrypLE och/eller Trypsin-EDTA att bilda gelatinösa klumpar14. Medan denna studie utfördes på odlade celler, talar den om bristerna i pipetttriturering eller enzymatisk matsmältning ensam.

Jämförelser sida vid sida av manuell kontra automatiserad mekanisk dissociation saknas. En grupp körde dock flödescytometri för att jämföra manuell och halvautomatiserad mekanisk dissociation av hela mushjärn i samband med kommersiella papain- eller trypsinenzymatiska dissociationssatser16. Bearbetning med dissociatorn gav mer konsekvent livskraftiga celler16. Efter dissociation isolerade författarna också Prominin-1-celler, neuronala prekursorceller och mikroglia16. För två av de tre isolerade cellpopulationerna var renheten hos de isolerade cellerna något högre när proverna bearbetades med dissociatorn, jämfört med manuellt16. Reiß et al. noterade att person-till-person-variation i pipetteringsteknik hindrar reproducerbarhet av livskraftigt cellpopulationsutbyte vid vävnadsdissociation16. Författarna drog slutsatsen att automatiserad mekanisk dissociation standardiserar provbearbetning16.

Metoden för dissociation som beskrivs i detta manuskript är en kombination av helautomatiserad mekanisk dissociation och enzymatisk matsmältning, med hjälp av lösningar som åtföljer ett kommersiellt dissociationspaket för vuxna hjärnor17. Till skillnad från standardprotokoll minskar detta optimerade protokoll provmanipulation, ger en mycket livskraftig encellssuspension och är avsedd för bearbetning av minimala mängder startvävnad.

Protocol

Experimenten utfördes i enlighet med de etiska normer som godkänts av Institutional Animal Care and Use Committee vid UAMS. 6 månader gamla kvinnliga C57Bl6 / J vildmöss köptes och grupphuserades (4 möss per bur) under en konstant 12 h ljus / mörk cykel. 1. Beredning av reagenser Förbered fixbar levande / död fläcklösning. Rekonstituera den fluorescerande fläcken med 20 μL dimetylsulfoxid (DMSO). Förpacka flaskan i folie, märk den som “Rekonstituerad” och fö…

Representative Results

Prover bearbetades med en flödescytometer vid en kärnanläggning, och de resulterande uppgifterna utvärderades med ett mjukvarupaket för flödesanalys. Tidigare analyserades kompensationskontroller – den levande / döda fläcken och negativ kontroll. Om flera fluorokromer används bör fluorescens minus en (FMO) kontroller och enfläckskontroller förberedas för varje antikropp. Kompensation för spektral överlappning för de experimentella proverna beräknades baserat på de analyserade kontrollerna. För identifi…

Discussion

Flera steg i detta neurala dissociationsprotokoll kräver skicklig teknik och fingerfärdighet-perfusion, supernatant aspiration och myelinavlägsnande. Under hela perfusionsprocessen måste de inre organen förbli intakta (bortsett från att ta bort membranet och klippa hjärtat); detta inkluderar att undvika hjärtans övre kamrar med fjärilsnålen. Medan mängden saltlösning med heparin som behövs varierar, indikerar transparent vätska som strömmar från hjärtat att processen är klar. Hjärnan måste vara helt …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Aimee Rogers för att ha tillhandahållit praktisk utbildning och fortsatt produktsupport. Vi tackar Dr. Amanda Burke för pågående felsökning och klargörande diskussioner. Vi tackar Meredith Joheim och UAMS Science Communication Group för den grammatiska redigeringen och formateringen av detta manuskript. Denna studie stöddes av NIH R25GM083247 och NIH 1R01CA258673 (A.R.A).

Materials

1.5 mL Microcentrifuge Tubes Fisher Scientific 02-682-003 Basix, assorted color
15 mL Falcon Tubes Becton Dickinson Labware Europe 352009 Polystyrene
25 mL Serological Pipets Fisher Scientific 14-955-235
5 mL Round Bottom Polystyrene Test Tube Falcon 352052
500 mL Vacuum Filter/ Storage Bottle System Corning 431097
70 μm cell strainer Fisher Scientific 08-771-2
Adult Brain Dissociation Kit Miltenyi Biotec  130-107-677 Contains Enzyme P, Buffer Z, Buffer Y, Enzyme A, Buffer A, Debris Removal Solution
Aluminum Foil Fisher Scientific 01-213-105
Anti-ACSA-2-PE-Vio770, mouse, clone REA969 Miltenyi Biotec 130-116-246
Anti-Myelin Basic Protein Sigma-Aldrich M3821-100UG
Anti-PSA-NCAM-PE, human, mouse and rat, Clone 2-2B Miltenyi Biotec 130-117-394
BD LSRFortessa BD
BSA Sigma-Aldrich A7906-50G
CD11b-VioBlue, mouse, Clone REA592 Miltenyi Biotec 130-113-810
CD31 Antibody Miltenyi Biotec 130-111-541
Ceramic Hot Plate Stirrer Fisher Scientific 11-100-100SH
Dimethyl Sulfoxide Fisher Scientific BP231-100
Ethanol Pharmco by Greenfield Global 111000200
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-432-22
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14060-09 Perfusion
FlowJo BD (v10.7.0)
gentleMACS C Tubes Miltenyi Biotec 130-093-237
gentleMACS Octo Dissociator with Heaters Miltenyi Biotec 130-096-427
Gibco DPBS (1X) ThermoFisher Scientific 14190144
Glass Beaker Fisher Scientific 02-555-25A
Heparin sodium Fresenius Kabi 504011
LIVE/DEAD Fixable Aqua Dead Cell Stain Kit ThermoFisher L34965
Magnetic Stir Bar Fisher Scientific 14-513-51
Noyes Spring Scissors Fine Science Tools 15012-12 Dissection
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 441244-3KG Prilled, 95%
Pipette tips GP LTS 20 µL 960A/10 Rainin 30389270
Pipette Tips GP LTS 250 µL 960A/10 Rainin 30389277
Pipette tips RT LTS 1000 µL FL 768A/8 Rainin 30389213
Rainin Pipet-Lite XLS (2, 20, 200, 1000 μL) Rainin 30386597
RBXMO FITC XADS Fisher Scientific A16167
Round Ice Bucket with Lid Fisher Scientific 07-210-129
Round-Bottom Tubes with Cell Strainer Cap Falcon 100-0087
S1 Pipet Fillers ThermoFisher Scientific 9541
Spatula & Probe Fine Science Tools 10090-13 Dissection & Perfusion
Surflo Winged Infusion Set 23 G x 3/4" Termuno SV-23BLK Butterfly needle
Test Tube Rack Fisher Scientific 14-809-37
Thermo Scientific Legend XTR Centrifuge ThermoFisher discontinued Or other standard table top centrifuge
Variable-Flow Peristaltic Pump Fisher Scientific 13-876-2 Low-flow model
VetFlo Starter Kit for Mice Kent Scientific VetFlo-MSEKIT Anesthesia mask, tubing, induction chamber, charcoal canisters
VetFlo Vaporizer Single Channel Anesthesia System Kent Scientific VetFlo-1210S 0.2–4 LPM
Vi-CELL XR Cell Viability Analyzer Beckman Coulter Life Sciences 731196 Cell Counting
Vi-CELL XR 4 Bags of Sample Vials Beckman Coulter Life Sciences 383721 Cell Counting

References

  1. Andersen, P., Morris, R., Amaral, D., Bliss, T., O’Keefe, J. . The Hippocampus Book. , (2007).
  2. Kempermann, G., Kuhn, H. G., Gage, F. H. Genetic influence on neurogenesis in the dentate gyrus of adult mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 94, 10409-10414 (1997).
  3. Zhao, C., Deng, W., Gage, F. H. Mechanisms and Functional Implications of Adult Neurogenesis. Cell. 132, 645-660 (2008).
  4. Kempermann, G., Song, H., Gage, F. H. Neurogenesis in the adult hippocampus. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 7, 018812 (2015).
  5. Bond, A. M., Ming, G. L., Song, H. Adult mammalian neural stem cells and neurogenesis: Five decades later. Cell Stem Cell. 17, 385-395 (2015).
  6. Sato, K. Effects of microglia on neurogenesis. Glia. 63, 1394-1405 (2015).
  7. Mu, Y., Lee, S. W., Gage, F. H. Signaling in adult neurogenesis. Current Opinion in Neurobiology. 20, 416-423 (2010).
  8. Fares, J., Diab, Z. B., Nabha, S., Fares, Y. Neurogenesis in the adult hippocampus: history, regulation, and prospective roles. International Journal of Neuroscience. 129, 598-611 (2018).
  9. Tosun, M., Semerci, F., Maletic-Savatic, M. Heterogeneity of stem cells in the hippocampus. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1169, 31-53 (2019).
  10. Abbott, L. C., Nigussie, F. Adult neurogenesis in the mammalian dentate gyrus. Journal of Veterinary Medicine Series C: Anatomia Histologia Embryologia. 49, 3-16 (2020).
  11. Rodrigues, G. M., Fernandes, T. G., Rodrigues, C. A., Cabral, J. M., Diogo, M. M. Purification of human induced pluripotent stem cell-derived neural precursors using magnetic activated cell sorting. Methods in Molecular Biology. 1283, 137-145 (2015).
  12. Ko, I. K., Kato, K., Iwata, H. Parallel analysis of multiple surface markers expressed on rat neural stem cells using antibody microarrays. Biomaterials. 26, 4882-4891 (2005).
  13. Jager, L. D., et al. Effect of enzymatic and mechanical methods of dissociation on neural progenitor cells derived from induced pluripotent stem cells. Advances in Medical Sciences. 61 (1), 78-84 (2017).
  14. Volovitz, I., et al. A non-aggressive, highly efficient, enzymatic method for dissociation of human brain-tumors and brain-tissues to viable single-cells. BMC Neuroscience. 17, 1-10 (2016).
  15. Adult brain dissociation kit: mouse and rat. Miltenyi Biotec Available from: https://www.miltenyibiotec.com/upload/assets/IM0011920.pdf (2020)
  16. Cell surface flow cytometry staining protocol. Miltenyi Biotec Available from: https://www.miltenyibiotec.com/US-en/applications/all-protocols/cell-surface-flow-cytometry-straining-protocol-pbs-bsa-1-50.html (2021)
  17. Finak, G., Jiang, W., Gottardo, R. CytoML for cross-platform cytometry data sharing. Cytometry Part A: The Journal of the International Society for Analytical Cytology. 93, 1189-1196 (2018).
  18. Turaç, G., et al. Combined flow cytometric analysis of surface and intracellular antigens reveals surface molecule markers of human neuropoiesis. PLoS One. 8, 1-14 (2013).
  19. Schwarz, J. M. Using fluorescence activated cell sorting to examine cell-type-specific gene expression in rat brain tissue. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (99), e52537 (2015).
  20. Brummelman, J. application and computational analysis of high-dimensional fluorescent antibody panels for single-cell flow cytometry. Nature Protocols. 14, 1946-1969 (2019).
  21. Recommended controls for flow cytometry. Abcam Available from: https://www.abam.com/protocols/recommended-conntrols-for-flow-cytometry (2021)
  22. . Fixing cells with paraformaldehyde (PFA) for flow cytometry Available from: https://flowcytometry.utoronto.ca/wp-content/uploads/2016/02/FixingCells_PFA.pdf (2021)
  23. Stewart, J. C., Villasmil, M. L., Frampton, M. W. Changes in fluorescence intensity of selected leukocyte surface markers following fixation. Cytometry Part A: The Journal of the International Society for Analytical Cytology. 71, 379-385 (2007).
  24. Armand, E. J., Li, J., Xie, F., Luo, C., Mukamel, E. A. Single-cell sequencing of brain cell transcriptomes and epigenomes. Neuron. 109, 11-26 (2021).
  25. Ho, H., et al. A guide to single-cell transcriptomics in adult rodent brain: The medium spiny neuron transcriptome revisited. Frontiers in Cellular Neuroscience. 12, 1-16 (2018).
  26. Li, L., et al. Novel technologies in studying brain immune response. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2021, 6694566 (2021).
  27. Liu, H., et al. DNA methylation atlas of the mouse brain at single-cell resolution. bioRxiv. , (2020).
  28. Mattei, D., et al. Enzymatic dissociation induces transcriptional and proteotype bias in brain cell populations. International Journal of Molecular Sciences. 21, 1-20 (2020).
  29. Liu, L., et al. Dissociation of microdissected mouse brain tissue for artifact free single-cell RNA sequencing. STAR Protocols. 2 (2), 100590 (2021).
  30. Delmonte, O. M., Fleisher, T. A. Flow cytometry: Surface markers and beyond. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 143, 528-537 (2019).
  31. O’Connor, J. E., et al. The relevance of flow cytometry for biochemical analysis. IUBMB Life. 51, 231-239 (2001).
  32. Menon, V., Thomas, R., Ghale, A. R., Reinhard, C., Pruszak, J. Flow cytometry protocols for surface and intracellular antigen analyses of neural cell types. Journal of Visualized. Experiments. (94), e52241 (2014).
check_url/63007?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Trujillo, M., McElroy, T., Brown, T., Simmons, P., Ntagwabira, F., Allen, A. R. Combined Mechanical and Enzymatic Dissociation of Mouse Brain Hippocampal Tissue. J. Vis. Exp. (176), e63007, doi:10.3791/63007 (2021).

View Video