Summary

מודלים משופרים של ליפופוסצין וכימות של יכולת פגוציטוזה של סגמנט חיצוני בתרביות אפיתל פיגמנט רשתית אנושיות מקוטבות מאוד

Published: April 14, 2023
doi:

Summary

פרוטוקול זה מתאר מודל הצטברות ליפופוסצין בתרביות אפיתל פיגמנט רשתית אנושי (RPE) מובחנות ומקוטבות מאוד ובדיקת פגוציטוזה משופרת של סגמנט חיצוני (OS) כדי לזהות את יכולת הצריכה/השפלה הכוללת של מערכת ההפעלה של RPE. שיטות אלה מתגברות על המגבלות של מודלים קודמים של ליפופוסצין ומבחני פאגוציטוזה קלאסיים של הקטע החיצוני של מרדף הדופק.

Abstract

הפאגוציטוזה היומית של המקטעים החיצוניים של קולטני האור על ידי אפיתל פיגמנט הרשתית (RPE) תורמת להצטברות פיגמנט הזדקנות תוך תאי המכונה ליפופוסצין. הרעילות של ליפופוסצין מבוססת היטב במחלת סטארגארדט, ניוון הרשתית התורשתי הנפוץ ביותר, אך שנויה יותר במחלוקת בניוון מקולרי הקשור לגיל (AMD), הגורם המוביל לעיוורון בלתי הפיך בעולם המפותח. קביעת רעילות ליפופוסצין בבני אדם הייתה קשה, ולמודלים של בעלי חיים של סטארגארדט יש רעילות מוגבלת. לכן, מודלים במבחנה המחקים RPE in vivo אנושי נדרשים כדי להבין טוב יותר את יצירת ליפופוסצין, פינוי ורעילות. רוב המודלים של ליפופוסצין בתרבית תאים עד כה היו בקווי תאים או כללו הזנת RPE ברכיב יחיד של תערובת ליפופוסצין המורכבת ולא במקטעים/קצוות של כל המקטע החיצוני של קולטני האור, מה שיוצר מודל ליפופוסצין שלם ופיזיולוגי יותר. מתוארת כאן שיטה לגרימת הצטברות של חומר דמוי ליפופוסצין (המכונה חומר אוטופלואורסצנטי בלתי ניתן לעיכול, או UAM) ב- RPE ראשוני טרום לידתי אנושי מובחן מאוד (hfRPE) ותאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים (iPSC) הנגזר RPE. UAM הצטבר בתרביות על ידי הזנה חוזרת ונשנית של מקטעי מערכת הפעלה שטופלו באור אולטרה סגול שנקלטו על ידי RPE באמצעות פגוציטוזה. הדרכים העיקריות שבהן UAM מקורב ושונה מ lipofuscin in vivo נדונים גם. בליווי מודל זה של הצטברות דמוית ליפופוסצין, מוצגות שיטות הדמיה להבחנה בין ספקטרום אוטופלואורסצנטי רחב של גרגרי UAM לבין צביעת נוגדנים בו-זמנית. לבסוף, כדי להעריך את ההשפעה של UAM על יכולת הפאגוציטוזה של RPE, הוצגה שיטה חדשה לכימות ספיגה ופירוק של מקטע חיצוני. שיטה זו, המכונה “Total Consumptive Capacity”, מתגברת על פרשנויות שגויות אפשריות של יכולת פגוציטוזה RPE הטבועה במבחני “מרדף דופק” קלאסיים של המקטע החיצוני. המודלים והטכניקות שהוצגו כאן יכולים לשמש לחקר מסלולי ייצור ופינוי ליפופוסצין ורעילות משוערת.

Introduction

אפיתל פיגמנט הרשתית (RPE) מספק תמיכה קריטית עבור photoreceptors over, כולל ספיגה יומית והשפלה של קצוות או מקטעים של מקטע חיצוני photoreceptor (לאורך פרוטוקול זה, מערכת ההפעלה קיצור מייצג טיפים או מקטעים של מערכת ההפעלה ולא מקטעים חיצוניים שלמים). ספיגה יומית זו של RPE פוסט-מיטוטי בסופו של דבר מעמיסה על קיבולת פגוליזומלית ומובילה להצטברות של חומר תוך-תאי אוטופלואורסצנטי בלתי ניתן לעיכול, המכונה ליפופוסצין. באופן מעניין, מספר מחקרים הוכיחו גם כי RPE lipofuscin יכול להצטבר ללא מערכת ההפעלה phagocytosis 1,2. Lipofuscin יש רכיבים רבים, כולל adducts cross-linked נגזר רטינואידים מחזור הראייה, והוא יכול לתפוס כמעט 20% מנפח התא RPE עבור אלה מעל גיל 803.

השאלה אם ליפופוסצין רעיל נדונה בלהט. מחלת סטארגרדט היא ניוון אוטוזומלי רצסיבי של הפוטורצפטורים וה-RPE שבו מוטציה ב-ABCA4 גורמת לעיבוד לא תקין של רטינואידים במחזור הראייה הכלולים במקטעים החיצוניים של קולטני האור. עיבוד רטינואיד לא תקין מוביל לקישור צולב חריג ולהיווצרות של מיני ביס-רטינואידים, כולל ביס-רטינואיד N-רטינילidene-N-רטינילאתנולאמין (A2E). מחקרים הדגימו מנגנונים מרובים לרעילות A2E 4,5. ליפופוסצין תורם לאותות אוטופלואורסצנטיים של פונדוס במהלך הדמיה קלינית, וגם המטופלים של סטארגרדט וגם מודלים של בעלי חיים מראים עלייה בפונדוס אוטופלואורסצנטיות לפני ניוון הרשתית, מה שמרמז על מתאם בין רמות ליפופוסצין ורעילות 6,7. עם זאת, עם הגיל, lipofuscin מצטבר בכל בני האדם מבלי לעורר ניוון RPE. יתר על כן, בניוון מקולרי תלוי גיל (AMD), שבו ניוון RPE מתרחש רק בחולים קשישים, אלה עם צורות מוקדמות ובינוניות של המחלה יש פחות אותות אוטופלואורסצנטיים פונדוס מאשר בני אדם שאינם חולים תואמי גיל8. ממצאים קליניים אלה אומתו גם ברמה ההיסטולוגית 9,10.

מודלים של בעלי חיים של הצטברות ליפופוסצין RPE השאירו גם עמימות מסוימת לגבי רעילות ליפופוסצין. עכבר הנוקאאוט ABCA4 אינו מציג ניוון רשתית על רקע פיגמנט, בעוד שהוא עושה זאת על רקע לבקנים או כאשר הוא נחשף לאור כחול11,12. יתר על כן, הרעילות של ליפופוסצין שמקורה בנוקאאוט ABCA4 ככל הנראה שונה מהליפופוסצין המצטבר לאט יותר המתרחש עם ההזדקנות הטבעית, כפי שניתן לראות ב- AMD13.

מודלים במבחנה של הצטברות ליפופוסצין מספקים חלופה לחקר ההשפעות של הצטברות ליפופוסצין על בריאות RPE. מודלים כאלה מאפשרים מניפולציה של רכיבי ליפופוסצין, החל מהזנת רכיבי רטינואיד בודדים ועד להאכלת מערכת ההפעלה, ומאפשרים מחקר ב-RPE של בני אדם ולא של בעלי חיים. בשני העשורים האחרונים פותחו שיטות רבות למדל ליפופוסצין RPE בתרבית. יחד עם קבוצות אחרות, הקבוצה של ד”ר בולטון האכילה את מערכת ההפעלה של בקר מדי יום במשך עד שלושה חודשים במעבר 4 עד 7 תאי RPE ראשוניים אנושיים מתורמים בגילאי 4 עד 85 בגילאי14. לחלופין, עיכוב של אוטופגיה הוביל גם להצטברות ליפופוסצין במעברים 3 עד 7 תרביות RPE אנושיות ראשוניות15. עם זאת, עיכוב ליזוזומלי תת-קטלני בתרביות RPE ראשוניות (hfRPE) אנושיות מובחנות מאוד, מעבר 1, לא הצליח לגרום לליפופוצין, אפילו עם תוספת חוזרת ונשנית של מערכת ההפעלה על בסיס יומי16.

כגישה רדוקציוניסטית יותר, אחרים הזינו רכיבי ליפופוסצין בודדים לתרביות, במיוחד ביס-רטינואיד A2E 4,17. מחקרים כאלה הם בעלי ערך בכך שהם מגדירים מנגנונים ישירים פוטנציאליים של רעילות עבור רכיבי ליפופוסצין בודדים, ומסבכים, למשל, כולסטרול ליזוזומלי והומאוסטזיס סרמיד18. יחד עם זאת, יש ויכוח על הרעילות של A2E19, והאכלתו ישירות לתאים עוקפת את המסלול האופייני להצטברות ליפופוסצין, הכוללת פגוציטוזה של מערכת ההפעלה photoreceptor. בניסיון להעביר את כל מרכיבי הליפופוסצין לתרביות RPE, בולטון ומרשל טיהרו ליפופוסצין מעיניים אנושיות והזינו אותו למעבר 4 עד 7 תרביות RPE ראשוניות אנושיות שמקורן בתורמים אנושיים עובריים וקשישים20. למרות היותה חדשנית, שיטה זו מייצגת מקור ליפופוסצין מוגבל לניסויים חוזרים.

בעוד הזנות חוזרות ונשנות של מערכת ההפעלה לתרביות RPE מייצרות ליפופוסצין במערכות רבות, היא אינה מצליחה לעשות זאת בתרביות RPE ראשוניות מובחנות מאוד16. מערכת הפעלה לחמצון תמונות גורמת לתגובות קישור צולבות כמו היווצרות ביס-רטינואיד המתרחשת באופן טבעי במהלך היווצרות ליפופוסצין in vivo. זה יכול להאיץ היווצרות גרגירים דמויי ליפופוצין במערכות תרבית RPE, אפילו אלה שהן מאוד מובחנות ועמידות בפני הצטברות ליפופוסצין16. כאן מוצגת שיטה להשראת הצטברות גרגירים דמויי ליפופוסצין ב-hfRPE מובחן מאוד וב-iPSC-RPE אנושי, ששונתה מפרוטוקול21 שפורסם על ידי Wihlmark. לשיטה זו יש את היתרון של גרגירים דמויי ליפופוצין המשתמשים באותו מקור (photoreceptor OS) ומסלול (ספיגת מערכת הפעלה פגוליזומלית) כפי שקורה עבור lipofuscinogenesis in vivo. יתר על כן, זה נעשה על תרבויות RPE אנושיות כי הם מאוד מובחנים ומתוקפים במחקרים מרובים כדי לשכפל RPE אנושי in vivo22,23,24. גרגירים דמויי ליפופוסצין אלה מכונים חומר אוטופלואורסצנטי בלתי ניתן לעיכול (UAM), והם מספקים נתונים ודיונים בפרוטוקול זה המשווה בין UAM ל- in vivo lipofuscin. יחד עם שיטות לבנייה והערכה של תרבויות עמוסות UAM ב- RPE אנושי מובחן מאוד, מוצגת גם שיטה מעודכנת להערכת פגוציטוזה של מערכת ההפעלה RPE. הוצגו מספר שיטות מצוינות לכימות פגוציטוזה של מערכת ההפעלה, כולל כתם מערבי, אימונוציטוכימיה ו-FACS25,26,27. עם זאת, בשלב מוקדם של מרדף הדופק של מערכת ההפעלה, תנאים שמובילים לקליטה לקויה של מערכת ההפעלה יכולים להיות מבולבלים עם תנאים המקדמים השפלה מהירה של מערכת ההפעלה המופנמת. השיטה המוצגת כאן מודדת את הכמות הכוללת של מערכת ההפעלה שהוצגה שנצרכת/מתפרקת במלואה על ידי RPE (“Total Consumptive Capacity”), ובכך מסייעת בביטול עמימות זו. צפוי כי תובנות לגבי רעילות ליפופוסצין המשתמשות בפרוטוקולים אלה, כולל השפעות על שיעורי הפאגוציטוזה של מערכת ההפעלה תוך שימוש בשיטת “Total Consumptive Capacity”, ישמשו כדי לשפוך אור על הרעילות של lipofuscin in vivo.

Protocol

הפרוטוקול הנוכחי הכולל רכישה ושימוש ברקמה אנושית נבדק ואושר על ידי מועצת הביקורת המוסדית של אוניברסיטת מישיגן (HUM00105486). 1. הכנת קצוות ושברי מקטע חיצוני מחומצן הערה: רשתיות בקר כהות נרכשו ונשלחו על קרח (ראה טבלת חומרים). מרשתיות אלה, מערכת ההפעלה טוהרה ב?…

Representative Results

ההגדרה לחמצון תמונות של מערכת ההפעלה מודגמת באיור 1Ai. השקופיות מצופות פוליטטרה-פלואורואתילן מאפשרות טעינה של נפח גדול של מערכת הפעלה בתמיסה לכל מלבן פתוח מבלי להתפשט על פני שאר השקופית. השקופית עם מערכת ההפעלה נמצאת בתוך צלחת פטרי סטרילית כשהמכסה כבוי, ומנורת UV ממוקמת מעל …

Discussion

בעוד RPE lipofuscin נחקר במשך עשרות שנים, רעילותו שנויה במחלוקת 2,9,16,42. בהינתן עמימות לגבי הרעילות של ליפופוסצין ממודלים של בעלי חיים11, מודלים במבחנה המשתמשים ב– RPE אנושי הם בעלי ערך. מגוון מודלים של הצטברות לי…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכת, בחלקה, על ידי מענקים מהקרן לניתוחי זגוגית-רשתית (VRSF), Fight for Sight (FFS) והקרן הבינלאומית לחקר הרשתית (IRRF). J.M.L.M. נתמכת כיום על ידי מענק K08 מהמכון הלאומי לעיניים (EY033420). לא נעשה שימוש בכספים פדרליים למחקר HFT. תמיכה נוספת מגיעה מיוזמת ג’יימס גרוספלד עבור AMD יבש ומהתורמים הפרטיים הבאים: ברברה דאן ודי ודיקסון בראון.

Materials

100 mm cell culture dish Corning #353003 Others also work
24-well Transwells Corning #3470
Anti-LC3 antibody Cell Signaling Technology #4801S 1:1000 dilution
Anti-rhodopsin antibody 1D4 Abcam #5417 1:1000 dilution. Epitope is C-terminal.
Anti-rhodopsin antibody 4D2 EnCor Biotech MCA-B630 1:5000 dilution for western blot, 1:1000 dilution for immunostaining. Epitope is N-terminal.
Autofluorescence quencher Biotium #23007 TrueBlack Lipofuscin Autofluorescence Quencher
Autofluorescence quencher Vector Laboratories SP-8400 Vector TrueVIEW Autofluorescence Quenching Kit
Bodipy 493/503 Life Technologies D3922
Cholesterol esterase  Life Technologies From A12216 kit
Confocal microscope Leica Leica Stellaris SP8 with FALCON module
Dark-adapted bovine retinas W. L. Lawson Company Dark-adapted bovine retinas (pre-dissected) Contact information:
https://wllawsoncompany.com/
(402) 499-3161
stacy@wllawsoncompany.com
Filipin Sigma-Aldrich F4767
Flow cytometer Thermo Fisher Attune NxT
Flow cytometer analysis software  BD FlowJo
Handheld UV light  Analytik Jena US UVGL-55
Human MFG-E8 Sino Biological 10853-H08B
Human purified Protein S Enzyme Research Laboratories HPS
Laemmli sample buffer Thermo Fisher J60015-AD
LDH assay Promega J2380 LDH-Glo Cytotoxicity Assay
Mounting media Invitrogen P36930 Prolong Gold antifade reagent
Nile red Sigma-Aldrich #72485
Polytetrafluoroethylene-coated slides Tekdon Customized Customized specifications: PTFE mask with the following "cut-outs" -  3 glass rectangles, each measuring 17 mm x 9 mm, oriented so that the 17 mm side is 4 mm from the top of the slide and 4 mm from the bottom of the slide, assuming a standard microscope slide of 25 mm x 75 mm. Each rectangle is spaced at least 6 mm away from other rectangles and the edges of the slide. Print PTFE mask on a slide with frosted glass on one side to allow for labeling of the slide.
Protease inhibitors  Cell Signaling Technology #5872
Protein assay Bio-Rad #5000122 RC DC protein assay
TEER electrode World Precision Instruments STX3
Trans-epithelial electrical resistance (TEER) meter World Precision Instruments EVOM3
Ultraviolet crosslinker device Analytik Jena US UVP CL-1000

References

  1. Palczewska, G., et al. Receptor MER Tyrosine Kinase Proto-oncogene (MERTK) Is Not Required for Transfer of Bis-retinoids to the Retinal Pigmented Epithelium. The Journal of Biological Chemistry. 291 (52), 26937-26949 (2016).
  2. Boulton, M. E. Studying melanin and lipofuscin in RPE cell culture models. Experimental eye research. 126, 61-67 (2014).
  3. Feeney-Burns, L., Hilderbrand, E. S., Eldridge, S. Aging human RPE: morphometric analysis of macular, equatorial, and peripheral cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 25 (2), 195-200 (1984).
  4. Sparrow, J. R., Nakanishi, K., Parish, C. A. The lipofuscin fluorophore A2E mediates blue light-induced damage to retinal pigmented epithelial cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 41 (7), 1981-1989 (2000).
  5. Finnemann, S. C., Leung, L. W., Rodriguez-Boulan, E. The lipofuscin component A2E selectively inhibits phagolysosomal degradation of photoreceptor phospholipid by the retinal pigment epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (6), 3842-3847 (2002).
  6. Charbel Issa, P., et al. Fundus autofluorescence in the Abca4(-/-) mouse model of Stargardt disease–correlation with accumulation of A2E, retinal function, and histology. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 54 (8), 5602-5612 (2013).
  7. Cideciyan, A. V., et al. Mutations in ABCA4 result in accumulation of lipofuscin before slowing of the retinoid cycle: a reappraisal of the human disease sequence. Human Molecular Genetics. 13 (5), 525-534 (2004).
  8. Gliem, M., Müller, P. L., Finger, R. P., McGuinness, M. B., Holz, F. G., Charbel Issa, P. Quantitative Fundus Autofluorescence in Early and Intermediate Age-Related Macular Degeneration. JAMA ophthalmology. 134 (7), 817-824 (2016).
  9. Rudolf, M., et al. Histologic basis of variations in retinal pigment epithelium autofluorescence in eyes with geographic atrophy. Ophthalmology. 120 (4), 821-828 (2013).
  10. Ach, T., et al. Quantitative autofluorescence and cell density maps of the human retinal pigment epithelium. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 55 (8), 4832-4841 (2014).
  11. Taubitz, T., et al. Ultrastructural alterations in the retinal pigment epithelium and photoreceptors of a Stargardt patient and three Stargardt mouse models: indication for the central role of RPE melanin in oxidative stress. PeerJ. 6, e5215 (2018).
  12. Fang, Y., et al. Fundus autofluorescence, spectral-domain optical coherence tomography, and histology correlations in a Stargardt disease mouse model. FASEB journal: official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. 34 (3), 3693-3714 (2020).
  13. Ach, T., Tolstik, E., Messinger, J. D., Zarubina, A. V., Heintzmann, R., Curcio, C. A. Lipofuscin redistribution and loss accompanied by cytoskeletal stress in retinal pigment epithelium of eyes with age-related macular degeneration. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 56 (5), 3242-3252 (2015).
  14. Boulton, M., McKechnie, N. M., Breda, J., Bayly, M., Marshall, J. The formation of autofluorescent granules in cultured human RPE. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 30 (1), 82-89 (1989).
  15. Wassell, J., Ellis, S., Burke, J., Boulton, M. Fluorescence properties of autofluorescent granules generated by cultured human RPE cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 39 (8), 1487-1492 (1998).
  16. Zhang, Q., et al. Highly Differentiated Human Fetal RPE Cultures Are Resistant to the Accumulation and Toxicity of Lipofuscin-Like Material. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (10), 3468-3479 (2019).
  17. Lakkaraju, A., Finnemann, S. C., Rodriguez-Boulan, E. The lipofuscin fluorophore A2E perturbs cholesterol metabolism in retinal pigment epithelial cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (26), 11026-11031 (2007).
  18. Toops, K. A., Tan, L. X., Jiang, Z., Radu, R. A., Lakkaraju, A. Cholesterol-mediated activation of acid sphingomyelinase disrupts autophagy in the retinal pigment epithelium. Molecular Biology of the Cell. 26 (1), 1-14 (2015).
  19. Ablonczy, Z., et al. Lack of correlation between the spatial distribution of A2E and lipofuscin fluorescence in the human retinal pigment epithelium. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 54 (8), 5535-5542 (2013).
  20. Boulton, M., Marshall, J. Repigmentation of human retinal pigment epithelial cells in vitro. Experimental Eye Research. 41 (2), 209-218 (1985).
  21. Wihlmark, U., Wrigstad, A., Roberg, K., Brunk, U. T., Nilsson, S. E. Formation of lipofuscin in cultured retinal pigment epithelial cells exposed to pre-oxidized photoreceptor outer segments. APMIS: acta pathologica, microbiologica, et immunologica Scandinavica. 104 (4), 272-279 (1996).
  22. Maminishkis, A., et al. Confluent monolayers of cultured human fetal retinal pigment epithelium exhibit morphology and physiology of native tissue. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (8), 3612-3624 (2006).
  23. Zhang, Q., et al. A platform for assessing outer segment fate in primary human fetal RPE cultures. Experimental Eye Research. 178, 212-222 (2019).
  24. Bharti, K., et al. Cell culture models to study retinal pigment epithelium-related pathogenesis in age-related macular degeneration. Experimental Eye Research. 222, 109170 (2022).
  25. Mazzoni, F., Mao, Y., Finnemann, S. C. Advanced Analysis of Photoreceptor Outer Segment Phagocytosis by RPE Cells in Culture. Methods in molecular biology. 1834, 95-108 (2019).
  26. Hazim, R. A., Williams, D. S. Cell Culture Analysis of the Phagocytosis of Photoreceptor Outer Segments by Primary Mouse RPE Cells. Methods in molecular biology. 1753, 63-71 (2018).
  27. Farnoodian, M., et al. Cell-autonomous lipid-handling defects in Stargardt iPSC-derived retinal pigment epithelium cells. Stem Cell Reports. 17 (11), 2438-2450 (2022).
  28. Ushikubo, M., et al. Milk fat globule epidermal growth factor 8 (MFG-E8) on monocytes is a novel biomarker of disease activity in systemic lupus erythematosus. Lupus. 30 (1), 61-69 (2021).
  29. Zheng, H., Yan, G., Marquez, S., Andler, S., Dersjant-Li, Y., de Mejia, E. G. Molecular size and immunoreactivity of ethanol extracted soybean protein concentrate in comparison with other products. Process Biochemistry. 96, 122-130 (2020).
  30. Weber, K., Osborn, M. The reliability of molecular weight determinations by dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. The Journal of Biological Chemistry. 244 (16), 4406-4412 (1969).
  31. Kielkopf, C. L., Bauer, W., Urbatsch, I. L. Variations of Staining Sodium Dodecyl Sulfate-Polyacrylamide Gels with Coomassie Brilliant Blue. Cold Spring Harbor Protocols. 2021 (12), (2021).
  32. Sharma, R., Bose, D., Montford, J., Ortolan, D., Bharti, K. Triphasic developmentally guided protocol to generate retinal pigment epithelium from induced pluripotent stem cells. STAR protocols. 3 (3), 101582 (2022).
  33. Miller, J. M. L., Zhang, Q., Johnson, M. W. Regression of drusen or vitelliform material heralding geographic atrophy: correlation between clinical observations and basic science. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology = Albrecht Von Graefes Archiv Fur Klinische Und Experimentelle Ophthalmologie. 259 (7), 2051-2053 (2021).
  34. Röhlich, P., Adamus, G., McDowell, J. H., Hargrave, P. A. Binding pattern of anti-rhodopsin monoclonal antibodies to photoreceptor cells: an immunocytochemical study. Experimental Eye Research. 49 (6), 999-1013 (1989).
  35. Schnell, S. A., Staines, W. A., Wessendorf, M. W. Reduction of lipofuscin-like autofluorescence in fluorescently labeled tissue. The Journal of Histochemistry and Cytochemistry: Official Journal of the Histochemistry Society. 47 (6), 719-730 (1999).
  36. Rudolf, M., et al. Detection of esterified cholesterol in murine Bruch’s membrane wholemounts with a perfringolysin O-based cholesterol marker. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 55 (8), 4759-4767 (2014).
  37. Wavre-Shapton, S. T., Meschede, I. P., Seabra, M. C., Futter, C. E. Phagosome maturation during endosome interaction revealed by partial rhodopsin processing in retinal pigment epithelium. Journal of Cell Science. 127, 3852-3861 (2014).
  38. Lakkaraju, A., et al. The cell biology of the retinal pigment epithelium. Progress in Retinal and Eye Research. 78, 100846 (2020).
  39. Escrevente, C., et al. Formation of Lipofuscin-Like Autofluorescent Granules in the Retinal Pigment Epithelium Requires Lysosome Dysfunction. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 62 (9), 39 (2021).
  40. Guha, S., et al. Approaches for detecting lysosomal alkalinization and impaired degradation in fresh and cultured RPE cells: evidence for a role in retinal degenerations. Experimental Eye Research. 126, 68-76 (2014).
  41. Kaemmerer, E., Schutt, F., Krohne, T. U., Holz, F. G., Kopitz, J. Effects of lipid peroxidation-related protein modifications on RPE lysosomal functions and POS phagocytosis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 48 (3), 1342-1347 (2007).
  42. Bergmann, M., Schütt, F., Holz, F. G., Kopitz, J. Inhibition of the ATP-driven proton pump in RPE lysosomes by the major lipofuscin fluorophore A2-E may contribute to the pathogenesis of age-related macular degeneration. FASEB journal: official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. 18 (3), 562-564 (2004).
  43. Vives-Bauza, C., et al. The age lipid A2E and mitochondrial dysfunction synergistically impair phagocytosis by retinal pigment epithelial cells. The Journal of Biological Chemistry. 283 (36), 24770-24780 (2008).
  44. Sundelin, S., Wihlmark, U., Nilsson, S. E. G., Brunk, U. T. Lipofuscin accumulation in cultured retinal pigment epithelial cells reduces their phagocytic capacity. Current Eye Research. 17 (8), 851-857 (1998).
  45. Esteve-Rudd, J., Lopes, V. S., Jiang, M., Williams, D. S. In vivo and in vitro monitoring of phagosome maturation in retinal pigment epithelium cells. Advances in Experimental Medicine and Biology. 801, 85-90 (2014).
  46. Law, A. -. L., et al. Annexin A2 regulates phagocytosis of photoreceptor outer segments in the mouse retina. Molecular Biology of the Cell. 20 (17), 3896-3904 (2009).
  47. Sparrow, J. R., Boulton, M. RPE lipofuscin and its role in retinal pathobiology. Experimental Eye Research. 80 (5), 595-606 (2005).
  48. Strunnikova, N. V., et al. Transcriptome analysis and molecular signature of human retinal pigment epithelium. Human Molecular Genetics. 19 (12), 2468-2486 (2010).
  49. Bharti, K., et al. Cell culture models to study retinal pigment epithelium-related pathogenesis in age-related macular degeneration. Experimental Eye Research. 222, 109170 (2022).
  50. Zhang, Q., Presswalla, F., Ali, R. R., Zacks, D. N., Thompson, D. A., Miller, J. M. L. Pharmacologic activation of autophagy without direct mTOR inhibition as a therapeutic strategy for treating dry macular degeneration. Aging. 13 (8), 10866-10890 (2021).
  51. Zhou, J., Jang, Y. P., Kim, S. R., Sparrow, J. R. Complement activation by photooxidation products of A2E, a lipofuscin constituent of the retinal pigment epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (44), 16182-16187 (2006).
  52. Pan, C., et al. Lipofuscin causes atypical necroptosis through lysosomal membrane permeabilization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (47), e2100122118 (2021).
  53. Saadat, K. A. S. M., et al. Inhibition of autophagy induces retinal pigment epithelial cell damage by the lipofuscin fluorophore A2E. FEBS open bio. 4, 1007-1014 (2014).
  54. Mazzoni, F., Safa, H., Finnemann, S. C. Understanding photoreceptor outer segment phagocytosis: Use and utility of RPE cells in culture. Experimental eye research. , 51-60 (2014).
check_url/65242?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhang, Q., Autterson, G., Miller, J. M. L. Improved Lipofuscin Models and Quantification of Outer Segment Phagocytosis Capacity in Highly Polarized Human Retinal Pigment Epithelial Cultures. J. Vis. Exp. (194), e65242, doi:10.3791/65242 (2023).

View Video