إيمونوفينوتيبينج من أورثوتوبيك هوموجرافت (سينجينيك) من الفيلق الابتدائي موريني البنكرياس الأقنية غدية بالتدفق الخلوي

* These authors contributed equally
Cancer Research

Your institution must subscribe to JoVE's Cancer Research section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

ويهدف الإجراء التجريبي في إيمونوفينوتيبينج هوموجرافتس بدك أورثوتوبيك مورين التنميط وورم المكروية-المناعية. الأورام أورثوتوبيكالي مزروع عن طريق الجراحة. أورام من 200 – 600 مم3 في حجم حصاد وفصلها بإعداد تعليق خلية واحدة، متبوعاً بعلامة متعددة محصنة ضد نظام مراقبة الأصول الميدانية التحليل باستخدام الأجسام المضادة المختلفة المسمى فلوريسسينتلي.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

An, X., Ouyang, X., Zhang, H., Li, T., Huang, Y. y., Li, Z., Zhou, D., Li, Q. X. Immunophenotyping of Orthotopic Homograft (Syngeneic) of Murine Primary KPC Pancreatic Ductal Adenocarcinoma by Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (140), e57460, doi:10.3791/57460 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

الأورام هوموجرافت (سينجينيك) هي العمود الفقري للبحوث السريرية المناعية-الأورام (الإدخال/الإخراج) اليوم. وورم المكروية (TME)، وبخاصة جهاز المناعة-مكوناته، أمر حيوي للتكهن والتنبؤ بنتائج العلاج، لا سيما تلك التي المناعي. TME المناعة-مكونات تتألف من مجموعات فرعية مختلفة من الخلايا المناعية التسلل إلى الورم قابلاً بنظام مراقبة الأصول الميدانية متعدد الألوان. البنكرياس الأقنية غدية (بدك) من بين ماليجنانسيس الأكثر دموية التي تفتقر إلى خيارات العلاج الجيد، وبالتالي حاجة طبية ملحة والتي لم تلب بعد. وكان أحد الأسباب الهامة لعدم استجابته للعلاجات المختلفة (الكيماوي-، استهدفت، الإدخال/الإخراج) به TME وفيرة، تتكون من الخلايا الليفية والكريات البيضاء التي تحمي الخلايا السرطانية من هذه العلاجات. أورثوتوبيكالي بداك مزروع ويعتقد أن أكثر دقة استعادة TME سرطان البنكرياس البشرية من النماذج التقليدية (SC) تحت الجلد.

الأورام هوموجرافت (KPC) يتم زرع بالماوس عفوية بداك تنشأ من مؤسسة البترول الكويتية-الفئران المهندسة وراثيا (rasكG12D/+//Pdx1-53-/-فجإعادة) (الفيلق-جيمم). الأنسجة الورم الرئيسي هو مقطعة إلى أجزاء صغيرة (~ 2 مم3) وزرعها تحت الجلد (SC) إلى المستلمين سينجينيك (C57BL/6، 7 – 9 أسابيع من العمر). هوموجرافتس كانت في ذلك الحين جراحيا أورثوتوبيكالي زرعها على بنكرياس الفئران C57BL/6 الجديدة، جنبا إلى جنب مع اتفاقية استكهولم-غرس، الذي بلغ حجم الورم 300 – 1,000 ملم3 قبل 17 يوما. تحصد كل إجراء تشريح الجثة المعتمدة فقط من الأورام من 400 – 600 ملم3 وتنظيف لإزالة أنسجة الورم غير متجاورة. أنها تم فصلها كل بروتوكول استخدام ديسوسياتور أنسجة في تعليق خلية واحدة، تليها تلطيخ مع فريقي المعين المسمى فلوريسسينتلي الأجسام المضادة لعلامات مختلفة للخلايا المناعية المختلفة (اللمفاوية، النقوي ومن ناغورني كاراباخ، وحدات تحكم المجال Dc). تم تحليل عينات ملطخة باستخدام نظام مراقبة الأصول الميدانية متعدد الألوان لتحديد عدد الخلايا المناعية الأنساب المختلفة، فضلا عن النسبة المئوية النسبية داخل الأورام. ثم قورنت لمحات محصنة من الأورام أورثوتوبيك لتلك الأورام اتفاقية استكهولم. أظهرت البيانات الأولية تيلس/تامس المتسللة مرتفعة إلى حد كبير في أورام البنكرياس، وأعلى ب-خلية تسلل إلى أورثوتوبيك بدلاً من الأورام اتفاقية استكهولم.

Introduction

أسباب غدية البنكرياس الأقنية (بدك) ما يقرب من نصف مليون حالة وفاة على نطاق عالم سنوياً، واحد من القتلة السرطان أعلى 5. وهناك عدد قليل من الخيارات العلاج الفعال ولا إيمونوثيرابيس المعتمدة؛ ولذلك، تمس الحاجة إليها العلاجات الجديدة. تحظى باعتراف سرطانات متزايد كالأمراض المناعية، بما في ذلك بدك، بالإضافة إلى الأمراض الوراثية المعروفة اليوم. سوف المحتمل أن تحدد العوامل المناعية والوراثية تشخيص المرض، فضلا عن معالجة النتائج. أورام التهرب من مراقبة المضيف المناعية والمضي قدما في نهاية المطاف للتسبب في الموت. تحدث العديد من هذه العمليات المناعية داخل ورم المكروية (TME)1،2،،من34 حيث أنواع مختلفة من الخلايا المناعية تتفاعل مع الخلايا السرطانية، مع بعضها البعض ومع غيرها الورم مكونات stromal، مباشرة أو غير مباشرة عن طريق السيتوكينات التي تحدد في نهاية المطاف نتيجة المرض. ولذلك توصيف مكونات الورم المناعي TME، أو الورم إيمونوفينوتيبينج، بما في ذلك subtyping، والعد، وتعريب الأنساب مختلفة من الخلايا المناعية، أمر بالغ الأهمية لفهم الحصانة المضادة للورم. وفي حالة بدك، فقد اقترح أن مرتفعة الضامة القمعية التسلل إلى الورم (TAM) والخلايا البائية أدت إلى منع تسلل خلايا T و/أو التنشيط، ومستويات عالية من التليف5،6.

نهج مشترك للتحقيق تميس المناعي تجريبيا باستخدام مركب الأورام السريري نماذج حيوانية، والورم الماوس ذات الصلة أساسا نماذج7، لا سيما الماوس سينجينيك (هوموجرافت) أو نماذج الماوس المهندسة وراثيا (جيمم) من أمراض السرطان، في تشابه المفترضة للماوس والإنسان للأورام وحصانة8،9. ومن المفهوم في الواقع أن هناك اختلافات المتأصلة بين نوعين من أنواع10،11.

أورام الماوس زرع لها مزايا تشغيلية كبيرة أكثر أورام عفوية7، إلا وهي التنمية الورم متزامنة، على النقيض من وضع الورم عفوية جيم الأبوية. تعتبر هوموجرافتس أورام مورين عفوية الأورام الأولية وجود قط التلاعب في المختبر، والنسخ المتطابق الأصلي الماوس الورم histo-/الجزيئية الباثولوجيا7، فضلا عن ملامح محصنة ممكن. وكثيراً ما تعتبر هذه هوموجرافتس مورين "إصدار ماوس من تكثيفها المستمدة من المريض (بدكسس)". ولذلك لديهم احتمالاً طواعية أفضل من الخلية سينجينيك التقليدية المستمدة من خط الماوس الأورام12. على وجه الخصوص، هوموجرافتس كثيرة مستمدة من جيم محددة حيث تم تصميم آليات محددة من الأمراض البشرية، مثل الطفرات النمطان السائق، ولذلك ينبغي أن هوموجرافتس هذه المزايا لأهميتها السريرية. على وجه الخصوص، جيم فيلق حماية كوسوفو وضع الماوس بدك ضمن 15 – 20 أسبوعا عمر، الذي يلخص شكلياً الأمراض البشرية مع بنية غدي جيدا-باعتدال-متباينة يغلب عليها الطابع والتخصيب سدى. ويجمل هذا النموذج أيضا السمات الوراثية الأكثر شيوعاً للبشرية بداك، هما كراس تفعيل P53 الخسارة من وظيفة، والطفرات التي تحدث في 90% و 75% من البشرية بداك، على التوالي5،6.

مواقع لزرع الأعضاء اقترح أيضا أن تلعب دوراً في نموذج طواعية. البيئة الأنسجة المحيطة محددة، مثل بيئة أورثوتوبيك مقابلة، يمكن أن تكون مكاناً للأورام المحددة إلى البيئات التقدم، بدلاً من موحدة تحت الجلد (SC) للأورام شيوعاً زرع. وسيكون من مصلحة خاصة إذا، و/أو، ما هو الفرق القائم بين موقعين الزرع، من حيث المناعة-المكروية، وأهمية بالنسبة للسرطان البشري، على سبيل المثال. وفي حالة بدك.

أحد الجوانب الأكثر أهمية للتنميط المناعي، أو إيمونوفينوتيبينج، تحديد التسلل إلى ورم الخلايا المناعية الأنساب المختلفة، الأرقام، النسبة المئوية النسبية داخل الأورام، فضلا عن تفعيل الدول والمواقع. وهذا يشمل ليمفوكتييس ورم-إينفيلتراتراتينج (تيلس، سواء من تي-وب-)، التسلل إلى الورم الضامة (تامس) والتسلل إلى ورم الخلايا القاتلة الطبيعية (NKs) والورم المقيم الجذعية الخلايا3،،من1314 , 15 , 16 , 17، والتعريب سوبسيلولار بعض الخلايا18،،من1920، إلخ. الأسفار تنشيط الخلية الفرز (نظام مراقبة الأصول الميدانية) أو التدفق الخلوي هو تقنية الكشف عن خلية واحدة يستخدم عادة لقياس بارامترات خلية محددة. متعدد الألوان التدفق الخلوي تدابير عدة علامات على4،3،خلية مفردة21 وهو الأسلوب الأكثر شيوعاً لتحديد النسبة المئوية النسبية لمجموعات فرعية مختلفة من الخلايا المناعية، والأرقام بما في ذلك داخل الأورام.

ويصف هذا التقرير إجراءات للتنميط التسلل إلى ورم الخلايا المناعية: 1) غرس أورثوتوبيك بدك الماوس الورم هوموجرافتس، جنبا إلى جنب مع غرس اتفاقية استكهولم؛ 2) ورم الأنسجة الحصاد وإعداد خلية مفردة عبر الورم الانفصال؛ 3) التدفق الخلوي تحليل كافة الخلايا المستمدة من الأورام كخط أساس؛ 4) مقارنة بين الملامح الأساس لكلا النهجين الزرع.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

سوف استعرض جميع البروتوكولات وتعديل أو إجراءات تنطوي على الرعاية واستخدام الحيوانات ووافق "التاج العلوم البيولوجية المؤسسية رعاية الحيوانات" واستخدام اللجنة (إياكوك) قبل إجراء الدراسات. رعاية واستخدام الحيوانات عادة ستجري وفقا للمبادئ التوجيهية الدولية آآلاك (رابطة لتقييم واعتماد رعاية الحيوانات المختبرية) كما ورد في الدليل لرعاية واستخدام مختبر الحيوانات، والبحوث الوطنية مجلس (2011). جميع الإجراءات التجريبية الحيوانية ستكون تحت ظروف معقمة في مرافق منتدى جنوب المحيط الهادئ (محددة خالية من مسببات الأمراض) وأجرى صارمة وفقا للدليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية من المؤسسات الحكومية المختلفة (مثل المعاهد الوطنية للصحة). البروتوكول سوف تحتاج إلى موافقة اللجنة المعنية "أخلاقيات التجارب الحيوانية" في مؤسسة مرفق (مثل اللجنة IACUC المؤسسية).

1-التحضير لزرع الورم

  1. مساكن الحيوانات
    1. الحصول على فئران C57BL/6 عام من بائع تربية تجارية.
    2. بيت الفئران (5) في أقفاص التهوية الفردية في الظروف التالية: درجة الحرارة: 20 – 26 درجة مئوية؛ الرطوبة 30 – 70%؛ إضاءة دورة: 12 ح الضوء والظلام 12 ح.
    3. استخدام الذرة الكوز الفراش هو تغيير أسبوعيا.
    4. للنظام الغذائي، توفير الأغذية الجافة الحبيبية تشعيع تعقيم خلال فترة الدراسة بأكملها.
    5. للمياه، وتوفر الحيوانات حرية الوصول إلى مياه الشرب المعقمة.
  2. إعداد يفتت الورم المانحين
    1. ابدأ بمراقبة وزن الجسم (وزن الجسم)، عن طريق وزنها باستخدام الرصيد، وحجم الورم (التلفزيون)، بقياس قدمه ذات الورنيّة، الفئران الحاملة لاستئصال ورم من الجهات المانحة.
    2. عندما يصل التلفزيون إلى 500-1,200 مم3، euthanize الحيوان في غطاء واقية وفقا للبروتوكول.
    3. تعقيم الجلد حول الورم باستخدام مسحات إيودوفور.
    4. إزالة الورم جراحيا (التفاصيل الموضحة في القسم 3: حصاد نيكروبسي وورم) ومكان الورم في طبق بتري يحتوي على 20 مل من برنامج تلفزيوني (قبل chill وسائط الإعلام أو المخزن المؤقت إلى 4 درجة مئوية قبل يوثانيزينج الحيوانات).
    5. إذا لم يكن هناك تلويث الدم، نقل الورم إلى آخر طبق بيتري وتغسل الورم مع برنامج تلفزيوني.
    6. قطع الورم في النصف، إزالة أي جلد إضافي أو السفن أو تكلس أو نخر.
    7. اختر فقط سليمة قطعة من الورم ووضعها في أنبوب الطرد مركزي عقيمة 50 مل وإضافة 20 مل من برنامج تلفزيوني ثم نقل الأنبوب إلى غرفة حيوان منفصلة لدراسات علم الصيدلة.

2-أورثوتوبيك وانجرافتمينت تحت الجلد (SC)

  1. التلقيح SC
    1. قطع الأورام إلى 2 مم أجزاء القطر باستخدام مشرط، وضع قطعة 1 في كل تروكار، لغرس اتفاقية استكهولم أو لزرع أورثوتوبيك لاحقاً (انظر أدناه).
    2. تخدير الحيوان المتلقي مع 5% إيسوفلوراني، التي هي التي تحتفظ بها مخروط الآنف عند 1%. ستبدأ للاسترخاء، تفقد تلك العاكسة رايتينج الحيوان وتصبح في نهاية المطاف غير متحرك. في هذا العمق من التخدير أنها يمكن بسهولة أن موقظ من المحفزات مؤلمة؛ السماح للتخدير لتعميق حتى هذه الاستجابات للألم غائبة.
    3. بمجرد تخديره، إصلاح الفئران على لوحة تجربة في الموضع الأفقي الحق. تعقيم الماوس باستخدام مسحات إيودوفور، لا سيما في المناطق المحيطة الأورام.
    4. مع مشرط، جعل شق جلد سم 0.5 إلى 1.0 في الجناح الأيسر، الجمجمة فقط الورك.
    5. نفق تحت الجلد نحو فوريليمب، اثنين إلى ثلاثة سنتيمترات، مع الملقط حادة.
    6. أسيبتيكالي نقل مكعب واحد من ورم من المتوسطة والعميقة داخل نفق تحت الجلد.
    7. بصريا تؤكد أن الورم في عمق النفق (وليس في شق الجلد).
    8. إغلاق الجرح بالجرح مقاطع.
    9. رصد تلقيح الحيوانات منصب حتى أنهم يستعيد وعيه كافية للحفاظ على ريكومبينسي القصية. العودة الحيوانات إلى القفص بهم إلا بعد شفائهم التام من التخدير. إكمال "تسجيل التخدير"، والشروع في "التخطيط الصحة الحيوانية". وزن الحيوانات المتلقي يوميا لمدة ثلاثة أيام
    10. لإجراء موحد، تطعيم الفئران 5-10 كل مجموعة لرصد نمو الورم.
  2. زرع البنكرياس أورثوتوبيك
    1. التخدير والتسكين
      1. استخدام 2 مل الكيتامين حقن و 0.42 مل xylazine الحقن (20 ملغ/مل) مختلطة في 5.91 حقن معقمة الماء أو المحلول الملحي على كمية جرعة من 0.06-0.1 مل/20-25 غرام من وزن الجسم.
        ملاحظة: طبقاً للرفق بالحيوان، التسكين ضروري على حد سواء قبل وبعد العملية. 0.05 – 0.1 مغ البوبرينورفين كغ، والمحكمة العليا. الجرعة الأولى قبل العملية وثم مداوي 3 مرات كل 4 ساعات بعد العملية باستمرار.
    2. عملية جراحية لزرع أورثوتوبيك
      1. تخدير الفئران عن طريق الحقن العضلي (IM) كل خطوة 2.2.1.
      2. بعد أن يتم تخديره تماما من الحيوانات، إصلاح الفئران على لوحة تجربة في الموضع الأفقي الحق.
      3. الحفاظ على الفئران في الموضع الأفقي الحق. تطهير الجلد حول الطحال مع اليود ثم دي إيوديناتي مع 75% إيثيل الكحول.
      4. العثور على نقطة متوسطة من الطحال وجعل شق عمودي 1 سم في البطن لفضح الطحال.
      5. استخلاص جزء من أنسجة البنكرياس تحت الطحال بلطف مع ملاقط نصيحة مسطحة، وخياطة قطعة ورم هوموجرافت ماوس من الماوس البذور في البنكرياس من الماوس المستلم بخياطة جراحية قابلة للامتصاص 9-0.
      6. إغلاق البطن مع خياطة حرير 6-0 بالتماس مزدوجة. تحقيق التوازن عن طريق ضغط.
      7. بعد الانتهاء من زرع الورم، في حال حدوث نزيف لا ورم الأنسجة التسرب، إبقاء الحيوانات في قفص حارة.
      8. مراقبة الحيوان حتى أنه يستعيد وعيه كافية للحفاظ على ريكومبينسي القصية؛ إرجاع الحيوان إلى غرفة الحيوانات بعد الشفاء التام من التخدير. رصد الورم واضعة الفئران التي بالباتينج في البطن قرب الطحال وحدد بها الفئران تحمل الأورام أورثوتوبيك.
  3. ورم الحاملة للصحة الفئران الرصد
    1. تحقق من أن استهلاك الماء والطعام يوميا.
    2. دراسة مظهر الماوس لمعطف شعر أونجروميد، كتل وركاكة والتنفس غير طبيعي أو الاستسقاء.
    3. جس البطن لمعرفة ما إذا كان هناك أورام عفوية في الكبد أو الطحال.
    4. وزن الفئران أسبوعيا باستخدام توازن.
    5. إذا لوحظت أي من علامات سريرية التالية، يتم التضحية بالفئران لجمع العينات ونيكروبسي: فقدان وزن الجسم > 20%؛ ضعف في الحركة (عدم القدرة على تناول الطعام أو الشراب)؛ غير قادر على نقل عادة بسبب استسقاء كبير والبطن الموسع؛ بذل جهد في التنفس.

3-نيكروبسي وورم الحصاد

  1. افحص بصريا، وملامسة للوجود أورام محسوسة قبل الإنهاء.
  2. للإنهاء، أولاً euthanize الفئران وفقا للبروتوكول المعتمد، وفتح البطن وبصريا فحص البنكرياس للأورام.
  3. قطع الورم عن طريق الجراحة بعد بشري، وإضافته إلى برنامج تلفزيوني الباردة. ضع جميع الحيوانات في دائرة القتل رحيم نظيفة، دون توجيه تهمة إليه، وشفافة مع غطاء خاص مع منفذ لإيصال ثاني أكسيد الكربون لاستخدامها.
  4. تصريف غاز في الدائرة بمعدل تدفق الذي ينتج فقدان الوعي السريع مع الحد الأدنى من الشدة للحيوان. ينبغي أن يكون معدل التدفق الأمثل لأول أكسيد الكربون2 حوالي 2 – 2.5 لتر في الدقيقة.
  5. مراقبة كل الحيوانات بصريا أثناء عملية القتل الرحيم أن أؤكد لجميع الحيوانات تلقي تركيزات غاز كافية ولا يستعيد وعيه أثناء إجراء يوثانيزي.
  6. الحفاظ على تدفق الغاز لمدة 1 دقيقة على الأقل بعد وفاة سريرية الظاهر للتقليل من إمكانية أن حيوان يجوز استرداد (إذا كان قد لكن لم يمت).
  7. إزالة أنسجة الورم غير متجاورة. ويمكن تصوير الورم تنظيفها بسرعة.
    وضع أنسجة الورم ربمي-1640 والحفاظ على الجليد قبل الانفصال.
    ملاحظة: أكياس جثث الحيوانات وتخزينها في الثلاجة مناسب انتظارا لإزالة.

4-ورم الأنسجة الانفصال وإعداد خلية مفردة

  1. إعداد كاشف
    ملاحظة: يحتوي على "عدة تفارق الورم" قنينات 2 إنزيم د (مسحوق المجففة بالتبريد)، 1 قنينة من إنزيم R (مسحوق المجففة بالتبريد)، 1 قنينة من إنزيم A (مسحوق المجففة بالتبريد) و 1 مل من المخزن المؤقت ألف
    1. إعداد "د الإنزيم" بإعادة تشكيل المساحيق المجففة بالتبريد في كل قنينة مع 3 مل من ربمي-1640. تحضير مختبرين لوحدة تخزين ملائمة لتجنب تكرار التجميد-ذوبان الجليد-دورات.
    2. تحضير الإنزيم R بإعادة تشكيل المساحيق المجففة بالتبريد في القنينة مع 2.7 مل من RPMI 1640. تحضير مختبرين لوحدة تخزين ملائمة لتجنب تكرار التجميد-ذوبان الجليد-دورات.
    3. تحضير الإنزيم A بإعادة تشكيل المساحيق المجففة بالتبريد في القنينة مع 1 مل من المخزن المؤقت بتزويد عدة. عدم دوامة. تحضير مختبرين لوحدة تخزين ملائمة لتجنب تكرار مجاناً-ذوبان الجليد-دورات.
    4. إعداد مزيج الإنزيم بإضافة 2.35 مل ربمي-1640، 100 ميليلتر من "إنزيم د"، 50 ميليلتر من إنزيم R وميليلتر 12.5 ألف إنزيم في كل جينتليماكس ج-الأنبوبة.
  2. الانفصال من ورم
    1. لكل ورم إعداد ج-أنبوب واحد مع مزيج الهضم الورم، يرجى الرجوع إلى الفرع 4-1 لتمييع المخزن المؤقت الهضم والتحضير.
    2. استخدام 3 مل الهضم المخزن المؤقت لأجزاء الورم < ز 0.8، وضمان الورم يهضم تماما.
    3. قم بتسمية مع دراسة التعليمات البرمجية والورم، ومعرف الماوس، وفريق العلاج، ووزن الورم.
    4. جمع الورم من الماوس وتغسل الورم في برنامج تلفزيوني الباردة وتنظيف الأنسجة يعلق على الورم (مثل الأوعية الدموية، الدهون، فآسيا، إلخ.).
    5. وضع الورم في وسائل الإعلام في الهضم في بئر واحدة من صفيحة جيدا 6 العقيمة.
    6. عقد الورم في مكان مع ملاقط معقمة/الملقط وشريحة مع مشرط. شريحة الورم جيدا بما يكفي للخروج إلى أجزاء أصغر (~ 1 مم3).
    7. مكان القطع الورم مرة أخرى في ج-الأنبوب واستخدام المخزن المؤقت الهضم المتبقية ليغسل اللوحة ومن ثم نقل السوائل في ج-أنبوب يوضع على الجليد حتى الهضم.
    8. التبديل ديسوسياتور مع سخانات.
    9. مكان الورم تفارق ج-أنابيب رأسا إلى الأكمام من الوظائف الشاغرة وضبط حالة المواقف أنبوب من الحرة إلى مختارة. اختر برنامج الانفصال (37_c_m_TDK_1)، متبوعاً باختيار المجلد المطلوب، حيث يتم عرض قائمة البرامج.
    10. بعد انتهاء البرنامج، تقلع ج-أنابيب ديسوسياتور وتدور بإيجاز (300 x ز، 4 درجة مئوية) بيليه العينة.
    11. تعليق إعادة العينات ووضعها في مصفاة خلية أعلاه أنبوب 50 مل. تغسل الخلايا من خلال مصفاة الخلية مع 10 مل من المخزن المؤقت للمياه والصرف الصحي لتقديم تعليق خلية واحدة.
    12. الطرد المركزي هذه الأنابيب في 300 x ز لمدة 5 دقائق وتجاهل المادة طافية وإعادة تعليق الخلايا مع 5 مل من المخزن المؤقت للمياه والصرف الصحي، حساب عدد الخلايا قابلة للتطبيق باستخدام تريبان الأزرق و/أو بواسطة العداد الخلية وضبط كونسينتراتون الخلية إلى 1 × 106 خلايا كل أنبوب أو لكل عينة. وتشمل الأجسام المضادة التي تحكم ايستب الصحيح لضمان تلوين المحددة

5. تصميم لوحة محصنة والحصول على تدفق البيانات

  1. تصميم لوحة
    1. يرجى الاطلاع على الجدول 1.
  2. إيمونوستاينينج
    1. نادي كتلة عينة الخلايا: تعليق إعادة الخلايا في 200 ميليلتر لتلطيخ المخزن المؤقت مع 1 ميكروغرام/مل Fc-كتلة، تليها الحضانة في التبريد الجليد أو 4 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة في الظلام.
    2. الخلايا وصمة عار باستخدام لوحات جسم/الأسفار المطلوب (على سبيل المثال. لوحة تسيل، لوحة بلعم، إلخ.): إضافة خليط جسم مخفف في المخزن المؤقت حظر Fc لكل عينة، وصمة عار لمالا يقل عن 30 دقيقة على الجليد في الظلام.
    3. أضف 1 مل من الجليد الباردة برنامج تلفزيوني لكل أنبوبة وإعادة تعليق الخلايا بلطف، متبوعاً بالطرد المركزي في 300 x ز لأدنى 5 تجاهل المادة طافية الناتجة عن ذلك.
      1. تكرار غسل الخلايا مرتين.
    4. وصمة عار لعلامات داخل الخلايا إذا لزم الأمر، الخطوات التالية 6-10، وإلا القفز إلى الخطوة 10.
    5. تعليق إعادة بيليه الخلية بدوامة النبض وإضافة 200 ميليلتر للتثبيت/Permeabilization استعداد العامل الحل لكل عينة. نبض دوامة مرة أخرى ومن ثم احتضان عند 4 درجة مئوية بين عشية وضحاها (يفضل) أو 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة في الظلام.
    6. زيادة ونقصان لأسفل الخلايا وإزالة المادة طافية.
    7. تغسل مرتين بإضافة 1 مل 1 × Permeabilization المخزن المؤقت (مصنوعة من 10 × Permeabilization المخزن المؤقت، وتضعف مع المقطر ح2س) متبوعاً بالطرد المركزي والصب من المادة طافية.
    8. إضافة جسم العلامة داخل الخلايا في 1 × Permeabilization المخزن المؤقت واحتضان في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة في الظلام.
    9. تغسل الخلايا مرتين مع 1 مل 1 × Permeabilization المخزن المؤقت. الطرد المركزي وصب المادة طافية.
    10. ريسوسبيند الخلايا في 150 ميليلتر من "المخزن المؤقت لتلطيخ" وتحليل في سيتوميتير. بسبب إجراءات التثبيت و permeabilization، منتدى التعاون الأمني (الأمام-الضوء المبعثر)/SSC (الجانبي مبعثر) توزيع السكان الخلية سوف تكون مختلفة للعيش الخلايا. ولذلك، سوف تحتاج إلى تعديل البوابة والفولتية.
  3. ضوابط FMO (Fluorescence ناقص عنصر تحكم واحد)
    ملاحظة: تحليل تدفق متعدد الألوان أهمية خاصة بالنسبة للتحليل للتسلل إلى ورم الخلايا المناعية. ولذلك، هناك حاجة إلى إيجاد طريقة لتحديد وبوابة الخلايا في سياق البيانات التي انتشرت بسبب فلوروتشروميس متعددة في لوحة معينة. التحكم FMO (Fluorescence ناقص واحد) نهج هام لهذا الغرض.
    1. وتحقيقا لهذه الغاية، تشمل إضافية الفئران في كل مجموعة لضوابط FMO (على الأقل 2 الواحدة Rx) وعملية منفردة لكل الأنسجة. وبعد الانفصال، تجمع الأنسجة. على سبيل المثال، في دراسة مع 4 Rx المجموعات، أورام إضافية 8 ينبغي معالجتها بشكل فردي وثم تجمع في عينة واحدة فموس.
  4. تدفق إعداد الصك
    1. جعل التعويض الخرز بينما الجهاز هو الاحماء (20 دقيقة على الأقل).
    2. استخدم الخرز CS أية تي آند تي للتحقق من الأداء.
    3. إعدادات الجهد والتعويض: استخدام الخرز UltraComp، دوامة الشركات الخرز جيدا قبل الاستخدام.
    4. قم بتسمية أنبوب عينة منفصلة 12 × 75 مم2 لكل جسم مترافق فلوروتشرومي.
    5. إضافة 100 ميليلتر من تلطيخ المخزن المؤقت لكل أنبوبة. إضافة 1 قطره كاملة (حوالي 60 ميليلتر) من الخرز لكل أنبوبة.
    6. إضافة الأجسام المضادة وتنفيذ الإجراء المصبوغة بالضبط كعملية العينة المذكورة في المادة 4.
    7. إضافة 0.5 مل من تلطيخ المخزن المؤقت كل، تماما إعادة تعليق الكريات حبة عبر دوامة.
    8. ضبط تدفق cytometer PMT الجهد كل الأنسجة المستهدفة لتجربة معينة.
    9. تديرها من خلال تدفق سيتوميتير للحصول على البيانات، النابضة بالسكان حبة القميص كل القراءات منتدى التعاون الأمني، والتعاون بين بلدان الجنوب.
    10. تعيين معدل تدفق حوالي 200-300 الأحداث/s.
    11. تعيين تعويض مناسب فلوريسسين معين [فيتك]-جسم مترافق، استخدام FL1 مقابل FL2 مؤامرة نقطة.
    12. ضع بوابة رباعي، حيث تكون حبات السلبية في الربع الأيسر السفلي والخرز الإيجابية في الجزء العلوي أو السفلي حق رباعي. ضبط قيم التعويض حتى fluorescence متوسط الكثافة (MFI) لكل السكان (كما هو موضح في الإطار إحصائيات رباعي) يساوي تقريبا (أي ل FL1 FL2-%، مؤسسة مونتانيار FL2 من حبات كلا يجب أن تكون مماثلة).
    13. كرر الخطوتين 5.4.11 و 5.4.12 لجميع الأنابيب.
    14. المضي قدما للحصول الفعلية الملون العينات. قم بتشغيل معالج التعويض وحفظ الإعدادات باستخدام التنسيق "التاريخ تجربة اسمك".

6-تدفق البيانات التحليل والعرض التقديمي

  1. تحليل البيانات من قبل فلوجو و/أو كالوزا.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

غرس أورثوتوبيك بدك أدى إلى نمو الورم السريع مشابهة للتي ينظر إليها لغرس اتفاقية استكهولم. بعد أن تم زرع أجزاء الورم المانحين في الفئران المستفيدة، سواء تحت الجلد وأورثوتوبيكالي وفقا للبروتوكولات هو موضح في الخطوات 2.1 و 2.2، والأورام homograft فيلق حماية كوسوفو مزروع أظهر النمو السريع مشابهة كما هو موضح في الشكل 1A . فيلق حماية كوسوفو homograft الأورام تحصد في نقاط زمنية مختلفة مبينة في الشكل 1 باء والممثل ح & الصور الإلكترونية يتم عرض الرقم 1. أظهرت البيانات لدينا نمو مماثلة لاتفاقية استكهولم ويزرع أورثوتوبيك.

يمكن استرداد خلايا في TME، بما في ذلك الخلايا المناعية التسلل إلى الورم، مصدرها أما من أورثوتوبيك أو غرس اتفاقية استكهولم، والخلايا السرطانية قابلة للحياة بكفاءة. أورام حصادها وهضمها بإعداد تعليق خلية مفردة لتحليل نظام مراقبة الأصول الميدانية اللاحقة باستخدام ديسوسياتور تجارية (الشكل 2A) وفقا للبروتوكول هو موضح في الخطوة 4. نحن عادة الحصول على غلة مرتفعة بشكل معقول خلية قابلة للاستمرار من عينات الورم من كلا النوعين من غرس (صلاحية ~ 80% استناداً إلى تريبان الأزرق)؛ ويظهر المؤامرة نظام مراقبة الأصول الميدانية الممثل خلايا قابلة للحياة من الورم، يفصل بين الحطام الميت خلايا/الخلية (الشكل 2).

قد حددت التسلل إلى ورم الخلايا المناعية لمجموعات فرعية مختلفة في أورثوتوبيك واتفاقية استكهولم مزروع الأورام، بينما الملامح خلافات. تعليق خلية مفردة أعدت من ورم الأنسجة باستخدام الطريقة الموضحة في الخطوة 4، 2 تعرضوا لتحليل نظام مراقبة الأصول الميدانية بعد تلطيخ مع لوحة ألوان 16 هو مبين في الجدول 1، الذي يغطي الأنساب مختلفة من الخلايا المناعية الهامة كعلامات كذلك الخلايا السرطانية. التسلسل النابضة النسب استراتيجية أو المناعة جنبا إلى جنب مع قطع تدفق الممثل مبينة في الشكل 3 ألف. CD45، علامة لكافة الخلايا المناعية ناضجة، استخدمت للخلايا السرطانية المميزة والتسلل إلى ورم الخلايا المناعية. بعد ذلك تم تحليل الأنساب محصنة ضد كل من CD45+ السكان كما هو معروض بلوحة (الجدول 1).

كما يستخدم حجم الخلية بجوار علامات، للتفريق بين مختلف الفئات السكانية الفرعية (الشكل 3B الأيسر) لتحديد مجموعات فرعية الخلية، بما في ذلك تي والخلايا اللمفاوية ب والضامة ومدسكس، إلخ. ورم التسلل إلى المقارنة الشخصية محصنة من اتفاقية استكهولم مقابل هوموجرافتس أورثوتوبيك من سرطان البنكرياس. سكان العديد من المجموعات الفرعية الرئيسية للورم التسلل إلى الخلايا المناعية الرئيسية الخلية المذكورة يبين الشكل 3. البيانات يبين بوضوح أن الورم قد زاد إلى حد كبير تسلل الخلايا المناعية مقارنة مع بنكرياس الفئران صحية. وبالإضافة إلى ذلك، تم العثور على نسب مختلفة من مجموعة فرعية من التسلل إلى ورم الخلايا المناعية في أورثوتوبيك مقابل. هوموجرافتس اتفاقية استكهولم، مثل الخلايا البائية أكثر بشكل ملحوظ في أورثوتوبيك من المحكمة العليا.

علامة السكان الخلايا المناعية
CD45 مجموع الكريات البيضاء
CD3 مجموع الخلايا T
خلايا CD4 خلايا CD4 + T مساعد
CD8 CD8 + الخلايا التائية cytotoxic
CD44/CD62L * خلايا T ساذجة والذاكرة والمستجيب
CD69/CD44/OX40/CD25 إلخ* علامات التنشيط
خلايا CD4 + CD25 + FoxP3 + الخلايا التائية التنظيمية
CD11b + Ly6c/Ly6g ز-ببوركينا و M-ببوركينا
CD11b + F4/80 الضامة
IA/أي/CD206 الضامة M1 و M2
CD3--CD335 + ناغورني كاراباخ الخلايا
CD3 + CD335 + الخلايا NKT
CD19 ب الخلايا
تنف-/IFN-r/إيل-7/إيل-3 إلخ* السيتوكينات
PD-1/PD-L1/كتلاً-4/تيم-3 إلخ* مثبطات حاجز
جرانزيم ب إلخ* علامات طلبا شائع
KI67/Brd U/بنكا إلخ انتشار
لايف/الميت (يمكن حلها) يعيش الميت
* ملاحظة: علامات أخرى يمكن إضافتها حسب الحاجة

الجدول 1: تدفق 16 لون لوحات مصممة لتحليل للتسلل إلى ورم الخلايا المناعية الماوس.

Figure 1
رقم 1: كل أورثوتوبيك واتفاقية استكهولم (سابك) مزروع بدك هوموجرافت الأورام في C57BL/6 الفئران أظهرت نمو مماثل مع أو بدون علاج جيمسيتابيني. (أ) النمو منحنى: اتفاقية استكهولم اليسار واليمين أورثوتوبيك. الأزرق: المركبات؛ -ذهبية: جيمسيتابيني (بدأت يوم 10 وظيفة التطعيم عندما بلغ متوسط حجم الورم SC 200 ملم3). (ب) ورم الأنسجة في نقاط زمنية مختلفة. (ج) ممثل ح & ه تلطيخ كلا النوعين من هوموجرافتس (40 × 10). الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 2
رقم 2: ورم الأنسجة الانفصال بإعداد تعليق خلية واحدة قابلة للحياة. (أ) استخدام ديساسوسياتور؛ فصل خلايا (ب) قابلة للحياة، من الخلايا الميتة، كما يتضح من تحليل تدفق. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 3
رقم 3: تحليل تدفق متعدد الألوان من التسلل إلى ورم الخلايا المناعية أورثوتوبيك وهوموجرافتس بدك SC. تم الحصول على البيانات الخام من كل عينة الورم من الصك التدفق الخلوي، متبوعاً بالتحليل باستخدام برمجيات التحليل "فلووجو نظام مراقبة الأصول الميدانية". (أ) استراتيجية النابضة القياسية للتحليل، ويتم عرضها كمثال على ذلك؛ (ب) تدفق الممثل النابضة وتحليل البيانات باستخدام معيار النابضة الاستراتيجية؛ (ج) ممثل التسلل إلى الورم المناعي سيلساري عرض لتضمين الخلايا البائية، تريغ والضامة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

على الرغم من أن أكثر سهولة تجري دراسات باستخدام اتفاقية استكهولم الأورام، نماذج الأورام أورثوتوبيكالي مزروع يحتمل أن يمكن أكثر صلة بدراسات علم الصيدلة السريرية (لا سيما التحقيقات الإدخال/الإخراج) لتقديم المعزز طواعية. يهدف هذا التقرير إلى مساعدة القراء/الجمهور المهتمين ليتمكن من تصور مباشرة الإجراءات التقنية التي يمكن استخدامها في أبحاثهم الخاصة بكل منها. لدينا بروتوكولات إثبات أن أورثوتوبيك غرس بدك يمكن أن ينتج عن نمو الورم كفاءة، مماثلة لغرس اتفاقية استكهولم. ويبدو ملاحظاتنا أيضا تشير إلى وجود ملفات تعريف مختلفة محصنة من تميس من عللها مختلفة. التحديات الرئيسية للتكيف مع أورثوتوبيك، بالمقارنة مع اتفاقية استكهولم عللها، هي أن مهارات معقدة مطلوبة، والعملية تستغرق وقتاً طويلاً، هي الإجراءات الجراحية لغرس العمالة المكثفة، وأيضا الصعوبة في رصد الورم أورثوتوبيك النمو في الحياة.

هناك أربع خطوات حاسمة لضمان أن تتم بنجاح تجارب ورم البنكرياس أورثوتوبيك: 1) العملية الجراحية لزرع؛ 2) رصد دقيق وفي الوقت المناسب من ورم في التنمية؛ 3) أهمية القيام بتجربة ما قبل الاختبارات أولاً لتعريف بهذا الإجراء وتقييم معدل تأخذ ومعدل نمو الورم؛ 4) استخدام معلقات خلية واحدة من الأورام ينتابها كأسلوب بديل انجرافتمينت. هذا الإجراء تقرير مفيد للقراء للقيام بالبحث باستخدام هذا هوموجرافت محددة، فضلا عن نماذج أخرى أورثوتوبيك البنكرياس، ونماذج أخرى حتى أورثوتوبيك التي تشمل جراحة فتح البطن.

التدفق الخلوي أو نظام مراقبة الأصول الميدانية حاليا أهم أداة لتنفيذ إيمونوبروفيلينج. إيمونوفينوتيبينج الأورام بنظام مراقبة الأصول الميدانية إلى حد كبير يختلف من الخلايا في مختلف الأجهزة، مثل الدم المحيطي والعقدة الليمفاوية والطحال، نخاع العظام بالطرق التالية. وعموما، هناك نسبة صغيرة جداً من الخلايا المناعية الموجودة في الأورام (عينة صغيرة الحجم). عدم تجانس المتطرفة من الأورام وعدد صغير من الخلايا المناعية هذا جعل يتعافى الخلايا المناعية نادرة مجدية تقنيا صعبة، تتطلب نمواً مخصص الورم الأنسجة الانفصال التي تشمل آلات. كل النقاط السابقة تجعل قياس المعلمة متعددة متزامنة باستخدام قياس التدفق متعدد الألوان الأساسية. التدفق متعدد الألوان يتطلب تصميم لوحة علامة معقدة والتعويض، والنابضة استراتيجيات، نظراً لتداخل الطيفية الفلورية. كما حاول هذا التقرير أن تثبت لجمهور القراء المهتمين/عملية الورم المناعي التنميط عن طريق تفكك أنسجة الورم المعرفة والتحليل الخلوي التدفق متعدد الألوان.

يمكن أن تكون ثلاث خطوات حاسمة الأهمية بالعائد الإنتاجي سمسم تحليل: أولاً، فصل عالية غلة من خلايا قابلة للحياة المستردة من الأورام باستخدام إجراءات الانفصال الورم حسب الطلب؛ وثانيا، التصميم الأمثل لكبير متعدد الألوان الألواح المصبوغة استناداً إلى الكواشف المتوفرة؛ ثالثا، استراتيجية النابضة أمثل في التحليل. الكتاب تود التأكيد على التدريب وخبرة المشغلين الحصول على البيانات وتحليلها ضرورية لنجاح التدفق الخلوي تحليل سمسم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

هي جميع المؤلفين العاملين بدوام كامل الحالي تاج العلوم البيولوجية، وشركة

Acknowledgments

الكتاب أود أن أشكر الدكتور جودي باربو-لقراءة وتحرير المخطوطة الحرجة، وأشكر مانويل رالف لتصميم الأعمال الفنية. الكتاب أيضا يود أن يشكر فريق علم الأورام في فيفو ، لجهودها التقنية كبيرة وفريق التاج العلوم البيولوجية الأورام الأورام المناعية "العلامات البيولوجية".

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Anesthesia machine \ SAS3119 \
Trocar 20 \ \ 2 mm
Petri dish \ \ 20 mm
100x antibiotic and antimycotic \ \ \
Iodophor swabs \ \ Daily pharmacy purchase
Alcohol swabs \ \ Daily pharmacy purchase
Liquid nitrogen Air chemical \ \
Biosafety hood AIRTECH BSC-1300IIA2 \
FACS machine LSRFortessa X-20 BD LSR Fortessa \
antibodies BD \ \
Trevigen MD or BD Matrigel Basement Membrane Matrix High concentration BD 354248 \
FACS buffers BD 554656 Mincing buffer
Brilliant Staining Buffer BD 563794 \
Mouse BD Fc Block BD 553142 \
cell filters BD-Falcon 352350 70 µm
routine blood tube BD-Vacutainer 365974 2 mL
Kaluza Beckman vs 1.5
6-well plates Corning 3516 \
Foxp3 Fix/Perm kit ebioscience 00-5523-00 \
UltraComp eBeads ebioscience 01-2222-42 \
Centrifuge eppendorf 5810R,5920R \
FlowJo software FlowJo LLC \ vs 10.0
PBS Hyclone SH30256.01 50 mL
RPMI 1640 Hyclone SH30809.01 \
Disposable, sterile scalpels Jin zhong J12100 11#
knife handle Jin zhong J11010 \
eye scissors and tweezers Jin zhong Y00030 Eye scissors 10 cm
eye scissors and tweezers Jin zhong JD1060 Eye tweezers 10 cm with teeth
Portable liquid nitrogen tank Jinfeng YDS-175-216 \
Electronic balance Metter Toledo AL204 0-100 g
Miltenyi C-tubes Miltenyi 130-096-334 \
Miltenyi Gentle MACS with heater blocks Miltenyi 120-018-306 \
Tumor Dissociation Kit Miltenyi 130-096-730 \
Cell counter Nexcelom Cellometer Cellometer Auto T4
cryopreservation tube Nunc 375418 1.8 mL
Cultrex High Protein Concentration (HC20+) BME PathClear 3442-005-01 \
syringes Shanghai MIWA medical industry \ 1-5 mL
Studylog software Studylog \ software
Studylog-Balance and supporting USB OHAUS SE601F Balance and supporting USB
Studylog-Data line of vernier calipers Sylvac 926.6721 Data line of vernier calipers
Caliper Sylvac 910.1502.10 Sylvac S-Cal pro
Sterilized centrifuge tubes Thermo 339653 50 mL
Sterilized centrifuge tubes Thermo 339651 15 mL
Ice bucket Thermo KLCS-288 4 °C
Ice bucket Thermo PLF-276 -20 °C
Ice bucket Thermo DW-862626 -80 °C
RNAlater Thermo am7021 \

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Chevrier, S., et al. An Immune Atlas of Clear Cell Renal Cell Carcinoma. Cell. 169, (4), 736-749 (2017).
  2. Wargo, J. A., Reddy, S. M., Reuben, A., Sharma, P. Monitoring immune responses in the tumor microenvironment. Curr. Opin. Immunol. 41, 23-31 (2016).
  3. Mosely, S. I., et al. Rational Selection of Syngeneic Preclinical Tumor Models for Immunotherapeutic Drug Discovery. Cancer Immunol. Res. 5, (1), 29-41 (2017).
  4. Rühle, P. F., Fietkau, R., Gaipl, U. S., Frey, B. Development of a Modular Assay for Detailed Immunophenotyping of Peripheral Human Whole Blood Samples by Multicolor Flow Cytometry. Int. J. Mol. Sci. 17, (8), e1316 (2016).
  5. Jiang, H., et al. Targeting focal adhesion kinase renders pancreatic cancers responsive to checkpoint immunotherapy. Nat. Med. 22, (8), 851-860 (2016).
  6. Gunderson, A. J., et al. Bruton Tyrosine Kinase-Dependent Immune Cell Cross-talk Drives Pancreas Cancer. Cancer Discov. 6, (3), 270-285 (2016).
  7. Li, Q. X., Feuer, G., Ouyang, X., An, X. Experimental animal modeling for immuno-oncology. Pharmacol. Ther. 17, 34-46 (2017).
  8. Takao, K., Miyakawa, T. Genomic responses in mouse models greatly mimic human inflammatory diseases. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 112, (4), 1167-1172 (2015).
  9. Payne, K. J., Crooks, G. M. Immune-cell lineage commitment: translation from mice to humans. Immunity. 26, (6), 674-677 (2007).
  10. Mestas, J., Hughes, C. C. Of mice and not men: differences between mouse and human immunology. J. Immunol. 172, (5), 2731-2738 (2004).
  11. von Herrath, M. G., Nepom, G. T. Lost in translation: barriers to implementing clinical immunotherapeutics for autoimmunity. J. Exp. Med. 202, (9), 1159-1162 (2005).
  12. Talmadge, J. E., Singh, R. K., Fidler, I. J., Raz, A. Murine models to evaluate novel and conventional therapeutic strategies for cancer. Am. J. Pathol. 170, (3), 793-804 (2007).
  13. Erdag, G., et al. Immunotype and immunohistologic characteristics of tumor-infiltrating immune cells are associated with clinical outcome in metastatic melanoma. Cancer Res. 72, (5), 1070-1080 (2012).
  14. Gutiérrez-Garcia, G., et al. Gene-expression profiling and not immunophenotypic algorithms predicts prognosis in patients with diffuse large B-cell lymphoma treated with immunochemotherapy. Blood. 117, (18), 4836-4843 (2011).
  15. Paiva, B., et al. PD-L1/PD-1 presence in the tumor microenvironment and activity of PD-1 blockade in multiple myeloma. Leukemia. 29, (10), 2110-2113 (2015).
  16. Youn, J. I., Collazo, M., Shalova, I. N., Biswas, S. K., Gabrilovich, D. I. Characterization of the nature of granulocytic myeloid-derived suppressor cells in tumor-bearing mice. J. Leukoc. Biol. 91, (1), 167-181 (2012).
  17. Lavin, Y., et al. Innate Immune Landscape in Early Lung Adenocarcinoma by Paired Single-Cell Analyses. Cell. 169, (4), 750-765 (2017).
  18. Mahoney, K. M., et al. PD-L1 Antibodies to Its Cytoplasmic Domain Most Clearly Delineate Cell Membranes in Immunohistochemical Staining of Tumor Cells. Cancer Immunol. Res. 3, (12), 1308-1315 (2015).
  19. Yamaki, S., Yanagimoto, H., Tsuta, K., Ryota, H., Kon, M. PD-L1 expression in pancreatic ductal adenocarcinoma is a poor prognostic factor in patients with high CD8+ tumor-infiltrating lymphocytes: highly sensitive detection using phosphor-integrated dot staining. Int. J. Clin. Oncol. 22, (4), 726-733 (2017).
  20. Jiang, Y., et al. ImmunoScore Signature: A Prognostic and Predictive Tool in Gastric Cancer. Ann. Surg. (2016).
  21. Ribas, A., et al. PD-1 Blockade Expands Intratumoral Memory T Cells. Cancer Immunol. Res. 4, (3), 194-203 (2016).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics