Overview
जब ड्रोसोफिला कल्पनाशील डिस्क धुंधला, अक्सर एक मोटा विच्छेदन किया जाता है जहां डिस्क उजागर कर रहे हैं, लेकिन शरीर से जुड़े रहते हैं । एक बार दाग, ब्याज की डिस्क अलग और घुड़सवार हैं । उदाहरण प्रोटोकॉल विंग कल्पनीय डिस्क विच्छेदन और बढ़ते के लिए एक प्रक्रिया को दर्शाता है।
Protocol
यह प्रोटोकॉल मोरिमोटो और तमोरी, ड्रोसोफिला इमेजिनल डिस्क एपिथेलिया, जे विस एक्सपी (2017) में ट्यूमर के इंडक्शन और निदान का एक अंश है।
1. लार्वा का विच्छेदन
- लकड़ी की छड़ी या कुंद संदंश के साथ तीसरे इंस्टार लार्वा को इकट्ठा करें, फ्लोरोसेंट मार्कर(जैसे,ईजीएफपी) द्वारा उन्हें फ्लोरेसेंस स्टीरियोस्कोप के तहत जीनोटाइप करें और उन्हें पीबीएस (फॉस्फेट बफर नमकीन) के साथ विच्छेदन पकवान में रखें।
- पीबीएस में लार्वा को 2 एमएल प्लास्टिक ट्रांसफर पिपेट के साथ पिपटिंग करके धोएं।
- लार्वा के केंद्र को एक संदंश के साथ पिंच करें और शरीर को अन्य संदंश के साथ आधे में फाड़ दें।
- पूर्वकाल के मुंह के हुक को एक संदंश के साथ पिंच करें और शरीर को अंदर की ओर मोड़ने के लिए अन्य संदंश के साथ मुंह को शरीर की ओर धकेलें।
- लार ग्रंथियों या वसा निकायों जैसे अनावश्यक सामग्रियों को संदंश के साथ हटा दें।
2. फिक्सेशन और एंटीबॉडी स्टेनिंग
- लार्वा शरीर के विच्छेदित पूर्वकाल आधे (कल्पना विंग डिस्क सहित) को 1.5 एमएल प्लास्टिक ट्यूब में स्थानांतरित करें और 1 एमएल ऑफ फिक्स सॉल्यूशन (पीबीएस में 4% फॉर्मलडिहाइड) में कोमल रोटेशन के साथ अंधेरे में कमरे के तापमान पर 10 मिनट के लिए ठीक करें।
सावधानी: फॉर्मेल्डिहाइड विषाक्त है और इसमें कैंसरजनक क्षमता है। त्वचा के संपर्क को रोकने के लिए सुरक्षात्मक दस्ताने और कपड़े पहनें।
नोट: इस हिस्से में, सभी कदम अंधेरे में कमरे के तापमान पर एक नटेटर पर होते हैं जब तक कि अन्यथा नोट न हो। - फिक्स समाधान निकालें और त्यागें। ऊतकों को पीबीटी के 1 एमएल (पीबीएस में 0.3% ट्राइटन एक्स-100) के साथ 15 मिनट के लिए तीन बार धोएं।
- पीबीटी निकालें और 4 डिग्री सेल्सियस पर कमरे के तापमान पर या रात भर में अवरुद्ध और अखरोट 1 घंटे के लिए पीबीटीजी (0.2% गोजातीय सीरम एल्बुमिन और पीबीटी में 5% सामान्य बकरी सीरम) के 1 मिलीएल जोड़ें।
- पीबीटीजी निकालें और पीबीटीजी (सामग्री की तालिकादेखें) के साथ उचित रूप से पतला प्राथमिक एंटीबॉडी समाधान जोड़ें और 4 डिग्री सेल्सियस पर रात भर अखरोट।
- प्राथमिक एंटीबॉडी समाधान निकालें और ऊतकों को 15 मिनट प्रत्येक के लिए तीन बार 1 एमएल पीबीटी से धोएं।
- पीबीटी निकालें और पीबीटीजी (1:400) के साथ उचित रूप से पतला माध्यमिक एंटीबॉडी समाधान जोड़ें। कमरे के तापमान पर 2 घंटे के लिए नाता।
- माध्यमिक एंटीबॉडी समाधान निकालें और 15 मिनट प्रत्येक के लिए दो बार पीबीटी के 1 एमएल के साथ ऊतकों को धोएं।
- एफ-ऐक्टिन को दाग देने के लिए, पीबीटी को हटा दें और पीबीएस (1:40) में उचित रूप से पतला होकर फालॉइडिन समाधान जोड़ें। फिर 20 मिनट के लिए अखरोट। फालॉइडिन समाधान निकालें और ऊतकों को पीबीटी के 1 एमएल से दो बार 15 मिनट के लिए धोएं।
- परमाणु डीएनए का मुकाबला करने के लिए, पीबीटी को हटा दें और डीएपीआई (4', 6-डायमिडिनो-2-फेनीलिंडल) समाधान (पीबीएस में DAPI के 0.5 μg/mL) जोड़ें। फिर 10 मिनट अखरोट।
सावधानी: डीएपीआई में कैंसरजनक क्षमता है। त्वचा के संपर्क को रोकने के लिए सुरक्षात्मक दस्ताने और कपड़े पहनें। - DAPI समाधान निकालें और 15 मिनट प्रत्येक के लिए दो बार पीबीटी के 1 एमएल के साथ ऊतकों को धोएं।
- कमरे के तापमान पर 10 मिनट के लिए पीबीएस के 1 एमएल में एक बार कुल्ला।
- पीबीएस निकालें और पूर्व-बढ़ते माध्यम के रूप में 100% ग्लाइसरोल के 500 माइक्रोन जोड़ें।
3. माइक्रोस्कोप स्लाइड पर बढ़ते
- दाग वाले ऊतकों को 2 मिलीएल प्लास्टिक ट्रांसफर पिपेट का उपयोग करके माइक्रोस्कोप स्लाइड पर रखें।
- ऊतकों को संदंश के साथ एक और माइक्रोस्कोप स्लाइड पर बढ़ते माध्यम की बूंदों में स्थानांतरित करें।
- एक संदंश के साथ विच्छेदित ऊतक के अंत को पकड़ें और अन्य संदंश के साथ मस्तिष्क और आंख एंटीनाल डिस्क को दूर करें।
नोट: विच्छेदन दिमाग उन्हें पंख कल्पना डिस्क के पास रखने के लिए रखें। दिमाग एक मंच के रूप में कार्य करता है जो कवरस्लिप को विंग कल्पनीय डिस्क को कुचलने से रोकता है। - पंख कल्पना डिस्क को अलग करने के लिए एक संदंश के साथ विच्छेदित ऊतक के अंत को पकड़ ते हैं और धीरे-धीरे शरीर की दीवार को खरोंच करते हैं और अन्य संदंश के साथ डिस्क को फाड़ देते हैं।
नोट: यदि विंग कल्पनीय डिस्क ढूंढना मुश्किल है, तो श्वासनली को पीछे से पूर्वकाल की ओर छीलें। विंग कल्पनाशील डिस्क श्वासनली से चिपक जाते हैं। - धीरे-धीरे नेल पॉलिश के साथ एक कवरस्लिप और सील के साथ कल्पना डिस्क को कवर करें; 4 डिग्री सेल्सियस पर स्टोर करें।
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Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Reagents | |||
Phosphate buffered saline (PBS) | Wako | 162-19321 | |
TritonX-100 | Wako | 168-11805 | |
Formaldehyde | Wako | 064-00406 | |
bovine serum albumin | Sigma | A7906 | |
normal goat serum | Sigma | G6767 | |
mounting medium, Vectashield | Vector Laboratories | H-1000 | |
DAPI | Sigma | D9542 | |
mouse-anti-Dlg 4F3 | Developmental Studies Hybridoma Bank | 4F3 anti-discs large, RRID:AB_528203 | dilute in PBTG, 1:40 |
mouse-anti-MMP1 | Developmental Studies Hybridoma Bank | 3A6B4, RRID:AB_579780 | 3 mixed 1:1:1 and dilute in PBTG, 1:40 |
mouse-anti-MMP1 | Developmental Studies Hybridoma Bank | 3B8D12, RRID:AB_579781 | 3 mixed 1:1:1 and dilute in PBTG, 1:40 |
mouse-anti-MMP1 | Developmental Studies Hybridoma Bank | 5H7B11, RRID:AB_579779 | 3 mixed 1:1:1 and dilute in PBTG, 1:40 |
mouse-anti-atubulin | Developmental Studies Hybridoma Bank | AA4.3, RRID:AB_579793 | dilute in PBTG, 1:100 |
Alexa Fluor 546 Phalloidin | Molecular probes | A22283 | dilute in PBS, 1:40 |
goat anti-mouse IgG antibody, Alexa Fluor 546 | Molecular probes | A11030 | dilute in PBTG, 1:400 |
Fly strains | |||
sd-Gal4 | Bloomington Drosophila Stock Center | #8609 | recombined with UAS-EGFP |
upd-Gal4 | Bloomington Drosophila Stock Center | #26796 | recombined with UAS-EGFP |
UAS-lgl-RNAi | Vienna Drosophila RNAi center | #51247 | |
UAS-scrib-RNAi | Vienna Drosophila RNAi center | #105412 | |
UAS-RasV12 | Bloomington Drosophila Stock Center | #64196 | |
UAS-Yki3SA | Bloomington Drosophila Stock Center | #28817 | |
hsFLP | Bloomington Drosophila Stock Center | #6 | |
Act>CD2>GAL4 (flip-out GAL4) | Bloomington Drosophila Stock Center | #4780 | recombined with UAS-EGFP |
UAS-EGFP | Bloomington Drosophila Stock Center | #5428 | X chromosome |
UAS-EGFP | Bloomington Drosophila Stock Center | #6658 | third chromosome |
UAS-Dicer2 | Bloomington Drosophila Stock Center | #24650 | second chromosome |
UAS-Dicer2 | Bloomington Drosophila Stock Center | #24651 | third chromosome |
vkg-GFP | Morin et al. 2001 | GFP protein trap |