Overview
Это видео описывает сенсорный ответ анализ, который измеряет реакцию личинки зебры коснуться стимулов.
Protocol
1. Сенсорный анализ ответов
- Подготовка 2 dpf эмбрионов для сенсорного вызываемого анализа ответов
- Убедитесь, что время суток, в которое проводится тест, согласуется между экспериментами, поскольку активность может сильно различаться в течение дня.
ПРИМЕЧАНИЕ: Эксперимент должен быть выполнен ослеплен и порядок тестирования рандомизированных, чтобы свести к минимуму экспериментальные артефакты. - Назначить рыбе штаммы числа, которое неизвестно человеку, проводя эксперименту. После этого, используя свободно доступные онлайн-инструменты генерировать случайный список, который диктует порядок тестирования.
- По крайней мере за час до тестирования, дехорионат эмбрионов, разрывая отверстие в хорионе и осторожно потянув хорион друг от друга с помощью пары тонких пинцетов. Удалите мусор из чашки Петри, прежде чем вернуться в инкубатор 28 градусов по Цельсию.
- Убедитесь, что время суток, в которое проводится тест, согласуется между экспериментами, поскольку активность может сильно различаться в течение дня.
- Выполнение сенсорного анализа ответов
- Нагрейте стадию до 28 градусов по Цельсию по крайней мере за 15 минут до начала тестирования.
ПРИМЕЧАНИЕ: Этот этап контролируется температурой и будет оставаться на уровне 28 градусов по Цельсию в течение всего срока тестирования. Температура будет влиять на активность, и поэтому важно поддерживать постоянную температуру. Если нагретая стадия недоступна, то следует контролировать температуру воды и проводить все эксперименты при одинаковой температуре. - Поместите чашку Петри, наполненную эмбриональной средой (5 мММ NaCl, 0.17mM KCl, 0.33 mM CaCl2, 0.33 mM MgSO4 в воде) на освещенную сцену и смонтировать высокоскоростную камеру над чашкой Петри.
- Запустите программное обеспечение для записи видеокамер (например, Stream Pix 5, описанный здесь) и под вкладкой "рабочее пространство" выберите 1000 кадров в секунду (1000 кадров в секунду) в качестве скорости захвата, чтобы гарантировать, что быстрое действие плавания рыбы записывается.
- Работая с одним эмбрионом за один раз, поместите эмбрион в середине чашки Петри с зебры хорошо видны в поле зрения.
ПРИМЕЧАНИЕ: Если эмбрион уплывает до начала эксперимента заменить его на другой, как восстановление и позиционирование эмбриона может привести к его становится десенсибилизированных к стимулу и повторный всплеск ответы могут способствовать мышечной слабости в некоторых моделях болезни. - Начните запись, нажав на кнопку "запись" и, доставить механосенсальный стимул для эмбриона, касаясь его мягко тупой иглой на верхней части головы.
- Остановите запись после того, как эмбрион выплыл из поля зрения или вернулся к отдыху.
ПРИМЕЧАНИЕ: Пики ускорения в течение первых 0,2 сек реакции побега взрыва после механического стимула. Таким образом, убедитесь, что по крайней мере в течение первых 0,2 сек реакции побега записи рыбы находится в поле зрения. Используя программное обеспечение Stream Pix 5, данные будут автоматически сохранены в качестве .avi видео файла. Можно также использовать альтернативное программное обеспечение для захвата видео, такое как Free Video Capture или Softonic, оба из которых находятся в свободном доступе для скачивания. - Верните эмбрион в новую чашку Петри и выберите другой эмбрион для тестирования. Выполните тестирование как минимум на 15 рыб.
- Нагрейте стадию до 28 градусов по Цельсию по крайней мере за 15 минут до начала тестирования.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
90 mm Petri Dishes | Pacific Laboratory Products | PT S90001 | |
Tweezers, style 8 | ProSciTech | T04-821 | |
Incubator | Thermoline Scientific | TEI-43L | |
High Speed Camera | Baumer | HXC20 | |
StreamPix5 | NorPix | Step 1.2.3 | |
Temperature Control Unit | Viewpoint | ||
http://www.randomization.com | N/A | Steps 1.1.2 |