Isolamento ed espansione della cellule staminali neurali del mouse utilizzando il saggio neurosfere
Summary
Questo protocollo video viene illustrato il metodo di analisi per generare neurosfere ed espandere le cellule staminali neurali adulte provenienti dalla regione periventricolare del mouse, e fornisce approfondimenti tecnici per garantire la si può raggiungere culture neurosfere riproducibile.
Abstract
L'isolamento e l'espansione delle cellule staminali neurali putativo (NSC) dal cervello adulto murino è stato descritto da Reynolds e Weiss nel 1992 utilizzando una chimica definita senza siero sistema di coltura noto come il test neurosfere (NSA). In questo saggio, la maggior parte dei tipi di cellule differenziate morire entro pochi giorni di cultura, ma una piccola popolazione di cellule precursori fattore di crescita sensibili sottoposti attiva proliferazione in presenza del fattore di crescita epidermico (EGF) e / base del fattore di crescita dei fibroblasti (bFGF). Queste cellule formano colonie di cellule indifferenziate chiamate neurosfere, che a sua volta può essere reinoculate per espandere il pool di cellule staminali neurali. Inoltre, le cellule possono essere indotte a differenziarsi, generando le tre principali tipi di cellule del sistema nervoso centrale cioè neuroni, astrociti e oligodendrociti. Questo test fornisce un prezioso strumento per fornire una costante, fonte rinnovabile di precursori indifferenziati sistema nervoso centrale, che potrebbero essere utilizzati per studi in vitro e anche per scopi terapeutici.
Questo video viene illustrato il metodo NSA per generare ed espandere NSCs dalla regione periventricolare topo adulto, e fornisce approfondimenti tecnici per garantire la si può raggiungere culture neurosfere riproducibile. La procedura prevede la raccolta del cervello da topo adulto, micro-dissezione della regione periventricolare, preparazione dei tessuti e della cultura nella NSA. Il tessuto raccolto viene prima digerito chimicamente con tripsina-EDTA e poi dissociato meccanicamente in NSC medio per ottenere una sospensione singola cellula e, infine, placcato in NSA. Dopo 7-10 giorni in coltura, la risultante neurosfere primarie sono pronti per la sottocultura di raggiungere la quantità di cellule necessario per gli esperimenti futuri.
Protocol
Discussion
Il test neurosfere 2 ha guadagnato l'attenzione generale della comunità di ricerca non solo per l'isolamento e lo studio di NSCs da SNC 4-5, ma anche per l'isolamento di altri tipi di cellule staminali provenienti da tessuti diversi putativo, come il petto 6 e 7 e cuore per l'identificazione del cervello, della mammella e del colon cellule staminali tumorali 8-9 suggerendo che questo sistema di coltura può essere applicato a una serie di somatiche …
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Questo lavoro è stato sostenuto da un finanziamento della Fondazione Overstreet.
Materials
| Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| NeuroCult NSC Basal Medium | Medium | Stem Cell Technologies | 05700 | |
| NeuroCult NSC Proliferation Supplements | Medium supplement | Stem Cell Technologies | 05701 | |
| %0.05 trypsin-EDTA | Reagent | Gibco | 25300-062 | |
| Soybean trypsin inhibitor | Reagent | Sigma | T6522 | |
| Cell strainer | Sieve | BD Falcon | 352340 | |
| T25 flask | Culture ware | Nalge Nunc international | 136196 | |
| T80 flask | Culture ware | Nalge Nunc international | 178905 | |
| EGF | Growth factor | R&D | 2028-EG | |
| Pen/Strep | Reagent | Gibco | 15140-122 | |
| *MEM | Reagent | Gibco | 41500-018 | HEM component |
| *HEPES | Reagent | Sigma | H4034 | HEM component |
| *Distilled water | Reagent | Gibco | 15230-147 | |
| 15 ml tubes | Culture ware | BD Falcon | 352096 | |
| 50 ml tubes | Culture ware | BD Falcon | 352070 | |
| Fine curved forceps | Surgical tools | Fine Science Tools | 11251‐35 | |
| Small fine forceps | Surgical tools | Fine Science Tools | 11272‐30 | |
| Small forceps | Surgical tools | Fine Science Tools | 11050‐10 | |
| b-FGF | Growth factor | R&D | 3139-FB | |
| Heparin | Growth factor | Sigma | H4784 | Reconstituted in PBS |
*To make HEM, mix 1×10L packet of MEM and160ml of 1M HEPES and bring the volume to 8.75 L using distilled water. Set the final PH to 7.4 and store it at 4°C.
References
- Louis, S. A., Reynolds, B. A. Neurosphere and Neural Colony-Forming Cell Assays. Protocols for Neural Cell Culture. 10, 1-28 (2010).
- Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
- Sen, A., Kallos, M. S., Behie, L. A. New tissue dissociation protocol for scaled-up production of neural stem cells in suspension bioreactors. Tissue Eng. 10, 904-913 (2004).
- Morshead, C. M. Neural stem cells in the adult mammalian forebrain: a relatively quiescent subpopulation of subependymal cells. Neuron. 13, 1071-1082 (1994).
- Golmohammadi, M. G. Comparative analysis of the frequency and distribution of stem and progenitor cells in the adult mouse brain. Stem Cells. 26, 979-987 (2008).
- Dontu, G. In vitro propagation and transcriptional profiling of human mammary stem/progenitor cells. Genes Dev. 17, 1253-1270 (2003).
- Messina, E. Isolation and expansion of adult cardiac stem cells from human and murine heart. Circ Res. 95, 911-921 (2004).
- Ignatova, T. N. Human cortical glial tumors contain neural stem-like cells expressing astroglial and neuronal markers in vitro. Glia. 39, 193-206 (2002).
- Galli, R. Isolation and characterization of tumorigenic, stem-like neural precursors from human glioblastoma. Cancer Res. 64, 7011-7021 (2004).
- Reynolds, B. A., Rietze, R. L. Neural stem cells and neurospheres–re-evaluating the relationship. Nat Methods. 2, 333-336 (2005).
- Louis, S. A. Enumeration of Neural Stem and Progenitor Cells in the Neural Colony Forming Cell Assay. Stem Cells. , (2008).
