Summary
Модифицированный северный блоттинг метод измерения N 6 -methyladenosine (м 6 а) изменения в РНК описана. Текущий метод может обнаружить изменения в различных РНК и элементов управления в различных экспериментальных конструкций.
Protocol
Примечание: Общую РНК м 6 Уровень включает рРНК, мРНК и другие малые РНК. Так как рибосомальной РНК имеет обильные м 6 модификаций А, измерение м 6 уровней А необходимо будет рассмотреть этот факт.
Выделение 1. РНК
- Используя решение рибонуклеазы дезактивации (разбрызгивают на бумажные полотенца), протрите пипеток и лабораторного стола поверхности. Влажные бумажные полотенца с нуклеазы без воды и протирать пипеток и лабораторного стола поверхности снова.
- Экстракция РНК
- Общая Выделение РНК
- С помощью верхней мешалки, гомогенизируют 50-100 мг ткани или 5-10 х 10 6 клеток в 1 мл раствора для выделения РНК выдерживали при 4 ° С.
Примечание: больше ткани (100-150 мг), которые могут потребоваться для образцов жировой ткани мышей из-за более низкой концентрации РНК в них. Образцы получены из сердца мыши, печени, скелетных мышцах, легких, головного мозга, и макрофаги были использованы ранее 4. - Вcubate выборочные гомогенатов в течение 5 мин при комнатной температуре.
- Добавляют 100 мкл 1-бром-3-хлорпропана (БКП) на 1 мл образца гомогената. Встряхнуть пробирки энергично в течение 15 секунд и приступить к изоляции общей РНК в соответствии с инструкциями изготовителя 24.
- С помощью верхней мешалки, гомогенизируют 50-100 мг ткани или 5-10 х 10 6 клеток в 1 мл раствора для выделения РНК выдерживали при 4 ° С.
- Полиаденилированная мРНК Очистка от изолированной Общую РНК
- Очищают Полиаденилированная мРНК с использованием доступных наборов или протоколов.
- Тщательно взболтать, чтобы вновь приостановить каждое из следующих решений: 2x связывающего раствора, олиго (дТ) полистирольные шарики и промывочный раствор. Убедитесь, что олиго (дТ) бусин нагреться до комнатной температуры перед использованием.
- Перенести 120 мкл элюирующего раствора на препарата в пробирку и нагревают до 70 ° С в нагревательном блоке.
- Пипетировать до 500 мкг общей РНК в микроцентрифужных трубки. С помощью нуклеазы без воды, регулировать громкость до 250 мкл.
- Добавьте 250 мкл раствора связывающего 2x до полной РНК, таклюция и вихрь коротко перемешать содержимое.
- Добавьте 15 мкл олиго (дТ) бусы и вихрь тщательно перемешать.
- Выдержите смесь при температуре 70 ° С в течение 3 мин.
- Извлеките образец из нагревательного блока и дать постоять при комнатной температуре в течение 10 мин.
- Центрифуга при 15000 мкг в течение 2 мин.
- Осторожно удалите супернатант, оставляя позади приблизительно 50 мкл.
- Добавьте 500 мкл промывочного раствора повторно приостанавливать осадок пипетированием.
- Пипетировать суспензии в набор спинового фильтра / сбора трубки.
- Центрифуга при 15000 мкг в течение 2 мин. Удалить столбец из коллекторной трубки и отбросить проточные. Вернуть колонку в пробирку.
- Пипетка 500 мкл промывочного раствора на спиновый фильтр.
- Центрифуга при 15000 х г в течение 2 мин.
- Перенести спиновый фильтр в новую пробирку для сбора.
- Пипетка 50 мкл элюирующего раствора нагреваютдо 70 ° С на центр спинового фильтра.
- Выдержите в течение 2-5 мин при температуре 70 ° С. Центрифуга при 15000 мкг в течение 1 мин.
- Пипетировать дополнительно 50 мкл элюирующего раствора нагревают до 70 ° С на центр спинового фильтра.
- Повторите шаг 1.2.2.1.18.
- Добавить 100 мкг / мл гликогена, 0,1 объема 3 М буфере ацетата натрия (рН 5,2) и 2,5 объема абсолютного этанола. Осадок в течение ночи при -80 ° С.
- Центрифуга при 15000 х г в течение 25 мин при температуре 4 ° С. Удалите супернатант.
- Промывают осадок с 1 мл 75% -ного этанола. Центрифуга при 15000 х г в течение 15 мин при температуре 4 ° С. Осторожно удалите этанол.
- Сушить в воздухе в течение 3-5 мин.
- Добавьте 10 мкл нуклеазы без воды, чтобы растворить осадок.
- Хранить при температуре -70 ° С.
- Очищают Полиаденилированная мРНК с использованием доступных наборов или протоколов.
- Общая Выделение РНК
- РНК Квалификация и Количественная
- С помощью спектрофотометра, определяют концентрацию РНК в присутствии NotIнг оптическую плотность при длине волны 260 нм и 280 нм. Отношение А 260 / А 280 должно быть 1,8-2,2.
- Проверка качества образцов РНК с использованием 0,8% агарозном геле 25.
ПРИМЕЧАНИЕ: неповрежденными эукариотической суммарную РНК должны показать интенсивные полосы 28S и 18S рРНК. Отношение 28S в сравнении интенсивности полос 18S рРНК для хорошей подготовки РНК составляет ~ 2.
2. Гель электрофорез и передачи
Примечание: Протоколы подготовки буфера приведены в таблице 1.
- Формальдегид гель Приготовление (1%)
- Промыть все оборудование электрофорез с диэтилпирокарбонатом (DEPC) водой.
- Melt 2,5 г агарозы в 215 мл воды DEPC полностью в микроволновой печи.
- Добавить 12,5 мл 10х 3- (N - морфолино) пропансульфоновой кислоты (MOPS) буфер и 22,5 мл 37% -ного формальдегида.
- Налейте его в аппарате для электрофореза с толстым гребнем 1,5 мм.
- Устранить пузырьки или толкать трубчик к краям геля с чистым гребнем.
- Дайте гель затвердеть при комнатной температуре.
- Базовые приготовления
- Смешайте 1-10 мкг общей РНК и 11,3 мкл буфера для образцов.
- Смешайте 2 мкг РНК-маркера (1 мкг / мкл) 11,3 мкл буфера для образцов.
- Добавить нуклеазы без воды к образцам из 2.2.1, 2.2.2 до общего объема 16 мкл.
- Нагревают при 60 ° С в течение 5 минут, а затем охладить на льду.
- Смешайте 16 мкл образца из 2.2.3 с 4 мкл отслеживания красителя, который содержит 0,1 мкг / мкл этидийбромид на льду.
ВНИМАНИЕ: этидий бромид, возможно, тератогенным и токсичен при вдыхании. Read этидий бромид технический паспорт безопасности.
- электрофорез
- Добавить 200 мл 10х MOPS буфера до 1800 мл DDH 2 O , чтобы сделать 1x MOPS работает буфера.
- Используйте 1x MOPS работает буфера для промывки лунок геля.
- Предварительно запуск тон гель при 20 В в течение 5 мин.
- Загрузка образцов РНК в лунки геля.
- Покрытие с фольгой, чтобы избежать попадания света. Запуск на 35 В в течение приблизительно 17 ч (в течение ночи)
- Осмотрите и сфотографируйте гель под УФ-светом.
- Перевод
- Вырезать гель для удаления неиспользованную часть.
- Приготовьте 500 мл 10х SSC-буфере (250 мл 20x SSC буфера и 250 мл DEPC воды).
- Вымойте гель дважды с 10-кратным SSC буфером в течение 20 мин при встряхивании при 50 оборотах в минуту.
- Вырезать 1 бумажный фильтр лист , достаточно большой , чтобы служить в качестве фитиля бумаги, впитывающей буфера переноса с передающего лотка (рисунок 1).
- Вырезать 4 куска фильтровальной бумаги такого же размера, что и гель.
- Порезать 1 лист положительно заряженную нейлоновую мембрану в тот же размер, что и гель.
- Отметить насечку на геле и мембрану в качестве маркера, чтобы обеспечить правильную ориентацию.
- Замочите мембрану в 2х буфера SSC в течение 15 мин.
- Залить 500 мл оF 10x SSC буфера в передаточную лоток.
- Положите большой фильтр бумажного листа через стеклянную пластину и смочить фильтровальную бумагу буфера переноса.
- Раскатать все пузырьки с пипеткой.
- Замочить 2 куска фильтровальной бумаги предварительно вырезанное в буфере передачи и поместить их в центр фильтровальной бумаги со стадии 2.4.5. Удалите все пузырьки.
- Уложить гель верхняя сторона была обращена вниз на фильтровальную бумагу.
- Lay мембрану поверх геля. Совместите вырезы геля и мембраны.
- Поместите 2 куска фильтровальной бумаги предварительно вырезанное на верхней стороне мембраны и смочить фильтровальную бумагу буфера переноса.
- Удалите все пузырьки между слоями.
- Нанести пластмассовую обертку вокруг геля, чтобы гарантировать, что полотенца только впитывать буфер, проходящий через гель и мембрану.
- Стек бумажные полотенца на верхней части фильтровальной бумаги.
- Поместите негабаритный стеклянную пластину поверх полотенца.
- Поместите вес на верхней части стека.
- Держите в течение ночи, чтобы позволить РНК перенести из геля на мембрану.
3. Обнаружение N 6 -methyladenosine
- Мембрана Сшивание
- Держите мембрану влажной в буфер 2x SSC.
- Поместите 2 листа фильтровальной бумаги, погруженной с 10x SSC буфером в УФ сшивателя.
- Поместите мембрану в верхней части фильтровальной бумаги, чтобы сторона с РНК-адсорбированной лицевой стороной вверх.
- Выберите режим "autocrosslink" (120000 мкДж) и нажмите кнопку "Пуск", чтобы начать облучение.
- Осмотрите мембрану и гель с УФ-уловителя изображение геля, чтобы подтвердить перевод РНК из геля на мембрану.
- иммуноблоттинг
- Блок мембраны в 5% молоке обезжиренном в Трис-буферном солевом растворе с Tween 20 (TBST) буфере при комнатной температуре в течение 1 часа.
- Промыть трижды TBST буфером в течение 15 мин.
- Выдержите в течение ночи в мембрану м 6 А (<EM> N 6 -methyladenosine) раствор антитела (1: 1000 в 5% обезжиренное молоко TBST буфер) при 4 ° С.
- Промывают мембрану трижды TBST буфером в течение 15 мин.
- Инкубируйте мембраны в растворе конъюгированным с пероксидазой хрена ослиного антителам кролика (1: 2000 в 5% обезжиренном буфера молока TBST) в течение 1 ч при комнатной температуре.
- Промывают мембрану трижды TBST буфером в течение 15 мин.
- Примените расширенный хемилюминесцентный субстрат (0,125 мл на см 2 мембраны).
- Захват хемилюминесценции с оптимальными настройками цифрового формирования изображений, в соответствии с инструкциями изготовителя 26.
- м 6 A Количественное
- Измерьте относительную м 6 хемилюминесцентный интенсивности с использованием программного обеспечения ImageJ.
- В меню программного обеспечения ImageJ, выберите опцию "Файл", чтобы открыть соответствующую файл.
- Выберите "Прямоугольник" инструмент из ImageJ и нарисуйте рамку вокругсигналы.
- Если рибосомной РНК не является предметом экспериментов, избежать полос 18S и 28S рРНК м 6 А для расчета.
- Нажмите кнопку "Command" и "1", чтобы подтвердить выбранную полосу.
- Нажмите кнопку "Command" и "3", чтобы показать выбранный участок.
- Нажмите на "прямой" инструмент и рисовать линии, чтобы отделить сегментированный область.
- Нажмите кнопку "Wand" инструмент для записи измерений.
- Экспорт данных.
- Нормализовать уровень м 6 А с 18S рибосомальной РНК из группы окрашивания бромистым этидием.
- Измерьте относительную м 6 хемилюминесцентный интенсивности с использованием программного обеспечения ImageJ.
Representative Results
Через 14 дней в нормальной свет-темнота циркадного фазы, мыши дикого типа, были помещены в постоянной темноте. РНК из печени отбирали каждые 4 ч и изучали с модифицированной северной блоттинга. Метилирование рРНК, мРНК, и малых РНК были четко обнаружены (рисунок 2). Сравнение между различными циркадных раза (КТ) могут быть точно вычислены со стандартом 18S рРНК. Был прочный циркадные колебания м 6 уровней А в рРНК, мРНК, и малых РНК.
Для того, чтобы избежать помех протянутую рРНК, Полиаденилированная РНК могут быть очищены, как на этапе 1.2.2. После очистки рРНК может быть в значительной степени устранены , чтобы позволить для лучшей визуализации других РНК (рисунок 3).
Рисунок 2: Суточный ритм уровней м 6 А в C57BL / 6J. Эта цифра показывает 6 м пятном тотальной РНК из печени мышей дикого типа , забитых на первый день темно-темно - фазы через 14 дней нормального светло-темной фазы через 4 ч интервалами. Количественное было сделано с использованием м 6 разностное изображение плотности между 18S и 28S рРНК. М 6 А обилие нормализовалось к группе 18S рРНК из геля формальдегида в нижней части.и др = "_blank"> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 3: 6 м A кляксы с или без рРНК. Представитель м 6 A - блоты полной РНК и РНК полиаденилированой из печени мышей дикого типа показаны. Пожалуйста , нажмите здесь , чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
1 | 10x МОПС буфер (рН 7,0, защищенном от света месте) | |||||
МОПС | 41.85 | г | 0,2 М | |||
Ацетат натрия | 4.1 | г | 0,05 М | |||
ЭДТА, динатриевой соли | 3.7 | г | 0,01 М | |||
DEPC воды | ||||||
Всего | 1 | L | ||||
Перемешивают при комнатной температуре | ||||||
2 | 20x SSC буфер (рН 7,0) | |||||
хлористый натрий | 175,3 | г | 3 М | |||
тринатрийцитрат | 88,3 | г | 0,3 М | |||
DEPC воды | ||||||
Всего | 1 | L | ||||
Перемешивают при комнатной температуре, а затем автоклав | ||||||
3 | Отслеживание Dye | |||||
10x МОПС буфер | 500 | мкл | 1x | |||
Ficoll 400 | 0,75 | г | 15% | |||
бромфеноловый синий | 0,01 | г | 0,2% | |||
ксиленцианол | 0,01 | г | 0,2% | |||
DEPC воды | ||||||
Всего | 5 | мл | ||||
Хранить при температуре -20 ° C | ||||||
4 | DEPC воды | |||||
Развести соотношение 1: 1000 из DEPC в DDH 2 O | ||||||
Перемешивают в течение ночи при комнатной температуре, а затем автоклав | ||||||
5 | Пример буфера (защиты от света) | |||||
10x МОПС буфер | 200 | мкл | ||||
37% формальдегида | 270 | мкл | ||||
формамид | 660 | мкл | ||||
Хранить при температуре -20 ° C |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
RNaseZap solution | Ambion | AM9782 | Protocol 1.1 |
TRI Reagent solution | Ambion | AM9738 | Protocol 1.2.1.1 |
1-Bromo-3-chloropropane (BCP) | Sigma | B9673 | Protocol 1.2.1.3 |
Ethanol | JTbaker | 8006 | Protocol 1.2.1.3 |
Isopropanol | Sigma | I9516 | Protocol 1.2.1.3 |
GenElute mRNA Miniprep Kit | Sigma | MRN70 | Protocol 1.2.2.1 |
Glycogen | Ambion | AM9510 | Protocol 1.2.2.2 |
Sodium acetate | Fluka | 71183 | Protocol 1.2.2.2 |
Nuclease-free water | Ambion | AM9930 | Protocol 1.2.2.6 |
DEPC | Sigma | D5758 | Protocol 2.1.1 |
Agarose | JT Baker | A426 | Protocol 2.1.2 |
MOPS | Sigma | M1254 | Protocol 2.1.3 |
37% formaldehyde Solution | Sigma | F8775 | Protocol 2.1.3 |
EDTA, Disodium Salt | JT Baker | 8993 | Protocol 2.1.3 10x MOPS buffer |
formamide | Sigma | F7503 | Protocol 2.2.1 |
RNA Millennium Marker | Ambion | AM7150 | Protocol 2.2.2 |
Ethidium Bromide | Amresco | X328 | Protocol 2.2.5 |
Ficoll PM400 | GE Healthcare | 17-0300-10 | Protocol 2.2.5 tracking dye |
Bromophenol blue | Sigma | 114391 | Protocol 2.2.5 tracking dye |
Xylene Cyanol FF | Sigma | X4126 | Protocol 2.2.5 tracking dye |
Sodium chloride dihydrate | JT Baker | 3624 | Protocol 2.4.2 20x SSC buffer |
Trisodium citrate | Sigma | S1804 | Protocol 2.4.2 20x SSC buffer |
Hybond Blotting Paper | GE Healthcare | RPN6101M | Protocol 2.4.4 |
GE Hybond-N+ membrane | GE Healthcare | RPN303B | Protocol 2.4.6 |
Stratalinker UV Crosslinker 2400 | Stratagene | 400075 | Protocol 3.1.2 |
Gel Catcher 1500 | ANT Technology | Gel Catcher 1500 | Protocol 3.1.5 |
Anti-m6A (N6-methyladenosine) | Synaptic Systems | 202003 | Protocol 3.2.3 |
Amersham ECL Anti-Rabbit IgG, HRP-linkd whole Ab | GE Healthcare | NA934 | Protocol 3.2.5 |
ChemiDoc MP System | BIO-RAD | 1708280 | Protocol 3.2.8 |
References
- Thammana, P., Held, W. A. Methylation of 16S RNA during ribosome assembly in vitro. Nature. 251 (5477), 682-686 (1974).
- Meyer, K. D., Jaffrey, S. R. The dynamic epitranscriptome: N6-methyladenosine and gene expression control. Nat Rev Mol Cell Biol. 15 (5), 313-326 (2014).
- Niu, Y., et al. N6-methyl-adenosine (m6A) in RNA: an old modification with a novel epigenetic function. Genomics Proteomics Bioinformatics. 11 (1), 8-17 (2013).
- Wang, C. Y., et al. Loss of FTO in adipose tissue decreases Angptl4 translation and alters triglyceride metabolism. Sci Signal. 8 (407), 127 (2015).
- Wang, X., et al. N6-methyladenosine-dependent regulation of messenger RNA stability. Nature. 505 (7481), 117-120 (2014).
- Berulava, T., Rahmann, S., Rademacher, K., Klein-Hitpass, L., Horsthemke, B. N6-adenosine methylation in MiRNAs. PLoS One. 10 (2), 0118438 (2015).
- Deng, X., et al. Widespread occurrence of N6-methyladenosine in bacterial mRNA. Nucleic Acids Res. 43 (13), 6557-6567 (2015).
- Dominissini, D., et al. The dynamic N-methyladenosine methylome in eukaryotic messenger RNA. Nature. , (2016).
- Fustin, J. M., et al. RNA-methylation-dependent RNA processing controls the speed of the circadian clock. Cell. 155 (4), 793-806 (2013).
- Geula, S., et al. Stem cells. m6A mRNA methylation facilitates resolution of naive pluripotency toward differentiation. Science. 347 (6225), 1002-1006 (2015).
- Wang, C. Y., et al. FTO modulates fibrogenic responses in obstructive nephropathy. Sci Rep. , SREP18874 (2016).
- Jia, G., et al. N6-methyladenosine in nuclear RNA is a major substrate of the obesity-associated FTO. Nat Chem Biol. 7 (12), 885-887 (2011).
- Du, T., et al. An association study of the m6A genes with major depressive disorder in Chinese Han population. J Affect Disord. 183, 279-286 (2015).
- Wang, C. Y., Yeh, J. K., Shie, S. S., Hsieh, I. C., Wen, M. S. Circadian rhythm of RNA N6-methyladenosine and the role of cryptochrome. Biochem Biophys Res Commun. 465 (1), 88-94 (2015).
- Wang, C. Y., Shie, S. S., Hsieh, I. C., Tsai, M. L., Wen, M. S. FTO modulates circadian rhythms and inhibits the CLOCK-BMAL1-induced transcription. Biochem Biophys Res Commun. 464 (3), 826-832 (2015).
- Heyn, H., Esteller, M. An Adenine Code for DNA: A Second Life for N6-Methyladenine. Cell. 161 (4), 710-713 (2015).
- Xiao, W., et al. Nuclear m(6)A Reader YTHDC1 Regulates mRNA Splicing. Mol Cell. 61 (4), 507-519 (2016).
- Meyer, K. D., et al. Comprehensive analysis of mRNA methylation reveals enrichment in 3' UTRs and near stop codons. Cell. 149 (7), 1635-1646 (2012).
- Horowitz, S., Horowitz, A., Nilsen, T. W., Munns, T. W., Rottman, F. M. Mapping of N6-methyladenosine residues in bovine prolactin mRNA. Proc Natl Acad Sci U S A. 81 (18), 5667-5671 (1984).
- Resnick, R. J., Noreen, D., Munns, T. W., Perdue, M. L. Role of N6-methyladenosine in expression of Rous sarcoma virus RNA: analyses utilizing immunoglobulin specific for N6-methyladenosine. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol. 29, 214-218 (1983).
- Golovina, A. Y., et al. Method for site-specific detection of m6A nucleoside presence in RNA based on high-resolution melting (HRM) analysis. Nucleic Acids Res. 42 (4), 27 (2014).
- Dominissini, D., et al. Topology of the human and mouse m6A RNA methylomes revealed by m6A-seq. Nature. 485 (7397), 201-206 (2012).
- Linder, B., et al. Single-nucleotide-resolution mapping of m6A and m6Am throughout the transcriptome. Nat Methods. 12 (8), 767-772 (2015).
- Fu, L., et al. Simultaneous Quantification of Methylated Cytidine and Adenosine in Cellular and Tissue RNA by Nano-Flow Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry Coupled with the Stable Isotope-Dilution Method. Anal Chem. 87 (15), 7653-7659 (2015).
- Rio, D. C., Ares, M., Hannon, G. J., Nilsen, T. W. Nondenaturing agarose gel electrophoresis of RNA. Cold Spring Harb Protoc. 2010 (6), 5445 (2010).
- Wang, C. Y., et al. FTO modulates fibrogenic responses in obstructive nephropathy. Sci Rep. 6, 18874 (2016).
- Li, X., et al. Transcriptome-wide mapping reveals reversible and dynamic N-methyladenosine methylome. Nat Chem Biol. , (2016).
- Sanschagrin, S., Yergeau, E. Next-generation sequencing of 16S ribosomal RNA gene amplicons. J Vis Exp. (90), (2014).
- Kukutla, P., Steritz, M., Xu, J. Depletion of ribosomal RNA for mosquito gut metagenomic RNA-seq. J Vis Exp. (74), (2013).
- Mishima, E., et al. Immuno-Northern Blotting: Detection of RNA Modifications by Using Antibodies against Modified Nucleosides. PLoS One. 10 (11), 0143756 (2015).
- Klungland, A., Dahl, J. A. Dynamic RNA modifications in disease. Curr Opin Genet Dev. 26, 47-52 (2014).