Summary

Flytte oppover: En enkel og fleksibel In Vitro tredimensjonale invasjonen analysen protokoll

Published: March 12, 2018
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver invertert loddrett invasjonen analysen som kan brukes å kvantifisere migrasjon og invasjonen egenskapene til celler i tredimensjonale omgivelser samtidig bevare celle microenvironment. Denne analysen er egnet for sjeldne og/eller sensitive celler.

Abstract

Selv om 3D invasjonen analyser er utviklet, gjenstår utfordringen for å studere celler uten å påvirke integriteten til deres microenvironment. Tradisjonelle 3D søk som Boyden kammeret krever at cellene er fordrevet fra den opprinnelige kultur plasseringen og flyttet til et nytt miljø. Ikke bare gjør dette forstyrre de cellulære prosessene som er innebygd i microenvironment, men det resulterer ofte i et tap av celler. Disse problemene er spesielt utfordrende når du arbeider med celler som er sjeldne, eller svært følsomme for deres microenvironment. Her beskrive vi utviklingen av en 3D invasjonen analysen som unngår både bekymringer. I denne analysen, celler er belagt i en liten godt og en ECM matrise som inneholder en chemoattractant legges oppå cellene. Dette krever ingen celle forskyvning og lar cellene å invadere oppover i matrisen. I denne analysen, kan celle invasjonen samt celle morfologi vurderes i kollagen gel. Bruker denne analysen, karakterisere vi invasiv kapasiteten til sjeldne og følsom celler. hybrid cellene som følge av fusjonen mellom brystkreft celler MCF7 og mesenchymal/multipotent celler stammen/stroma (MSCs).

Introduction

Cellen motilitet er en normal utviklingsmessige og fysiologisk prosess av celler. Endringer i mønsteret og evnen til cellene å migrere og invadere er imidlertid forbundet med pathological betingelser inkludert inflammatoriske sykdommer og kreft metastasering1,2,3. Metastasering er uten tvil den mest dårlig forstått aspekten i kreft. For å metastase, må kreftceller redusere ekstra mobil matrix (EFM), invadere lokale vev og intravasate. Når i omløp, vil kreftceller spre til fjerne området, extravasate og danne sekundære svulster. Derfor muligheten av celler å nedverdige ECM, overføre og å invadere er knyttet til deres metastatisk potensial. Ulike tilnærminger har blitt utviklet for å analysere og kvantifisere migrasjon og invasjonen evnene av celler. De mest brukte tilnærmingene inkluderer sårheling analysen, time-lapse mikroskopi og Boyden kammeret analysen. De sår helbredelse analysen4 og tid forfalle mikroskopi er enkelt og bekvemt analyser som ville gi foreløpig innsikt i celle migrasjon. Men er begge 2D analyser som ikke reflekterer 3D-miljøet der celler finnes i vivo. Studier har vist at cellene reagerer forskjellig på et 3D-miljø i forhold til en 2D en5,6. Videre er sår helbredelse analyser vanskelig å gjengi og kvantitative resultater7,8,9. Cellen sonen analysen, som er en 3D endring av såret healing analysen, er en mer fysiologisk relevante analysen, men det passer ikke for cellene lav i for eksempel hybrid celler fra cellen smelting hendelser10,11 .

Boyden kammeret analysen er en 3-dimensjonal analyse som gir relevant microenvironments for mobilnettet studier. Det krever imidlertid celler fjernes fra deres opprinnelige microenvironment og settes inn i det øvre kammeret av Boyden analysen systemet å migrere og invadere nedover mot chemoattractant som inneholder mediet. Denne 3D tilnærmingen passer ikke i å analysere migrasjon og invasjonen evnen til cellene sårbare for sine microenvironment og/eller begrenset i antall10,11,12. En nyere tilnærming til å analysere celle migrasjon og invasjonen er den microfluidic gradient kammer analyse13. Selv om passende og pålitelig i migrasjon og invasjonen studier, denne analysen er dyrere og kunne være teknisk utfordrende for et typisk laboratorium. Her beskriver vi en enkel invertert loddrett invasjonen analysen som er kompatibel med mange celletyper, inkludert celler som er følsomme for deres microenvironment og/eller begrenset i antall. Denne analysen var tilpasset fra protokollen foreslått av Hooper et al. 14. i denne analysen, cellene forbli i sine opprinnelige microenvironment og migrering og invasjonen overvåkes når de flytter oppover i kollagen gel inneholder en chemoattractant11. Denne analysen er reproduserbare og er optimalisert og godkjent i 35 mm kultur parabolen. Det kan tilpasses forskjellige analysen betingelser inkludert ulike celle kultur størrelser, ulike matriser eller styrke vedheft og ulike chemoattractants. Denne analysen kan tjene som en i vitro plattform for første screening i stoffet funnet prosess.

Protocol

Merk: Denne protokollen er beskrevet i McArdle et al. 11. en tidslinje finnes i figur 1. 1. utarbeidelse av kultur plate Vask 35 mm kultur parabol med en 10 mm glass bunn med 1 mL 1 M saltsyre (HCl) i 15 min å senke hydrophobicity glass-Bottom. Vask kultur plate to ganger med 1 mL av fosfat buffer saltvann (PBS) å kvitte seg med alle HCl. Vask kultur plate to ganger med 1 mL av 70% etanol. …

Representative Results

Vi har brukt en 35 mm kultur parabol med et glass bunn og rotte hale kollagen jeg å utvikle og optimalisere en i vitro 3D invasjon analysen protokollen. Bruke denne analysen, vi viste at bryst kreftceller MCF7 og MSC celler kan invadere i kollagen gel til en gjennomsnittsavstand 0.04 ± 1.8 µm og 41.3 ± 76.0 µm henholdsvis etter 48 h når IGF1 (18.6 ng/mL) ble brukt som chemoattractant (figur 2). Enda viktigere, viste vi at fusion produkter fra M…

Discussion

Her beskriver vi en enkel invertert loddrett invasjonen analysen som er gunstig for ulike celletyper inkludert celler som er sjeldne og/eller avhengig av deres microenvironment. I denne 3D invasjonen analysen, celler forblir i deres opprinnelige microenvironment og dekkes av kollagen gel inneholder en chemoattractant. Cellene deretter overføre og invadere i kollagen. I denne analysen, kan cellene være farget og lett overvåkes i gel. Enkelhet og reproduserbarhet av denne analysen gjør det til et praktisk verktøy for …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Institutes of Health (NIMHD-G12MD007581) gjennom RCMI-Center for Environmental Health Jackson State University og US Department of Defense, ideen Award 11-1-0205.

Materials

MatTek P35G-1.5-10C MatTek Corporation, Ashland, MA P35G-1.5-10-C mattek glass bottom dishes
Rat tail collagen I Corning, Corning, NY, USA 354236 Collagen gel
Hydrochloric acid Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178 USA H1758 HCl
Phosphate buffered saline Thermo Fisher Scientific Inc., Whaltham, MA, USA 10010023 PBS
10X Dulbecco's Modified Eagle's Medium Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178 USA D2429 10X DMEM
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178 USA S5761 NaHCO3
Confocal Fluorescent microscope Olympus America, Center Valley, PA, USA Olympus IX81 Confocal  microscope
Defined Fetal Bovine Serum GE Healthcare Life Sciences HyClone Laboratories, Utah, USA SH30070.03 FBS
Ti:Sapphire multi-photon laser scanning microscope Prarie Technologies, Sioux Falls, SD, USA 40x NA 0.8 objective MPLSM
Imaris software Bitplane Inc. Zurich, CH Imaris 7.5.2 Imaris software
DAPI Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178, USA D9542 DAPI
Paraformaldehyde Thermo Fisher Scientific Inc., Whaltham, MA, USA 50980487 PFA
α-minimum essential medium Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178, USA M0894
MDA-MB-231 ATCC; Manassas, VA, USA HBT-22
MSC Trivedi and Hematti, 2007
20X lens UPLAPO Olympus America, Center Valley, PA, USA 36-064 Olympus UPLSAPO 20X Objective

References

  1. Friedl, P., Brocker, E. B. The biology of cell locomotion within three-dimensional extracellular matric. Cell Mol Life Sci. 57, 41-64 (2000).
  2. Bissell, M. J., Rizki, A., Mian, I. S. Tissue architecture: the ultimate regulator of breast epithelial function. Curr Opin Cell Biol. 15, 753-762 (2003).
  3. Friedl, P., Wolf, K. Tumour-cell invasion and migration: diversity and escape mechanisms. Nat Rev Cancer. 3, 362-374 (2003).
  4. Yarrow, J. C., Perlman, Z. E., Westwood, N. J., Mitchison, T. J. A high-throughput cell migration assay using scratch wound healing, a comparison of image-based readout methods. BMC Biotechnol. 4, 21 (2004).
  5. Wolf, K., et al. Compensation mechanism in tumor cell migration: mesenchymal-amoeboid transition after blocking of pericellular proteolysis. J Cell Biol. 160, 267-277 (2003).
  6. Sahai, E., Marshall, C. J. Differing modes of tumour cell invasion have distinct requirements for Rho/ROCK signalling and extracellular proteolysis. Nat Cell Biol. 5, 711-719 (2003).
  7. Kam, Y., Guess, C., Estrada, L., Weidow, B., Quaranta, V. A novel circular invasion assay mimics in vivo invasive behavior of cancer cell lines and distinguishes single-cell motility in vitro. BMC Cancer. 8, 198 (2008).
  8. Staton, C. A., Reed, M. W., Brown, N. J. A critical analysis of current in vitro and in vivo angiogenesis assays. Int J Exp Pathol. 90, 195-221 (2009).
  9. Poujade, M., et al. Collective migration of an epithelial monolayer in response to a model wound. Proc Natl Acad Sci USA. 104, 15988-15993 (2007).
  10. Noubissi, F. K., Harkness, T., Alexander, C. M., Ogle, B. M. Apoptosis-induced cancer cell fusion: a mechanism of breast cancer metastasis. FASEB J. 29, 4036-4045 (2015).
  11. McArdle, T. J., Ogle, B. M., Noubissi, F. K. An In Vitro Inverted Vertical Invasion Assay to Avoid Manipulation of Rare or Sensitive Cell Types. J Cancer. 7, 2333-2340 (2016).
  12. Noubissi, F. K., Ogle, B. M. Cancer Cell Fusion: Mechanisms Slowly Unravel. Int J Mol Sci. 17, (2016).
  13. Meyvantsson, I., Beebe, D. J. Cell culture models in microfluidic systems. Annu Rev Anal Chem. 1, 423-449 (2008).
  14. Hooper, S., Marshall, J. F., Sahai, E. Tumor cell migration in three dimensions. Methods In Enzymol. 406, 625-643 (2006).
  15. Yang, C., Tibbitt, M. W., Basta, L., Anseth, K. S. Mechanical memory and dosing influence stem cell fate. Nat Materials. 13, 645-652 (2014).

Play Video

Cite This Article
McArdle, T. J., Ogle, B. M., Noubissi, F. K. Moving Upwards: A Simple and Flexible In Vitro Three-dimensional Invasion Assay Protocol. J. Vis. Exp. (133), e56568, doi:10.3791/56568 (2018).

View Video