Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Cancer Research

寻找获得性抗靶治疗的驱动途径: 耐药亚克隆生成与基因击倒敏感性恢复

Published: December 11, 2017 doi: 10.3791/56583

Summary

这是一个时间和经济高效的体外协议, 研究对靶向治疗剂的后天抗性机制, 这是癌症管理中极不满足的医疗需求。

Abstract

过去的两年, 在医学肿瘤学中, 从细胞毒药物到靶向治疗的转变。虽然靶向治疗剂显示了更深刻的临床疗效和最小化的副作用比传统治疗, 耐药性已成为主要限制他们的利益。在临床实践中, 主要采用两种策略: i. 基因处理方法对后天抗性药物的基因型进行建模, 二) 体外/在体内选择耐药性模型。在目前的工作中, 我们提出了一个统一的框架, 用于调查负责对靶向治疗剂产生抗药性的基本机制, 从生成耐药细胞 subclones 开始, 到描述沉默的程序, 用于恢复对抑制剂的敏感性。这种简单的时间和成本效益的方法是广泛适用的, 可以很容易地扩展到研究其他靶向治疗药物在不同的肿瘤 histotypes 的抗性机制。

Introduction

在分子和细胞生物学的关键发现之后, 一些新的合成抗癌分子被开发来选择性地靶向致癌信号通路在广泛的肿瘤类型。特别是, 两类靶向治疗剂具有独特的性质在肿瘤学, 即合成化合物和重组单克隆抗体, 已知已取得临床成功, 并显著改变癌症护理最近数十年1,2,3

然而, 尽管他们对治疗的初步反应令人印象深刻, 但大多数癌症患者对所有靶向治疗剂, 无论是单克隆抗体还是激酶抑制剂都有抗药性。因此, 耐药性是经典抗癌药物的主要障碍4, 对于新出现的靶向治疗 (5,6) 仍然是一个巨大的挑战。

抗靶向治疗可能是内在的 (, 主) 或后天 (, 次要)。内在的阻力描述了一个从头缺乏对治疗的反应, 而继发性抵抗发生后的反应, 药物治疗的时间7。后者是由肿瘤细胞的小群在原始肿瘤的大部分或依偎在远端隐蔽的解剖龛, 表现出多达90% 抵抗一个或多个靶向治疗剂。针对靶向治疗的抗性发展的分子机制主要是由于目标基因突变和其他支持生存信号通路的冗余激活, 其理解仍然远未完成8

在这项工作中, 我们提出了一种时间和经济高效的方法来调查体外机制的后天抗性治疗药物, 从产生耐药细胞 subclones 的描述沉默用于恢复对抑制剂敏感度的程序, 是用于测试和验证工作假说的关键工具。特别是, 我们的方法被用来调查, 在胃癌, 抗性机制曲妥珠单抗(例如, 赫赛汀), 一个人性化的单克隆抗体靶向细胞外领域的 HER2蛋白9。曲妥珠单抗 + 化疗被广泛接受为标准一线治疗 HER2-positive 转移性乳腺癌。多亏最近的临床前研究表明, anti-HER2 疗法在体外体内HER2-positive 胃癌模型10,11中都有显著的活性, 分子药物靶向 HER2 已在临床试验中广泛检查, 其中一些仍在进行中, 对胃食管癌患者12,13,14,15

这些研究强调了对曲妥珠单16 的耐药性患者数量的增加, 类似于其他靶向治疗抑制剂的观察结果。特别地, 曲妥珠单抗的反应率为 47%, 曲妥珠单抗 + 化疗患者的总存活率为2.7 月以上, 仅供化疗患者治疗的时间为17。这表明, 虽然主要曲妥珠单抗抵抗是普遍的, 次要曲妥珠单抗抵抗是不可避免的。因此, 迫切需要澄清导致胃癌 HER2-targeted 治疗阻力的机制, 鉴于这种肿瘤的肿瘤遗传异质性, 这是更成问题的问题18

此外, 胃癌耐曲妥珠单抗的机制已经证明具有挑战性, 部分原因是难以获得可靠的临床前模型代表这种情况。大岛et . 报告了一个体内选择方法的曲妥珠单抗抗胃癌细胞系, 包括重复培养的小残留腹膜转移治疗后,曲妥珠单抗19。然而, 需要一个围栏, 特定的动物处理专门知识, 并批准动物伦理委员会作出贡献, 使其成为一个耗时和成本昂贵的方法。我们在这项工作中描述的方法是简单和广泛适用的, 可以很容易地扩展到对其他治疗药物在不同的肿瘤 histotypes20的抗性机制的研究。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

注: 本议定书已作了具体调整, 以分析对她阳性胃癌细胞株曲妥珠单抗的抗性机制。在材料表中报告所需的所有实验室仪器。

1. 有针对性的抗 Subclones 治疗的产生

注意: 这是最关键和难以标准化的步骤在协议中, 由于不同的细胞线可能表现出不同的敏感性对靶向治疗抑制剂独立于其肿瘤 histotype 或药物浓度使用.

  1. 培养 NCI-N87 细胞系在 RPMI 培养基中补充胎小牛血清 (10%) 和谷氨酰胺 (2 毫米, 1%), 作为单层在37°c, 并种子它到25厘米2培养瓶。
  2. 添加到每瓶10µg/毫升曲妥珠单抗的培养基作为起始剂量。将细胞暴露到起始剂量, 直到它们恢复生长。
    注: 靶向治疗抑制剂的起始剂量应低于其血浆峰值浓度的10倍。血浆峰值浓度是在患者血液中检测到的药物浓度的最高水平, 通常遵循多剂量标准疗法。这个值可以从药代动力学的研究中检索出来。
  3. 用台盼蓝排除法监测细胞生长;当细胞生长恢复时 (通常在三周的时间内), 将细胞暴露在更高剂量浓度的曲妥珠单抗。
  4. 将细胞暴露在逐渐增加的曲妥珠单抗剂量 (从100µg/毫升到400µg/毫升), 直到细胞持续生长 (大约2周), 尽管存在着高浓度的药物 (至少 2.5-4 倍高于血浆峰值)。
  5. 执行克隆分析, 以评估目标治疗抑制剂在培养基中浓度的每一次变化对靶向治疗的抗药性水平, 并定义相对电阻 ic50索引 (RR ic50), 如下所示。
    1. 种子500细胞在24多井培养板材。
      注: 每个条件设置必须准备5口井。
    2. 暴露细胞以增加目标治疗抑制剂 (曲妥珠单抗) 浓度从100µg/毫升多达400µg/毫升。
    3. 在 CO2孵化器中孵化出15天37摄氏度的细胞。
    4. 孵化后, 修复和染色样品如下。
      1. 去除培养基和冲洗细胞与10毫升 1x PBS。去除 1x PBS 和添加 2-3 毫升的固定溶液 (乙酸: 甲醇, 1:7, (卷/卷))。取出固定液, 加入0.5% 晶紫溶液。室温孵育2小时
      2. 用吸管吸吸并浸泡在自来水中, 冲洗掉任何结晶紫溶液残渣, 小心地去除水晶紫溶液。在室温下风干2天。
    5. 使用倒置显微镜 (4X 放大倍数) 计数超过50个细胞的菌落数。
      注: 为此需要两名独立观察员。
    6. 将 RR ic50计算为目标抗治疗亚克隆细胞的 IC 50 值与原始/天真细胞的值之间的比值.

2. 候选靶向治疗抗性基因 (R 基因) 的验证协议

注: 在基因表达的特征后, 与目标治疗的后天抗性和任何候选基因作为抵抗的驱动因素相关的签名将被调查通过: a) rt-pcr, 和 b) 西方印迹分析。

  1. 实时 rt-pcr
    1. 用酸性胍硫氰酸盐-苯酚-氯仿混合物提取细胞系中的总 RNA (请参阅材料表)。
    2. 使用随机水溶液引物进行反向转录 (RT) 反应, 并设置热循环仪如下: 在25摄氏度启动5分钟, rt 46 摄氏度20分钟, rt 钝化95摄氏度为1分钟。
    3. 使用 400 ng 总 RNA 的20µL 反应。准备样品的反应混合物如下: 7 µL RNase 免费 H2O, 2 µL cDNA (10 ng/µL), 1 µL 20x 荧光标记目标特定探针, 10 µL 2x 混合包含缓冲, dNTPs 和 DNA 聚合酶 (见材料表)。
    4. 将反应混合物的20µL 添加到每个井板上, 然后运行以下程序: 保持阶段在50°c 为2分钟, 在95°c 为10分钟 (1 个周期);然后40个周期在95°c 为十五年代和在60°c 为1分钟。
  2. 西部污点
    1. 通过加入2毫升0.05% 胰蛋白酶/EDTA 溶液来恢复细胞悬浮, 并允许胰蛋白酶工作 2-3 分钟。
    2. 添加2个含有10% 胎牛血清的培养基, 以中和胰蛋白酶 (例如, 每1毫升胰蛋白酶的2毫升培养基) 和离心机在 1200 x g 处为5分钟. 弃上清和洗涤细胞与冷 1x PBS。
    3. 离心机在 1200 x g 5 分钟, 并丢弃上清。并用重悬细胞颗粒与溶解缓冲和孵育在一个摇杆在4°c 30 分钟。
      1. 溶解缓冲量取决于单元格数 (例如, 100 µL 为 1 x 106单元格);每次都要准备新鲜的溶解缓冲液。1毫升的裂解缓冲准备 (在冰上留下): 使用975µL M 每哺乳动物裂解缓冲液, 15 µL 蛋白酶和磷酸酶抑制剂, 10 µL 100 µM PMSF 抑制剂。
    4. 用细胞裂解离心法回收上清蛋白, 在 1.3万 x g 处4摄氏度, 15 分钟。
    5. 使用一项蛋白质测定法确定蛋白质浓度。
    6. 添加 4x LaemmLi 样本缓冲区到蛋白质样品 (至少 20-30 µg 蛋白质) 和热量在100°c 3 分钟。
    7. 使用预制 4-20% 凝胶和负载 20-30 µg 的 LaemmLi 蛋白溶液和 5-10 µL 蛋白质标准每样。
    8. 用三/GLICYNE/SDS 1x 缓冲器填充西部印迹环, 并在110伏处运行凝胶, 30-60 分钟 (当时间停止检查染料已达到凝胶的末端, 否则再运行几分钟)
    9. Electroblot 使用半干燥系统将蛋白质转移到 PVDF 膜 (参见材料表)。
    10. 在室温下的振动筛中浸泡适当的蛋白质溶液 (牛奶/BSA 5%), 以1小时的温度阻挡膜。
    11. 在5% 牛奶溶液中用 anti-IQGAP1 原抗体制作1:400 溶液 (参见材料表)。
    12. 一夜之间将细胞膜放在一个冷室的振动筛上。
    13. 第二天, 放弃抗体溶液, 浸泡在 t-tbs 1x 溶液 (1x t-tb: 1x 三盐缓冲 Tween20 0.1%) 在室温下的振动筛7分钟。
    14. 丢弃 T-tb 1x 解决方案并更换。重复3次。
    15. 为标准的西方印迹检测添加抗体, 制作1:10,000 次小鼠抗体溶液 (参见材料表) 并将膜放在振动筛上;在室温下离开2小时。
    16. 丢弃抗体溶液, 在室温下的振动筛中浸泡7分钟的 T-TBS 1x 溶液。
    17. 丢弃 T-tb 1x 解决方案并更换。重复3次。
    18. 在化学发光溶液中浸泡5分钟的膜, 并将膜成像在化学发光成像仪上。

3. 候选 R 基因击倒法恢复靶向治疗抑制剂敏感性

  1. 细胞制剂
    1. 用 trypsinization 制备单细胞悬浮液。在细胞被镀的当天进行转染。
      1. 用 PBS 冲洗 NCI-N87 细胞, 在37°c 处孵育0.05% 胰蛋白酶/EDTA 溶液, 5-10 分钟. 添加2容量的 RPMI 培养基, 含10% 胎牛血清, 以中和胰蛋白酶 (例如, 2 毫升培养基为每1毫升胰蛋白酶)。
      2. 用台盼蓝染色 hemocytometer 细胞计数。种子 2.5 x 105单元 (60% 汇合) 到 T25 cm2烧瓶为每个条件。
        注: 适当数量的播种细胞是由细胞系的加倍时间和实验的持续时间决定的。目的是在实验的整个持续时间内实现目标基因的击倒。九 T25 cm2烧瓶是理想的转染条件和克隆检测 (3 个烧瓶的控制, 3 烧瓶负转染控制, 3 烧瓶基因靶向转染)。
  2. 反向转染
    1. 为每个 T25 cm2烧瓶准备基因靶和阴性对照转染组合, 如下所示。
      1. 稀释12.5 µL 的每个基因靶向 siRNA 寡核苷酸或负控制 siRNA 寡核苷酸在极小的必要的转染培养基 (比率 1:55; 请参阅材料表)。
      2. 添加阳离子脂质体转染试剂 (1:1 与基因靶向 siRNA 寡核苷酸的比值; 请参阅材料表)。室温孵育20分钟。
        注: 转染混合料总容积为700µL。
      3. 将转染混合的700µL 添加到每个 T25 cm2烧瓶中。孵育细胞在37°c 1-3 天。
    2. 通过 rt-pcr 和印迹分析验证基因击倒。通过菌落形成实验, 对所假定的 R 基因击倒对靶向治疗剂敏感性恢复的影响进行双重检查 (重复步骤 1.5)。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

图 1概述了实验过程的框架。三株胃癌细胞线表达高水平的 HER2 和敏感的曲妥珠单抗 (IC 50 < 峰值血浆水平的药物,图 2A, 左图) 是种植培养基中含有靶向治疗剂。10倍的剂量低于峰值血浆浓度的曲妥珠单抗 (10 µg/毫升) 被设置为起始剂量, 并逐渐增加到400µg/毫升在 8-12 月的时间。之后, 我们获得了三 subclones 的特点是稳定的阻力表型与 IC50值低于峰值等离子水平的曲妥珠单抗(图 2A, 右图)。特别是, 最耐药性的亚克隆, HR N87, 达到 RR IC 50 值 28.57 ( 2B)。IQGAP1 似乎在 HR N87 亚线的抗性表型中起着举足轻重的作用。蛋白质和基因表达的分析支持这个假说: IQGAP1 蛋白水平在抵抗亚克隆是大约5倍高于在父母细胞。类似地, IQGAP1 基因的表达在 HR N87 亚线上比 N87 线 (图 3A) 高2.5 倍。

IQGAP1基因沉默是为了评估其在曲妥珠单抗抗性表型发展中的作用。用于沉默 IQGAP1 基因表达的协议特别有效, 可以在 T25 cm2细胞培养瓶 (大约 2.5 x 105单元格) 中的几乎所有生长的细胞中 IQGAP1 蛋白质含量 (图 3A)。

此外, 克隆化验证实了工作假说, 表明 IQGAP1 基因沉默恢复曲妥珠单抗敏感性的 HR N87 细胞, 这证明通过降低IC 50 值为7µg/毫升(图 3B)。

Figure 1
图 1:的框架在体外分析所获得的靶向治疗抗性的机制.三 subclones 不同的曲妥珠单抗敏感癌细胞系产生的不同的曲妥珠单抗耐药性, 其特点是由下一代测序、免疫组化、西方印迹和 rt-pcr 技术。所有 subclones 显示出不同的阻力机制。靶向治疗敏感性恢复了特定的亚克隆时, 候选驱动基因的抵抗被沉默。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2: 通过克隆测定胃癌细胞系中的相对电阻 ic50指数 (RR ic50)。() 生长曲线数据为天真 (左图) 和抗 (右图) 细胞线产生的菌落形成实验.x 轴表示曲妥珠单抗浓度。误差线表示标准偏差 (SD)。标准偏差从未超过5%。(B) 支持生成 NCI-N87-resistant 亚克隆的克隆检测的代表性图像。如时间线所示, HR 曲妥珠单抗 N87 细胞的产生需要12月的持续接触靶向剂。这个数字是根据 Arienti 的工作而改编的. et9请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 3
图 3: 通过 IQGAP1 基因击倒恢复曲妥珠单抗灵敏度。(A) IQGAP1 蛋白质含量, 通过密度分析显示在条形图中, 在父母的 N87 线, 以及在其抗和抗压制亚克隆 (左图)。用 rt-pcr 技术 (右图) 验证了三条细胞系的 mRNA IQGAP1 表达水平。数据显示为平均值. (B) 克隆分析显示, 父母 N87 线及其抗和抗沉默亚克隆对100µg/毫升曲妥珠单抗的敏感性不同。在14天的细胞种子之后, 蜂群被计数。缩略图显示有代表性的殖民地文化。这个数字是根据 Arienti 的工作而改编的. et9请单击此处查看此图的较大版本.

步骤 协议 T25 cm2
种子细胞60% 汇合 附着细胞 1.75 x 103
稀释 siRNA 寡核苷酸在极小的必要的转染介质 (比率 1:55) sirna 12.5 µL
转染介质 687.5 µL
添加脂质体转染试剂 脂质体试剂 12.5 µL
孵育 室温孵育20分钟
将混合物添加到单元格中 孵育细胞在37°c 为 1-3 d

表 1: 推荐的试剂数量和容量为候选抗性基因击倒。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

虽然个性化和有针对性的治疗已经引起了越来越多的热情, 这些所谓的 "聪明" 疗法面临着与传统化疗药物相同的主要障碍,, 快速和不可预知的药物耐药性的获取。为了提高靶向治疗的效果, 必须通过更好地了解导致药物耐药性的机制来解决抗药性问题。在这里, 我们提出了一个广泛的可访问的体外方法来研究肿瘤细胞系模型中靶向治疗药物的后天抗性机制。

由于细胞系间的固有遗传异质性, 以及不同程度的药物敏感度, subclones 靶向抗性药物的生成是本协议中最关键、最难标准化的一步。由于这些原因, 获得耐药性 subclones 所需的时间可能会有所不同。慢性接触抗癌分子剂通常会导致强烈的肿瘤生长抑制。然而, 在连续药物暴露的可变期 (8-12 月) 后, 细胞恢复生长的速度与未经处理的控制细胞的速率相似。

此外, 尽管基因表达数据被用来推测基因相关的靶向治疗的抗药性, 但不同的表达水平并不总是反映不正确的蛋白质功能或与抵抗表型相关。由于假定耐药性基因的表达与对靶向治疗的抗药性之间的关系复杂, 需要进一步的分子调查, 如生物信息学分析, 包括基因/蛋白质相互作用, 生物过程浓缩和分子建模。

另一个关键点可能是 siRNA 寡核苷酸的特异性和准确性, 以减少目标表达。一个可能的解决方案可能是使用设计工具来选择功能 siRNA, 以及 siRNA 与同一目标基因的混合。

最后, 由于转染的瞬变持续时间, 对靶向治疗抑制剂的灵敏度恢复的方法有很小的局限性。在2天后转染后, 报告了目标 mRNA (> 85%) 的最大击倒, 并维持 > 80% 天 5-7。6天仍有明显的击倒, 尽管程度较小。因此, 验证药物敏感性恢复的细胞毒性试验应在5天内从基因沉默中进行。

我们的协议是一种时间和经济高效的方法来调查体外获得的电阻。生成抗 subclones, 镜像肿瘤细胞内的异质性, 可以帮助揭示新的机制, 获得抗肿瘤靶向剂。特别是, 它们更适合于高通量基因组或蛋白谱筛查, 以识别抗性细胞的分子变化, 而不是它们敏感的对应物。

这一临床前平台可以很容易地扩展, 以调查在不同的肿瘤 histotypes 靶向治疗药物的一般抗性机制, 提供了一个标准程序, 以发现进一步的药物目标, 以克服抗药性。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

作者希望感谢维罗妮卡 Zanoni 博士编辑手稿。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Trizol Reagent Invitrogen 15596026 TRIzol Reagent is a reagent for isolating high-quality total RNA or simultaneously isolating RNA, DNA, and protein from a variety of biological samples
ISCRIPT CDNA SYNTHESIS KIT Bio-Rad 1708891 The iScript cDNA synthesis kit is a sensitive and easy-to-use first-strand cDNA synthesis kit for gene expression analysis using real-time qPCR.
TaqMan gene expression assay Life Technologies 4331182 Applied Biosystems TaqMan Gene Expression Assays consist of a pair of unlabeled PCR primers and a TaqMan probe with an Applied Biosystems FAM or VIC dye label on the 5’ end and minor groove binder (MGB) and nonfluorescent quencher (NFQ) on the 3’ end.
M-PER Mammalian Protein Extraction Reagent Thermo Scientific 78501 Thermo Scientific M-PER Mammalian Protein Extraction Reagent is designed to provide highly efficient total soluble protein extraction from cultured mammalian cells.
Halt Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail (100X) Thermo Scientific 78440 Thermo Scientific Halt Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail (100X) provides the convenience of a single solution with full protein sample protection for cell and tissue lysates.
Pierce BCA Protein Assay Kit Thermo Scientific 23225 The Thermo Scientific Pierce BCA Protein Assay Kit is a two-component, high-precision, detergent-compatible assay reagent set to measure (A562nm) total protein concentration compared to a protein standard.
4x Laemmli Sample Buffer Bio-Rad 1610747 Use 4x Laemmli Sample Buffer for preparation of samples for SDS PAGE. For reduction of samples, add a reducing agent such as 2-mercaptoethanol to the buffer prior to mixing with the sample.
4–20% Mini-PROTEAN TGX Precast Protein Gels Bio-Rad 456-1094 Long-life TGX (Tris-Glycine eXtended) Gels have a novel formulation and can be used for both standard denaturing protein separations as well as native electrophoresis.
Precision Plus Protein WesternC Blotting Standards Bio-Rad 1610376 Precision Plus Protein Prestained Standards are available in Dual Color, All Blue, Kaleidoscope, and Dual Xtra formats. All four have the same gel migration patterns, with 3 high-intensity reference bands (25, 50, and 75 kD).
10x Tris/Glycine/SDS Bio-Rad 1610732 10x Tris/glycine/SDS is a premixed running buffer for separating protein samples by SDS-PAGE.
Trans-Blot Turbo Mini PVDF Transfer Packs Bio-Rad 1704156 Trans-Blot Turbo Mini PVDF Transfer Packs for fast, efficient transfer of proteins from mini gels using the Trans-Blot Turbo Transfer System. Each vacuum sealed, ready-to-use transfer pack contains two buffer-saturated ion reservoir stacks and a prewetted PVDF membrane.
Precision Protein StrepTactin-HRP Conjugate Bio-Rad 1610381 StrepTactin-Horseradish Peroxidase (HRP) Conjugate for chemiluminescent or colorimetric detection of Precision Plus Protein Unstained Protein Standards or Precision Plus Protein WesternC Protein Standards on western blots.
Immun-Star WesternC solution Bio-Rad 5572 Immun-Star WesternC solution, a method of protein detection , detects mid-femtogram amounts of protein.
Universal Negative Control Invitrogen 12935300 Negative Control siRNA has no significant sequence similarity to mouse, rat, or human gene sequences. The control has also been tested in cell-based screens and proven to have no significant effect on cell proliferation, viability, or morphology.
opti-MEM Glutamax Medium Thermo Fisher Scientific 51985026 Opti-MEM Medium is an improved Minimal Essential Medium (MEM) that allows for a reduction of Fetal Bovine Serum supplementation by at least 50% with no change in growth rate or morphology.
Silencer Select Pre-Designed & Validated siRNA Ambion 4390824 RNA interference (RNAi) is the best way to effectively knock down gene expression to study protein function in a wide range of cell types.
Lipofectamine RNAiMAX Transfection Reagent Invitrogen 13778075 Lipofectamine RNAiMAX Transfection Reagent offers an advanced, efficient solution for siRNA delivery. No other siRNA specific transfection reagent provides such easy and efficient siRNA delivery in a wide variety of cell lines including common cell types, stem cells and primary cells, as well as traditionally hard-to-transfect cell types.
Mouse anti-IQGAP1 Invitrigen 33-8900 working concentration: 1:400 in 5% milk solution
goat anti-mouse IgG-HRP: sc-2005 Santa Cruz sc-2005 working concentration: 1:10000 in 5% milk solution
PMSF Sigma Aldrich P 7626 this is an inhibitor of serine proteases and acetylcholinesterase
Thermocycler for RT-PCR MJ Research MJ Research PTC-200 Thermal Cycler it allows temperature homogeneity and a ramping speed of up to 3°C/sec. The protocol can be performed also with other thermalcyclers
Real Time RT-PCR instrument Applied Biosystems 7500 RT-PCR system This is a five-color platform that uses fluorescence-based polymerase chain reaction (PCR) reagents to provide a relative quantification using comparative CT assay type. The protocol can be performed also with other thermalcyclers
Microvolume Spectrophotometers Thermo Scientific Nanodrop It provides an accurate and fast acid nucleid measurement using little volume of sample
Blotting system Bio-Rad Trans-Blot Turbo system It perfoms a semy-dry transfer in a few minutes
Image acquisition system and gel documentation Bio-Rad Chemidoc image system It is easy to use for chemiluminescent detection

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Gerber, D. E. Targeted therapies: a new generation of cancer treatments. Am Fam Physician. 77 (3), 311-319 (2008).
  2. Zhang, J., Yang, P. L., Gray, N. S. Targeting cancer with small molecule kinase inhibitors. Nat Rev Cancer. 9 (1), 28-39 (2009).
  3. Nelson, A. L., Dhimolea, E., Reichert, J. M. Development trends for human monoclonal antibody therapeutics. Nat Rev Drug Discov. 9 (10), 767-774 (2010).
  4. Chabner, B. A., Roberts, T. G. Timeline: Chemotherapy and the war on cancer. Nat Rev Cancer. 5 (1), 65-72 (2005).
  5. Gilbert, L. A., Hemann, M. T. Chemotherapeutic resistance: surviving stressful situations. Cancer Res. 71 (15), 5062-5066 (2011).
  6. Izar, B., Rotow, J., Gainor, J., Clark, J., Chabner, B. Pharmacokinetics, clinical indications, and resistance mechanisms in molecular targeted therapies in cancer. Pharmacol Rev. 65, 1351-1395 (2013).
  7. Ellis, L. M., Hicklin, D. J. Resistance to Targeted Therapies: Refining Anticancer Therapy in the Era of Molecular Oncology. Clin Cancer Res. 15 (24), 7471-7478 (2009).
  8. Asić, K. Dominant mechanisms of primary resistance differ from dominant mechanisms of secondary resistance to targeted therapies. Crit Rev Oncol Hematol. 97, 178-196 (2016).
  9. Arienti, C., et al. Preclinical evidence of multiple mechanisms underlying trastuzumab resistance in gastric cancer. Oncotarget. 7 (14), 18424-18439 (2016).
  10. Tanner, M., et al. Amplification of HER-2 in gastric carcinoma: association with Topoisomerase IIalpha gene amplification, intestinal type, poor prognosis and sensitivity to trastuzumab. Ann Oncol. 16 (2), 273-278 (2005).
  11. Bang, Y. J., et al. Trastuzumab in combination with chemotherapy versus chemotherapy alone for treatment of HER2-positive advanced gastric or gastro-oesophageal junction cancer (ToGA): a phase 3, open-label, randomised controlled trial. Lancet. 376 (9742), 687-697 (2010).
  12. ClinicalTrials.gov. Identifier NCT01130337. A Study of Capecitabine [Xeloda] in Combination With Trastuzumab [Herceptin] and Oxaliplatine in Patients With Resectable Gastric Cancer. , Available from: http://clinicaltrials.gov/show/NCT01130337 (2017).
  13. ClinicalTrials.gov. Identifier NCT01748773. A Study of the Combination of Oxaliplatin, Capecitabine and Herceptin (Trastuzumab) and Chemoradiotherapy in The Adjuvant Setting in Operated Patients With HER2+ Gastric or Gastro-Esophageal Junction Cancer (TOXAG Study). , Available from: http://www.clinicaltrials.gov/show/NCT01748773 (2017).
  14. ClinicalTrials.gov. Identifier NCT01472029. Explorative Phase II Study of Perioperative Treatment in Patients With Adenocarcinoma of the Gastroesophageal Junction or Stomach (HerFLOT). , Available from: http://www.clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT01472029 (2017).
  15. ClinicalTrials.gov. Identifier NCT01196390. Radiation Therapy, Paclitaxel, and Carboplatin With or Without Trastuzumab in Treating Patients With Esophageal Cancer. , Available from: http://clinicaltrials.gov/show/NCT01196390 (2017).
  16. Shimoyama, S. Unraveling trastuzumab and lapatinib inefficiency in gastric cancer: Future steps (Review). Mol Clin Oncol. 2 (2), 175-181 (2014).
  17. Kelly, C. M., Janjigian, Y. Y. The genomics and therapeutics of HER2-positive gastric cancer-from trastuzumab and beyond. J Gastrointest Oncol. 7 (5), 750-762 (2016).
  18. Wong, S. S., et al. Genomic landscape and genetic heterogeneity in gastric adenocarcinoma revealed by whole-genome sequencing. Nat Commun. 5, 5477 (2014).
  19. Oshima, Y., et al. Lapatinib sensitivities of two novel trastuzumab-resistant HER2 gene-amplified gastric cancer cell lines. Gastric Cancer. 17 (3), 450-462 (2014).
  20. Pignatta, S., et al. Prolonged exposure to (R)-bicalutamide generates a LNCaP subclone with alteration of mitochondrial genome. Mol Cell Endocrinol. 382 (1), 314-324 (2014).

Tags

癌症生物学 问题 130,体外模型 克隆检测 靶向治疗 耐药性 再敏化 siRNA 转染
寻找获得性抗靶治疗的驱动途径: 耐药亚克隆生成与基因击倒敏感性恢复
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Arienti, C., Pignatta, S., Zanoni,More

Arienti, C., Pignatta, S., Zanoni, M., Cortesi, M., Zamagni, A., Piccinini, F., Tesei, A. Looking for Driver Pathways of Acquired Resistance to Targeted Therapy: Drug Resistant Subclone Generation and Sensitivity Restoring by Gene Knock-down. J. Vis. Exp. (130), e56583, doi:10.3791/56583 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter