Summary
يصف هذا البروتوكول تقنية لتصوير مجموعات الخلايا المختلفة في استنزاف الغدد الليمفاوية دون تعديلات في بنية الجهاز.
Abstract
العقد الليمفاوية (LNs) هي أجهزة منتشرة داخل الجسم، حيث يمكن للاستجابات المناعية الفطرية الاتصال مع المناعة التكيفية. في الواقع، يتم تداخل النفثالينات بشكل استراتيجي في مسار الأوعية اللمفاوية، مما يسمح بالاتصال الحميم لمستضدات الأنسجة مع جميع الخلايا المناعية المقيمة في LN. وهكذا, فهم التكوين الخلوي, توزيع, الموقع والتفاعل باستخدام خارج الجسم الحي كله LN التصوير سوف تضيف إلى المعرفة حول كيفية تنسيق الجسم الاستجابات المناعية المحلية والنظامية. يُظهر هذا البروتوكول استراتيجية تصوير في الجسم الحي بعد إدارة في الجسم الحي للأجسام المضادة التي تحمل علامة الفلورسنت وتسمح بمنهجية قابلة للاستنساخ وسهلة الأداء باستخدام المجاهر البؤرية التقليدية وكواشف الأسهم. من خلال الحقن تحت الجلد من الأجسام المضادة، فمن الممكن تسمية مجموعات الخلايا المختلفة في استنزاف النفثالينات دون التأثير على هياكل الأنسجة التي يمكن أن تتضرر من قبل تقنية الفحص المجهري المناعي التقليدية.
Introduction
العقد الليمفاوية (LNs) هي أجهزة على شكل فراغ موجودة على نطاق واسع في جميع أنحاء الجسم مع وظيفة حاسمة من سد الاستجابات المناعية الفطرية والتكيفية. LNs تصفية الليمفاوية من أجل تحديد الجسيمات الأجنبية والخلايا السرطانية لتركيب استجابة مناعية ضدهم1. مستضد تقديم الخلايا (APCs), الخلايا T والخلايا B تعمل جنبا إلى جنب لتوليد الأجسام المضادة الخاصة بالمستضد (الحصانة الفكاهية) والخلايا الليمفاوية السامة للخلايا (الحصانة الخلوية) للقضاء على الجسيمات الأجنبية والخلايا السرطانية2. وبالتالي، فإن فهم ديناميات الخلايا المناعية الموجودة في الجهاز اللمفاوي سيكون له آثار هامة على تطوير اللقاح والعلاج المناعي للسرطان.
وقد سمح ظهور المجاهر القوية - بما في ذلك المجاهر الجديدة ذات البؤرة وفائقة الدقة - بتقدم غير عادي في فهم كيفية عمل مختلف مجموعات الخلايا المناعية في بيئتها الأصلية3. فمن الممكن الآن لتصوير العديد من الأنواع الفرعية الخلية في وقت واحد باستخدام مزيج من تحقيقات مع الفئران المعدلة وراثيا التي تعبر عن البروتينات الفلورية تحت السيطرة على أهداف محددة4،5. في الواقع، كانت التقنيات عالية الأبعاد، بما في ذلك قياس الخلايا الشامل وتحليل التدفق متعدد البارامترية حاسمة لتوسيع معرفتنا حول تجزئة الخلايا المناعية المختلفة والوظائف في الصحة والمرض6، 7.ومع ذلك، لإعداد عينات لهذه التقنيات، والأنسجة تحتاج إلى الهضم ويتم فصل الخلايا من محيطها الطبيعي لتحليلها في تعليق الخلايا. لتجاوز هذه القيود والسماح بترجمة أفضل في علم الأحياء، والهدف من البروتوكول المقترح هنا هو تطبيق منهجية واضحة لصورة العقد الليمفاوية في الجسم الحي كله باستخدام المجاهر البؤر ية الأسهم مع الاستفادة من تحسين السرعة والأنسجة الحفاظ على هيكل، وجدوى الخلية بالمقارنة مع تلطيخ المناعية التقليدية. باستخدام هذا النهج، كنا قادرين على إظهار أن الفئران ناقصة لخلايا T γδ، وهونوع فرعي من الخلايا الليمفاوية T المشاركة في الدفاع المبكر المضيف ضد مسببات الأمراض 4، قد عرضت للخطر بصيلات ومناطق الخلايا T بالمقارنة مع الفئران من النوع البري. هذه النتائج سمحت لنا لمتابعة دراسة التي أظهرنا أن الخلايا T γδ تلعب دورا حاسما في التوازن من الأجهزة اللمفاوية والاستجابة المناعية الفكاهية4. وعلاوة على ذلك، يوفر هذا البروتوكول مساراً فيزيولوجيا للتحقيقات والأجسام المضادة للوصول إلى العقدة الليمفاوية، حيث أنها تدار تحت الجلد وتتبدد من خلال الدورة الدموية اللمفاوية للأنسجة، استناداً إلى التقارير السابقة التي استخدمت في وضع العلامات في الموقع مع الأجسام المضادة لتصور الهياكل المرتبطة اللمفاوية8،9، ديناميات مركز الإنبات10،11،12، وأهداف يمكن الوصول إليها بسهولة لتدفق الدم13 ،14،15.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
تمت الموافقة على البروتوكول من قبل اللجنة الدائمة المعنية بالحيوانات في كلية الطب بجامعة هارفارد ومستشفى بريغام ومستشفى النساء، بروتوكول 2016N000230.
1- الفئران المستخدمة في التجربة
- استخدام 8 أسابيع من الذكور والإناث الفئران على خلفية B6 لإدارة مزيج الأجسام المضادة.
- استخدام CX3CR1GFP/WTCCR2RFP/WT الفئران لتحديد ما إذا كان يمكن أيضا تطبيق التصوير LN كامل الجسم السابق على الفئران مراسل دون إدارة مزيج الأجسام المضادة وكذلك للتحقيق في وجود الخلايا أحادية النواة، بما في ذلك تقديم مستضد الخلايا والخلايا الفيغاسية، وتوزيعها في LN.
ملاحظة: CX3CR1GFP/WTCCR2RFP/WT الفئران مراسل لديها بروتين الفلورسنت الأخضر (GFP) والبروتين الفلورسنت الأحمر (RFP) إدراجها تحت سيطرة المروجين CX3CR1 و CCR2، على التوالي. يمكن استخدام الفئران مراسل مع أو بدون حقن مزيج الأجسام المضادة. يرجى الاطلاع على المرجع4 لحقن مزيج الأجسام المضادة في الماوس مراسل. انتقل إلى الجراحة إذا لم يتم حقن أي جسم مضاد.
2. الأجسام المضادة مزيج التحضير والحقن
ملاحظة: تنفيذ هذه الخطوات على الفئران الموضحة في الخطوة 1.1.
- تخفيف 1:10 من البنفسج اللامع (BV) 421 المضادة للقرص الرابع (GK1.5; 0.2 ملغم/ملاغ/ مل)، 1:10 من الأزرق اللامع (BB) 515 المضادة CD19 (1D3؛ 0.2 ملغ /مل) و 1:20 من phycoerythrin (PE) المضادة لF4/80 (T45-2342؛ 0.2 ملغ / مل) في PBS مع الحجم النهائي المناسب لحقن في الفخذ الداخلي (إلى الفخذ صورة inguinal) أو في وسادة مخلب (لصورة popliteal) الليمفاوية.
ملاحظة: استخدام كأنواع isotypes: BV421 الماوس IgG2b، ك التحكم Isotype (R35-38؛ 0.2 ملغ / مل)؛ PE Rat IgG2a, י Isotype Control (R35-95; 0.2 mg/mL); BB515 Rat IgG2a, י Isotype Control (R35-95; 0.2 mg/mL). في حالة تغيير الجسم المضاد تلطيخ، استخدم isotype الصحيح. - إلى صورة LN الأربية، حقن 100 درجة مئوية من مزيج الأجسام المضادة تحت الجلد في الفخذ الداخلي (الشكل1A). بدلا من ذلك، حقن 50 ميكرولتر تحت الجلد من مزيج الأجسام المضادة في وسادة مخلب لصورة LN popliteal (الشكل2A). استخدام حساسة 1 مل حقن الأنسولين، (الأنسولين U-100) مع إبرة من حجم 0.30 مم × 13 ملم (30 مقياس × 1/2 بوصة).
ملاحظة: تأكد من أن حقن تلطيخ LN الأربية تحت الجلد وليس العضل (أي م)، كما لن يتم استنزاف مزيج الأجسام المضادة بشكل صحيح إذا تم تنفيذ إدارة i.m. . - لا تُدّس الحيوانات قبل حقن مزيج الأجسام المضادة.
- انتظر ما لا يقل عن 3 ح (dLN الأربية) و 12 ساعة (dLN popliteal) حقن آخر لإزالة الأعضاء.
- إذا لم يتم ملاحظة تسمية الخلايا LN تماما باستخدام الأصباغ الفلورية البوليمر كبيرة مثل البنفسجي اللامع أو الأزرق اللامع، واستخدام الفلوروفورالأصغر، بما في ذلك الفلورسين إيزوثيوسيانات (FITC)، PE وallophycocyanin (APC) كبديل.
3. إجراء جراحة لإزالة العقدة الليمفاوية استنزاف الأربية
- قتل الفئران باستخدام الاختناق CO2 تليها خلع عنق الرحم.
- تعطيل الفئران على خشبة المسرح الاكريليك مع شريط لاصق وتطبيق الزيوت المعدنية مع مسحة القطن على الجلد البطني لمنع ترسب الفراء حول الشق (الشكل1B). إزالة الفراء ليست ضرورية.
- إجراء شق خط الوسط باستخدام مقص الجراحة الدقيقة المنحنية (11.5 سم) وملقط الجراحة الدقيقة المنحنية (12.5 سم) في البطن من العانة إلى عملية xiphoid (الشكل1C).
- فصل عضلات البطن عن الجلد (الشكل1D).
- جعل الشقوق الجلدية الأفقية في الجزء العلوي والسفلي من خط الشق الرأسي لخلق اللوحات الجلد على جانب من الاهتمام (وفقا لجانب حقن مزيج الأجسام المضادة) ورفرف الجلد لتصور العقدة الليمفاوية (الشكل1E).
- شريط الجلد رفرف على لوحة الاكريليك (الشكل1F).
- إزالة العقدة الليمفاوية الاستنزاف الأربي باستخدام ملقط الجراحة الدقيقة المنحنية (الشكل1F). سوف تظهر العقدة الليمفاوية ككرة متحولة، وعادة ما تكون بيلوبولا، تحت الجلد.
4. إجراء عملية جراحية لإزالة العقدة الليمفاوية استنزاف popliteal
- قتل الفئران باستخدام الاختناق CO2 تليها خلع عنق الرحم.
- تعطيل الفئران في موقف عرضة على مرحلة الاكريليك مع شريط لاصق وتطبيق الزيوت المعدنية مع مسحة القطن في العجل والركبة (الشكل2A-D).
- إجراء شق خط الوسط في الساق من الكعب إلى الركبة (الشكل2E, F).
- فصل عضلات الساق عن الجلد (الشكل2F،G).
- فضح فوسا البوبليتيال (الشكل2G). سوف تظهر العقدة الليمفاوية البوبليتيك ككرة متحولة في الفوسا البوبليتيال.
- إزالة العقدة الليمفاوية popliteal باستخدام ملقط الجراحة الدقيقة المنحنية (الشكل2G).
- بدلا من ذلك، بدوره الماوس على موقف supine، والاقتراب من فوسا popliteal بين العضلة ذات الرأسين femoris وsemitendinosus لإزالة LN popliteal عن طريق إجراء شق خط الوسط في الساق من الكعب إلى الركبة تليها تفكك العجل العضلات من الجلد.
ملاحظة: فوسا البوبليتيال هو الاكتئاب الضحلة تقع في الجزء الخلفي من مفصل الركبة. فتح بعناية لرؤية العقدة الليمفاوية popliteal.
5. إعداد العقدة الليمفاوية
- ضع العضو كله في طبق ثقافة مع أسفل زجاجي (35 مم × 10 مم) وإزالة الدهون التي تحيط بالجهاز باستخدام ملقط الجراحة الدقيقة المنحنية (الشكل1G-I والشكل 2H).
- مركزية الجهاز في منتصف الطبق (الشكل1J والشكل 2H).
- تغطية الجهاز مع جزء من مساحات مهمة حساسة ويبقيه غارقة مع درجة حرارة الغرفة المالحة 0.9٪ أو الفوسفات العازلة الحل (الشكل1K-M والشكل 2H).
ملاحظة: ليس من الضروري غسل العقد الليمفاوية بعد الإزالة أو إجراء استخراج العقدة الليمفاوية في غطاء محرك السيارة.
6- الفحص المجهري البؤري (التصوير)
- وضع طبق بيتري في فتحة المجهر المقلوب (الشكل1N والشكل 2H).
- LNs صورة تحت المجهر البؤري (الشكل1O والشكل 2H).
- أولا، الحصول على التركيز الصحيح باستخدام الضوء التقليدي من المجهر البؤري مع 4X أو 10X الهدف. ثم تغيير من وظيفة الضوء إلى وضع الليزر.
ملاحظة: إذا كان المجهر البؤري لا يحتوي على هدف 4X، يمكن الحصول على التركيز بشكل مثالي باستخدام الهدف 10x. - ضبط قوة الليزر، والإزاحة وكسب باستخدام isotype ملطخة، غيرملطخة أو غير الفلورسنت عينة (الجدول 1) لإزالة autofluorescence وتلطيخ غير محددة من الأجسام المضادة الفلورية المسمى مثل تلك المستخدمة في الصور أظهرت في هذا مخطوطة (BV-421 المضادة CD4، BB515 المضادة CD19 وPE المضادة لF4/80).
- ضبط مواقف Z و XY، وذلك باستخدام micrometric وعربة، على التوالي، على منطقة الاهتمام في العقدة الليمفاوية.
- الحصول على صور تحت أهداف 4X و 10x و 20x مع التركيز على هيكل LN والتوزيع الخلوي. استخدم تعريف 1024 × 1024 بكسل.
ملاحظة: الحصول على ما لا يقل عن خمس صور في مجالات مختلفة لكل هدف لكل الحيوان. - تحليل الصور باستخدام برنامج صورة لفصل القنوات، وإضافة مقياس وألوان ذات أهمية، وإعادة بناء طريقة العرض ثلاثية الأبعاد.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
تُظهر هذه المخطوطة تقنيات لإزالة العقد الليمفاوية الأربية والبوغلية دون الإضرار بهيكلها بعد حقن الأجسام المضادة التي تحمل علامة الفلورسنت لوصم مجموعات خلايا محددة في هذه الأجهزة (الشكل 1 والشكل 2) ).
مزيج قوي من الوسم المناعي لخلايا LN مع BV421 المضادة CD4 و BB515 المضادة CD19 وتحليل التصوير البؤري تعريف توطين الخلايا T (CD4 +) و الخلايا B (CD19 +) في الشبكات الانبية وpopliteal LNs. في كلا الجهازين، كانت محاطة بصيلات الخلايا B من قبل السكان الخلية T (الشكل 3، الشكل 4 والفيديو 1)، وهي سمة مميزة للهيكل LN1. لاستبعاد إمكانية أن phagocytes بطانة الجيوب الأنفية اللمفاوية يمكن التقاط الأجسام المضادة الفلورسنت حقن وينتج عنها وضع علامات غير محددة من علامات الخلية، تم تضمين PE المضادة للF4/80 في مزيج الأجسام المضادة. كما هو مبين في الشكل 5، لم تدخيل الفيغسيتات الأجسام المضادة المحقونة ، مما يشير إلى أن تلطيخ الخلايا B و T كان محددا. وعلاوة على ذلك،يظهر الفيديو 1 أن تلطيخ الخلايا T و B لم تتداخل، مما يؤكد خصوصية تلطيخ.
للتحقيق في التوطين المكاني للخلايا أحادية النووية الفيوسيتية في LN، تم تصوير الشبكات الأنبية والبوبية من CX3CR1GFP/+ CCR2RFP/+ . تم العثور على الخلايا أحادية النووية في جميع أنحاء LN الأربية، بما في ذلك الجيوب الأنفية تحت القبعات. وكانت غالبية هذه الخلايا CX3CR1GFP/+، تليها CCR2RFP /+ والخلايا الإيجابية المزدوجة (الأصفر) (الشكل6A-F). وقد لوحظ نفس النمط من توزيع الخلايا والأنماط الظاهرية للخلايا في LN popliteal (الشكل7A-I). وأظهرت كل من الأنينات الأربية والبوبليتيال المناطق السوداء دون CX3CR1GFP /+ CCR2RFP /+، والتي تشغلها الخلايا الليمفاوية. وعلاوة على ذلك، كانت الخلايا CX3CR1+ وCCR2+ نادرة في المنطقة الداخلية من الشبكات المحلية وتركزت في المنطقة الخارجية، مما يشير إلى أن هذه الخلايا تحتل في المقام الأول الجيوب الأنفية تحت ية LN (الشكل6G-I و الشكل 7J-L). وهكذا، يمكن للبروتوكول المقترح أن يحدد بوضوح مجموعات الخلايا الرئيسية الموجودة في العقد الليمفاوية.
الشكل 1: إعداد العقدة الليمفاوية الأربية.
(أ) حقن تحت الجلد من FACS الجسم المضاد الرئيسي مزيج في الفخذ الداخلي. (B) 3 ح بعد الحقن، قتل الفأر، وتعطيل الماوس على لوحة الاكريليك مع شريط لاصق وتطبيق الزيوت المعدنية على الجلد البطني لمنع ترسب الفراء حول الشق. (ج) إجراء شق خط الوسط في البطن من العانة إلى عملية xiphoid. (د) فصل العضلات البطنية من الجلد والقيام رفرف الجلد. (E) الشريط الجلد رفرف على لوحة الاكريليك. (F) إزالة العقدة الليمفاوية الأربية باستخدام ملقط الجراحة الدقيقة المنحنية. (خ)(ع-H) وضع الجهاز في طبق الثقافة (G) وإزالة الدهون التي تحيط بالجهاز (H). (I) صورة توضيحية تظهر حجم الجهاز بعد التنظيف. J-M) مركزية الجهاز في منتصف طبق بيتري(J)، وتغطية الجهاز مع قطعة من مساحات مهمة حساسة (K) والحفاظ على غارقة مع الحارة 0.9٪ المالحة أو 1X PBS (L،M). (N) وضع طبق بيتري في فتحة المجهر. (O) مسح الجهاز. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2: إعداد العقدة الليمفاوية البوولايتية.
(ألف،باء) حقن تحت الجلد من FACS الأجسام المضادة الرئيسية مزيج في وسادة مخلب. (C,D) 3 ح بعد الحقن، قتل الفأر، تعطيل الماوس علىلوحة الاكريليك مع شريط لاصق (C) وتطبيق الزيوت المعدنية على الجلد البطني لمنع ترسب الفراء حول الشق (D). (E) إجراء شق خط الوسط في الساق من الكعب إلى الركبة. (F) فضح الفوسا البوبليتيال. (G) إزالة العقدة الليمفاوية popliteal باستخدام ملقط الجراحة الدقيقة المنحنية. (H) ضع الجهاز في طبق بيتري وإزالة الدهون التي تحيط بالجهاز، ومركزية الجهاز في منتصف طبق بيتري، وتغطية الجهاز مع قطعة من مساحات مهمة حساسة والحفاظ على غارقة مع المالحة الدافئة 0.9٪ أو 1X PBS. وضع طبق بيتري في فتحة المجهر وتفحص الجهاز. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 3: الصور المجهرية التمثيلية البؤرية للالعقد الليمفاوية الأربية الكاملة للفئران الساذجة غير المحصنة.
(A-C) كانت خلايا LN B و T ملطخة باستخدام CD4 (الأخضر; الخلايا T) وCD19 (الأحمر; B الخلايا)؛ مقياس شريط = 50 ميكرومتر. (د-1) تضخيم منطقة محددة مع هدف 10X؛ مقياس شريط = 30 ميكرومتر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 4: الصور المجهرية التمثيلية البؤرية للالعقد الليمفاوية البوبليتية الكاملة للفئران الساذجة غير المحصنة.
(A-C) كانت خلايا LN B و T ملطخة باستخدام CD4 (الأخضر; الخلايا T) وCD19 (الأحمر; B الخلايا)؛ مقياس شريط = 60 ميكرومتر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 5: صور مجهرية تمثيلية للعقدة الليمفاوية الأربية الكاملة للفئران الساذجة غير المحصنة التي تظهر الخلايا الفيغاسية.
(A-C) تم تلوين LN B والخلايا الفيوسيتية باستخدام CD19 (الأخضر; الخلايا B) وF4/80 (الأزرق؛ الفيغاسيات)؛ شريط مقياس = 100 درجة مئوية؛ (D-F) كانت ملطخة LN T والخلايا phagocytic باستخدام CD3 (الأخضر; الخلايا T) وF4/80 (أبيض؛ الفيغاسيات)؛ مقياس شريط = 100 ميكرومتر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 6: الصور المجهرية البؤرية للالعقد الليمفاوية الأربية الكاملة من CX3CR1 المعدلة وراثياً GFP/+ CCR2 طلب تقديم العروض/+ الفئران دون حقن الجسم المضاد الرئيسي مزيج.
(A-C) تم تقييم توزيع الخلايا LN مع CX3CR1 (الأخضر) و CCR2 (الأحمر)؛ مقياس شريط = 100 ميكرومتر. (D-F) تضخيم منطقة محددة مع هدف 20X؛ مقياس شريط = 50 ميكرومتر. (خع-1) توزيع الخلايا LN في أرضية الجيوب الأنفية العقدة الليمفاوية; مقياس شريط = 100 ميكرومتر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 7: الصور المجهرية البؤرية للالعقد الليمفاوية البوبليتية الكاملة من CX3CR1 المعدلة وراثياً GFP/+ CCR2 طلب تقديم العروض/+ الفئران دون حقن الجسم المضاد الرئيسي مزيج.
(A-C) تم تقييم توزيع الخلايا LN مع CX3CR1 (الأخضر) و CCR2 (الأحمر)؛ مقياس شريط = 200 ميكرومتر. (D-F) تضخيم الجهاز بأكمله مع هدف 10X؛ مقياس شريط = 100 ميكرومتر. (خع-1) تضخيم منطقة محددة مع هدف 20X؛ مقياس شريط = 50 ميكرومتر. (J-L) توزيع الخلايا LN في أرضية الجيوب الأنفية العقدة الليمفاوية; مقياس شريط = 100 ميكرومتر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
فيديو 1: خصوصية T و B تلطيخ الخلية (انقر بزر الماوس الأيمن لتحميل).
| الليزر | الليزر الطاقة | كسب | ازاحه | الثقب |
| 406nm | 20% | 65 | -5 | 60 μm |
| 488متر | 25% | 50 | -5 | 60 μm |
| 561nm | 25% | 65 | -10 | 60 μm |
الجدول 1: إعدادات الحصول على الصور.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
وقد عزز الجمع بين التصوير مع تقنيات أخرى، بما في ذلك البيولوجيا الجزيئية والنماذج المناعية عالية الأبعاد قدرتنا على التحقيق في الخلايا المناعية في سياقها الأصلي. في الواقع، في حين أن النهج الأخرى قد تتطلب هضم الأنسجة وعزل الخلايا - والتي يمكن أن تؤدي إلى فقدان سلامة الأنسجة - استخدام التصوير في الجسم الحي أو الجسم الحي السابق يمنح ميزة كبيرة في التحقيق في مختلف أنواع الخلايا الفرعية بطريقة جغرافية3 , 16- وليس من المستغرب أن يزداد بسرعة توافر سلالات الفئران المعدلة وراثيا التي تستهدف فيها الخلايا على وجه التحديد للتعبير عن مختلف الفلوروفوريات. الأهم من ذلك، فإن الجمع بين الفئران مراسل وحقن مزيج الأجسام المضادة هو أداة قوية لوصمة عار مجموعات الخلايا المختلفة في الجسم الحي في نفس الجهاز4. وعلاوة على ذلك، فإن تعميم أدوات تحرير الجينات مثل CRISPR/Cas9 قد سمح لمجموعات مختلفة لتخصيص سلالات الماوس الخاصة بهم بطريقة يمكن الآن تصوير أي نوع من الخلايا تقريبا في موقعها حسن النية17. وباستخدام هذا النهج، يمكن تقييم العلاقة المكانية والوظيفية بين أنواع الخلايا المختلفة في تفاصيل عميقة. ومع ذلك، إذا لم يكن تصوير حركة الخلايا أو الأحداث الديناميكية في الجسم الحي إلزاميًا، يمكن استخدام نهج تجريبي أقل تعقيدًا. في هذه الحالة ، يتم تسليم الأجسام المضادة وتحقيقات في الجسم الحي ، ويتم تصور الجهاز (أو عينة) مباشرة في المجهر.
هنا وصفنا بروتوكول اغني عن استخدام الأنسجة بالتبريد والمسح بالتبريد التي يمكن أن تؤثر على هياكل الأعضاء وسمح بتقدير الخلايا المناعية داخل الغدد الليمفاوية التالية في إدارة الجسم الحي من الأجسام المضادة الفلورية المسماة. وقد تطلبت هذه البروتوكولات الحد الأدنى من المهارات التقنية والجراحية ويمكن تكييفها لتصور أي خلايا مناعية تقريباً في موقعها الأصلي. الأهم من ذلك، اقترحنا أن الأجسام المضادة ينبغي أن تدار بطريقة أنها سوف تصل إلى الغدد الليمفاوية باستخدام نفس المسارات التي المستضدات والخلايا السفر خلال استجابة المناعة. عن طريق حقن الأجسام المضادة الفلورسنت في الفضاء تحت الجلد، كان من الممكن لتقليد جميع الأنسجة والحواجز الهيمودينامية الموجودة في الجسم الحي وتقدير التسلسل الزمني لتبديد المستضد. وبالإضافة إلى هذا التطبيق، يمكن تطبيق هذه الطريقة وفائدتها للتوزيع البيولوجي للأدوية التي تحمل علامة الفلوروسنت ودراسات استهداف الخلايا للجسيمات النانوية التي تحمل علامة الفلورسنت.
ومع ذلك، هناك قيود على هذا الأسلوب. كمية الأجسام المضادة المطلوبة أعلى مقارنة مع أساليب علم الأنسجة التقليدية. ومع ذلك، منذ الفحص المجهري المناعي التقليدي يتطلب عدة جولات من إعداد الأنسجة وتلطيخ من أجل تحسين هذه التقنية والحصول على صور جيدة، وتكلفة الفحص المجهري التقليدية يمكن أن تتغلب على تكلفة عالية تركيز الأجسام المضادة المستخدمة في بروتوكولنا. المقبل، استنادا إلى الخصائص المعروفة لتصريف المستضد اللمفاوي في العقدة الليمفاوية9،18، من المرجح أن تنخفض كفاءة وضع العلامات بسرعة مع المسافة إلى الأوعية الدموية اللمفاوية بسبب حجم الكاشف وضع العلامات استخدام. في الواقع، قد تنتج المناطق السوداء في بعض الصور من سوء اختراق الأنسجة. فقط 40-100 ميكرومتر في العمق يمكن تحقيقه مع التصوير البؤري لLN، وبالتالي يمكن تصور مناطق LN السطحية فقط. إحدى الطرق للتغلب على هذه المشكلة جزئيا على الأقل هو استخدام الفلوروفور مع الإثارة أفضل والكشف عن طريق المجهر. نهج بديل آخر هو استخدام مجهريالليزر متعدد الفوتونات مع الطول الموجي للإثارة بالقرب من الأشعة تحت الحمراء التي كانت مفتاح التصوير العميق للأنسجة وتبين للتحايل على قضايا تشتت الضوء الشديد لوحظ مع ليزر فوتون واحد confocal مجهرية19. في حالة خلايا التصوير الملطخة بالأجسام المضادة التي تم تسليمها في الجسم الحي، يمكن استهداف المستضدات التي يتم التعبير عنها على سطح الخلية فقط. إذا لم يتم التحقق من صحة الأجسام المضادة المستخدمة حتى الآن، يصبح من الضروري إجراء تلطيخ عنصر تحكم isotype المطابق لاستبعاد الفلورة الذاتية والتحقق من صحة وضع العلامات. ويمكن تنفيذ ذلك في نفس الحيوان، أي الخلية التي تستهدف مزيج الأجسام المضادة حقن ipsilaterally ومزيج التحكم isotype حقن contralaterally. وبالإضافة إلى ذلك، فإن كمية الأجسام المضادة اللازمة لوصمة عار الخلية بكفاءة في الجسم الحي قد تختلف بين التجارب وخطوط الخلايا ونهج بديل لهذا القيد هو استخدام التعبير الفلوري المستهدف وراثيا.
في الختام، نقترح بروتوكولجديد لتصوير العقدة الليمفاوية بأكملها التي تحافظ على سلامة الأنسجة المعمارية، هو استنساخ، وسهلة الأداء واستخدام المجاهر التقليدية البؤرية. توضح هذه التقنية كيف يمكن للأساليب البسيطة أن تسمح للهياكل المختبرية العادية بالعمل كمنصات متعددة الوظائف تمكن من تحقيق الجهاز المناعي بشكل كبير.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
وليس لدى أصحاب البلاغ ما يكشفون عنه.
Acknowledgments
وقد تم دعم هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة (R01 AI43458 إلى H.L.W.).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| BV421 anti-CD4 | BD Horizon | 562891 | GK1.5; 0.2 mg mL-1 |
| BB515 anti-CD19 | BD Horizon | 564509 | 1D3; 0.2 mg mL-1 |
| BB515 Rat IgG2a, κ Isotype Control | BD Horizon | 564418 | R35-95; 0.2 mg mL-1 |
| BV421 Mouse IgG2b, K Isotype Control | BD Horizon | 562603 | R35-38 0.2 mg mL-1 |
| Cellview culture dish | Greiner-Bio | 627861 | 35x10 mm with glass bottom |
| Insulin syringes | BD Plastipak | - | Insulin U-100 |
| Kimwipes | Kimtech Science Brand | 7557 | size 21 x 20 cm / 100 sheets per box |
| Microsurgery curved forceps | WEP Surgical Instruments | custom made | 12.5 cm |
| Microsurgery curved scissors | WEP Surgical Instruments | custom made | 11.5 cm |
| Needle | BD PrecisionGlide | - | 30 gauge × ½ inch |
| Nikon Eclipse Te + A1R confocal head | Nikon | - | loaded with main 4 laser lines (405, 488, 543 and 647 nm) |
| PE anti-F4/80 | BD Pharmigen | 565410 | T45-2342; 0.2 mg mL-1 |
| PE Rat IgG2a, κ Isotype Control | BD Pharmigen | 553930 | R35-95; 0.2 mg mL-1 |
| Zeiss LSM 710 confocal microscope | Zeiss | - | loaded with main 4 laser lines (405, 488, 543 and 647 nm) |
References
- Willard-Mack, C. L. Normal structure, function, and histology of lymph nodes. Toxicologic Pathology. 34, 409-424 (2006).
- Tas, J. M., et al. Visualizing antibody affinity maturation in germinal centers. Science. 351, 1048-1054 (2016).
- David, B. A., et al. Combination of Mass Cytometry and Imaging Analysis Reveals Origin, Location, and Functional Repopulation of Liver Myeloid Cells in Mice. Gastroenterology. 151, 1176-1191 (2016).
- Rezende, R. M., et al. gammadelta T cells control humoral immune response by inducing T follicular helper cell differentiation. Nature Communications. 9, 3151 (2018).
- Nakagaki, B. N., et al. Generation of a triple-fluorescent mouse strain allows a dynamic and spatial visualization of different liver phagocytes in vivo. Anais da Academia Brasileira de Ciencias. 91 (suppl 1), e20170317 (2019).
- Ajami, B., et al. Single-cell mass cytometry reveals distinct populations of brain myeloid cells in mouse neuroinflammation and neurodegeneration models. Nature Neuroscience. 21, 541-551 (2018).
- Becher, B., et al. High-dimensional analysis of the murine myeloid cell system. Nature Immunology. 15, 1181-1189 (2014).
- McElroy, M., et al. Fluorescent LYVE-1 antibody to image dynamically lymphatic trafficking of cancer cells in vivo. Journal of Surgical Research. 151, 68-73 (2009).
- Gerner, M. Y., Casey, K. A., Kastenmuller, W., Germain, R. N. Dendritic cell and antigen dispersal landscapes regulate T cell immunity. The Journal of Experimental Medicine. 214, 3105-3122 (2017).
- Hauser, A. E., et al. Definition of germinal-center B cell migration in vivo reveals predominant intrazonal circulation patterns. Immunity. 26, 655-667 (2007).
- Allen, C. D., Okada, T., Tang, H. L., Cyster, J. G. Imaging of germinal center selection events during affinity maturation. Science. 315, 528-531 (2007).
- Arnon, T. I., Horton, R. M., Grigorova, I. L., Cyster, J. G. Visualization of splenic marginal zone B-cell shuttling and follicular B-cell egress. Nature. 493, 684-688 (2013).
- Sipkins, D. A., et al. In vivo imaging of specialized bone marrow endothelial microdomains for tumour engraftment. Nature. 435, 969-973 (2005).
- Cinamon, G., Zachariah, M. A., Lam, O. M., Foss, F. W. Jr, Cyster, J. G. Follicular shuttling of marginal zone B cells facilitates antigen transport. Nature Immunology. 9, 54-62 (2008).
- Pereira, J. P., An, J., Xu, Y., Huang, Y., Cyster, J. G. Cannabinoid receptor 2 mediates the retention of immature B cells in bone marrow sinusoids. Nature Immunology. 10, 403-411 (2009).
- Nakagaki, B. N., et al. Immune and metabolic shifts during neonatal development reprogram liver identity and function. Journal of Hepatology. (6), 1294-1307 (2018).
- Wang, H., La Russa, M., Qi, L. S. CRISPR/Cas9 in Genome Editing and Beyond. Annual Review of Biochemistry. 85, 227-264 (2016).
- Roozendaal, R., et al. Conduits mediate transport of low-molecular-weight antigen to lymph node follicles. Immunity. 30, 264-276 (2009).
- Sarder, P., et al. All-near-infrared multiphoton microscopy interrogates intact tissues at deeper imaging depths than conventional single- and two-photon near-infrared excitation microscopes. Journal of Biomedical Optics. 18, 106012 (2013).
