Summary
内因的にHER2増幅された炎症性乳癌細胞株の尾静脈注射によって生成された乳癌脳転移の異種移植マウスモデルについて説明します。
Abstract
脳への転移性転移は、多くの種類の癌の一般的で壊滅的な症状です。米国だけでも、毎年約20万人の患者が脳転移と診断されています。原発性乳がんおよび全身性悪性腫瘍の患者の生存転帰の改善において大きな進歩が見られました。しかし、臨床的脳転移患者の悲惨な予後は、この致命的な病気に対する新しい治療薬と戦略を開発する緊急の必要性を浮き彫りにしています。適切な実験モデルの欠如は、脳転移の生物学と治療の理解の進歩を妨げる主要なハードルの1つでした。ここでは、まれで侵攻性の乳がんである炎症性乳がん(IBC)に由来する内因性HER2増幅細胞株の尾静脈注射によって生じる脳転移の異種移植マウスモデルについて説明します。細胞をホタルルシフェラーゼと緑色蛍光タンパク質で標識して脳転移をモニターし、生物発光イメージング、蛍光実体顕微鏡、および組織学的評価によって転移負荷を定量化しました。マウスは頑健かつ一貫して脳転移を発症し、転移過程における主要なメディエーターの調査と新しい治療戦略の前臨床試験の開発を可能にします。
Introduction
脳転移は、全身性悪性腫瘍の一般的で致命的な合併症です。ほとんどの脳転移は、肺、乳房、または皮膚の原発腫瘍に由来し、これらをまとめて症例の67〜80%を占めています1,2。脳転移の発生率の推定値は100,000〜240,000例の間で変動し、転移性癌で死亡した患者では剖検がまれであるため、これらの数は過小評価されている可能性があります3。脳転移のある患者は、脳転移のない患者と比較して予後が悪く、全生存期間が低くなります4。脳転移に対する現在の治療選択肢は大部分が緩和的であり、ほとんどの患者の生存転帰を改善することができない5。したがって、脳転移は依然として課題であり、より効果的な治療法を開発するために、脳転移の進行メカニズムをよりよく理解することが引き続き急務です。
実験モデルの使用は、脳への乳がん転移進行の特定のメカニズムに関する重要な洞察を提供し、さまざまな治療アプローチの有効性の評価を可能にしました6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16.しかし、脳転移の発生の複雑さを正確かつ完全に再現できるモデルはほとんどありません。いくつかの実験的in vivoモデルは、同所性、尾静脈、心臓内、頸動脈内、および脳内注射を含む異なる投与経路によるマウスへの癌細胞の接種によって生成されている。各手法には、他の場所でレビューされているように、長所と短所があります 3.しかし、これらのマウスモデルのいずれも、脳転移の臨床的進行を完全に再現することはできません。
脳転移は、原発性乳がんのまれではあるが攻撃的な変異体である炎症性乳がん(IBC)の患者に特によく見られます。IBCは乳がん症例の1%から4%を占めていますが、米国では乳がん関連の死亡の不釣り合いな10%を占めています17,18。IBCは急速に転移することが知られています。実際、IBC患者の3分の1は診断時に遠隔転移を持っています19,20。脳転移に特異的なIBC患者は、非IBC21患者よりも脳転移の発生率が高い。最近、マウス異種移植片のIBCの特徴を再現するER-PR-/HER2+ IBC患者の悪性胸水に由来するMDA-IBC3細胞株が、尾静脈注射した場合、マウスの肺転移ではなく脳転移を発症する傾向が亢進することを示し、この細胞株は脳転移の発症を研究するための優れたモデルとなっています16。
ここでは、MDA-IBC3細胞の尾静脈注射を介して脳転移を生成し、立体蛍光顕微鏡およびルシフェラーゼイメージングを介して転移負荷を評価する手順について説明します。この方法は、脳への乳がん転移の主要なメディエーターを発見し、治療的介入の有効性をテストするために使用されています16、22、23。この技術の欠点は、脳転移過程のすべてのステップを再現しないことです。それにもかかわらず、その主な利点には、堅牢性と再現性、血管内投与の関連する転移生物学の関与、肺の横断と脳への血管外漏出、および技術の点での比較的単純さが含まれます。
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Protocol
ここで説明する方法は、MDアンダーソンがんセンターの施設動物管理および使用委員会(IACUC)によって承認されており、実験動物の世話と使用に関する国立衛生研究所のガイドラインに準拠しています。すべての手順を含む回路図のワークフローを 図 1 に示します。
1.細胞調製
注:ウッドワード博士の研究室24で作製されたMDA-IBC3(ER-/PR-/HER2+)細胞株は、ルシフェラーゼ緑色蛍光タンパク質(Luc-GFP)プラスミドで安定に形質導入されました。
- 10%ウシ胎児血清(FBS)、1 μg/mLヒドロコルチゾン、5 μg/mLインスリン、および1%抗生物質-抗有糸分裂薬を添加したHam's F-12培地で形質導入細胞を培養します。
- MDA-IBC3-Luc-GFP細胞をT-75フラスコ中で37°Cおよび5%CO2 でコンフルエントになるまでプレートする。細胞が継代するのに十分にコンフルエントになる前に、3日ごとに培地を交換してください。
- 培地を除去し、各フラスコを10 mLの1x ダルベッコ(つまり、カルシウムおよびマグネシウムを含まない)リン酸緩衝生理食塩水(DPBS)で洗浄し、2 mLの0.25%トリプシン-エチレンジアミン四酢酸(EDTA)を加えて細胞を回収します。細胞が剥離するまで37°Cで3〜5分間インキュベートします。
- 5 mLの完全な培地をフラスコに加えて細胞を回収し、内容物全体を15 mLの遠沈管に移します(必要な細胞の総数に応じて50 mLの遠沈管に最適化)。290 x g で5分間遠心分離し、細胞をペレット化します。
注:完全培地は、10%ウシ胎児血清(FBS)、1 μg / mLヒドロコルチゾン、5 μg / mLインスリン、および1%抗生物質抗有糸分裂薬を添加したハムのF-12培地です。 - 上清を捨てる。次に、10 mLの1x DPBSで細胞を洗浄します。290 x g で5分間遠心分離して細胞をペレット化し、上清を注意深く廃棄します。細胞を1 mLの新鮮な1x DPBSで再懸濁し、上下にピペッティングしてよく混ぜます。
- 単一細胞懸濁液を作るには、40 μmの滅菌セルストレーナーで細胞をろ過します。
- 自動セルカウンターを使用してセル密度を計算します。
注:カウントのエラーを減らすには、異なる細胞希釈液を作成して個別にカウントし、平均値を計算して細胞の濃度(細胞数/ mL)を決定します。- 2 μLの細胞懸濁液+8 μLの1x DPBSを収集して、1:5希釈サンプルを作成します。
- 1 μLの細胞懸濁液+9 μLの1x DPBSを収集して、1:10希釈サンプルを作成します。
- 10 μLの0.4%トリパンブルーステインを加えます。サンプル混合物を数回上下にピペッティングしてよく混合します。
- 10 μLのサンプルを、計数チャンバースライドの半月形のサンプルローディングエリアに静かにピペットで入れます。内部に気泡がないことを確認してください。カウントする前に、細胞がチャンバー内に落ち着くまで30秒待ちます。
- 細胞を1x DPBSで100 μLあたり5 x 105 または1 x 106 細胞の密度に希釈します。 細胞懸濁液を1.7 mLマイクロ遠心チューブに移し、尾静脈注射を行います。生存率を維持するために、注射まで細胞を氷の上に置きます。
2.尾静脈注射
- 4〜6週齢の雌の無胸腺SCID/ベージュマウスを使用します。
- 30 Gシリンジを準備して、100 μLの細胞懸濁液を吸引します。気泡をすべて取り除きます。
- マウスをげっ歯類の拘束具(直径約1インチ)に入れて、尾静脈注射を容易にし、注射プロセス中の怪我の動きを防ぎます。
- アルコール綿パッド(70%エタノール製)を使用して、マウスの尾を3〜4回そっと拭き、5〜10秒間保持して、尾静脈をよりはっきりと見えるようにします。
- シリンジをマウスの尾に15〜30°の角度で挿入します。細胞懸濁液をゆっくりと尾静脈に押し込みます。
- 注射器をそっと取り外し、綿パッドを使用して尾を数秒間保持し、出血を防ぎます。
- マウスをケージに戻し、注射後2〜4時間で副作用が発生しないことを確認します。
3. 脳転移負荷の評価
- 希釈したD-ルシフェリン溶液を調製する。
注:ストック濃度は47.6 mM(15.15 mg / mL)で、使用濃度は1.515 mg / mLです。- 5 mLの1x DPBSをD-ルシフェリンボトルに追加します。
- 2.5 mLの溶液を2本の50 mLコニカルチューブのそれぞれに入れます。
- さらに5 mLの1x DPBSをD-ルシフェリンボトルに再度加えてすすぎます。各50 mLコニカルチューブに2.5 mLを入れます。
- さらに5mLの1xDPBSをボトルに入れ、もう一度すすぎます。すすぎプロセスを2回繰り返します。
- 各50 mLチューブに1x DPBSを加えて、合計66 mLにします(チューブあたり約33 mL)。各チューブに約33mLの溶液が入っているはずです。
- チューブをよく混合し、両方を滅菌ろ過ユニット(150 mL PESフィルター0.45 μm)に混ぜ合わせます。
- 溶液をろ過し、ろ過した溶液を滅菌済みの琥珀色の1.7 mLマイクロチューブに分注します。
- ルシフェラーゼイメージングによる脳転移の検出。
- 氷上に保持してD-ルシフェリンを解凍し、マウスに注射する前にボルテックスする。
- アルコール綿パッドで注射部位を洗浄し、0.5 mLインスリンシリンジ(ケージごとに1シリンジ)を使用して、マウスあたり100 μLのD-ルシフェリンを腹腔内注射します。
- 10分後、小動物誘導室に接続された動物用気化器を使用して、マウスをイソフルラン(2%O2〜2.5%イソフルラン)で5分間麻酔します。
- in vivoイメージングシステムの電源を入れます。最初のケージのマウスが麻酔下にある間に、次のケージのマウスにD-ルシフェリンを注射します。
- マウスをin vivoイメージングシステムマシンに入れ、腹側と背側の画像を取得します。2分の露光時間を選択し、フィールドビューでオプションE(全身)を選択します。 [取得]を押します。次に、画像を保存します(図2)。
注意: 画像にルミネセンスの彩度が表示されている場合は、露光時間を短くしてください。
- GFPイメージングによる脳転移の検出
- 脳組織の準備。
- 細胞の注射後約8〜10週間、またはマウスが脳転移のために瀕死の状態にある場合 負荷、IACUCによって承認されたプロトコルに従って、イソフルランの過剰摂取とそれに続く頸部脱臼の吸入によってマウスを安楽死させます。
- イソフルランによる安楽死とそれに続く頸部脱臼の後、マウスに70%エタノール溶液をスプレーし、ハサミで頭の部分と耳から毛皮を取り除きます。次に、首の頸部に切り込みを入れます(マウスを斬首しないように注意してください)。頭蓋骨を切り取って引き出します。次に、慎重に脳を取り除きます。
- 収集した脳を組織カセットに入れます。
- カセットを冷たい1xDPBSの入った容器に移します。
注意: 脳サンプルは、1xDPBSに1時間以上保持しないでください。複数の脳サンプルを同時に収集する場合は、一度に数匹のマウスのみを安楽死させます(ラウンドごとに10匹)。
- 実体顕微鏡イメージング。
- 脳全体を100cmのティッシュ皿の蓋に移します。
- 実体顕微鏡とUVライトをオンにして、レンズを0.5倍にして、 図3A (赤い四角)に示すように脳全体を視覚化できるようにします。
- ライブビューを押します(図3A、緑色の四角)。
- 脳が腹側位置にある間にビューに焦点を合わせます。
- ソフトウェアでGFP(細胞が GFP 標識されている場合)または TXRED (細胞がRFP標識されている場合)を選択し(図3A、黄色の四角)、顕微鏡で適切なフィルターを選択して写真を撮ります。
注意: SOLA光源の設定を約30%に保ちます。GFPが明るすぎる場合は、適切な信号が観察されるまで下げます。 - サンプルを動かさずに、明るい光をオンにしてBFを選択します(図3A、黄色の四角)。写真を撮ります。
- 脳を背側の位置にして前の手順を繰り返します。
注:サイズによっては、同じGFP陽性の脳転移病変が腹側と背側の両方の位置に現れる可能性があります。このような場合は、同じ病変の重複定量は避けてください。画像をTIFF拡張子(画像ファイル内のすべての情報を保持する)で保存します。 - 画像をTIFF拡張子(画像ファイル内のすべての情報を保持する)で保存します。
- すべてのサンプルに対して手順を繰り返します。
- TIFF画像をJPEGに変換して、関連するソフトウェアがインストールされていない任意のコンピューターでファイルを開くことができるようにします(File |インポート/エクスポート |ファイルを変換します)。
- 蛍光画像を明視野画像とマージするには、両方の画像を開いて [ファイル]|チャンネルをマージします。GFPの場合は緑色、BFの場合は明視野の適切なコンポーネントを選択し、[ OK]を押します。結合された画像を保存します。
- 脳腫瘍領域を定量化するには、蛍光画像を使用します。 [測定] |手動測定 |エリア。自動選択を選択し(図3B、緑色の四角)、矢印をGFPポジティブ領域に移動してクリックすると、選択が自動的に作成されます。もう一度クリックして選択を確認すると、すべての測定値が表示されます(図3B、赤い四角)。GFP陽性領域が複数存在する場合は、手順を繰り返します。
- 脳画像が得られたら、10%中性緩衝ホルマリンを使用した通常の組織固定プロトコルに進みます。
- 脳が固定されたら、標準的な組織学的切片作成に進み、続いてヘマトキシリンおよびエオジン染色を行って脳転移の存在を確認し、免疫組織化学的染色を行って選択したマーカーを検出します。
注:免疫細胞化学は、既知のマーカーの免疫組織化学染色のための標準化されたプロトコルを持つUT MDアンダーソンがんセンターの病理学コアラボで実施されました。
- 脳が固定されたら、標準的な組織学的切片作成に進み、続いてヘマトキシリンおよびエオジン染色を行って脳転移の存在を確認し、免疫組織化学的染色を行って選択したマーカーを検出します。
- 脳組織の準備。
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Representative Results
標識細胞が前臨床マウスモデルにおける脳転移のモニタリングと可視化を容易にするという理論的根拠に基づいて、MDA-IBC3細胞にLucおよびGFPでタグを付け、生物発光イメージングと蛍光実体顕微鏡を使用して脳転移をモニターし、転移負荷を定量化しました。免疫不全SCID/ベージュマウスの尾静脈に標識されたMDA-IBC3細胞を注射すると、脳転移を発症したマウスの割合が高くなりました(すなわち、66.7%から100%)16,23,25。脳転移病変は、ルシフェラーゼイメージング(図2)または立体蛍光顕微鏡(図4)によって注射後8週間という早い時期に検出できました。GFPイメージングにより、各転移性病変の面積を検出、カウント、および計算できます。イメージング後、脳転移の一部をホルマリン固定し、ヘマトキシリンおよびエオジン染色のために処理して脳転移病変の存在を検証し(図5A)、免疫組織化学的染色で特定のタンパク質マーカーを検出します(図5B、C)。
図1:尾静脈注射による脳転移発生の概略ワークフロー。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図2:背側と腹側のマウスのルシフェラーゼ画像。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図3:実体顕微鏡に使用したイメージングソフトウェアのスクリーンショット 。 (A)画像の取得方法を示す手順。左側の緑色の四角形はライブビューボタンを示しています。右側の赤い四角は、ノーズピースレンズの顕微鏡の位置とズーム位置を示しています。黄色の四角形は、フィルターの選択を強調表示します。(B)腫瘍量の測定に関連するステップのスクリーンショット。左上の緑色の四角は、面積計算の自動選択モードを示しています。その下の赤い四角は、脳転移病変が選択された後の面積値およびその他の測定値を示しています。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図4:MDA-IBC3細胞株の尾静脈注射による転移を伴うマウス脳の立体画像。左側の明視野画像はGFP画像(中央)とマージされ、次にマージされます(右)。スケールバー = 100 μm。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図5:マウスにおけるMDA-IBC3由来の脳転移の染色像を示すスライド 。 (A)ヘマトキシリンおよびエオジン染色は、脳転移の組織学的確認を提供します。MDA-IBC3由来脳転移性腫瘍の免疫染色ではHER2(B)とE-カドヘリン(C)の染色が陽性である。スケールバー = 100 μm。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
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Discussion
プロトコルには、いくつかの重要なステップが含まれています。細胞は生存能力を維持するために1時間以内氷上に保たれるべきです。アルコール綿パッドを使用して、注射前にマウスの尾を拭き、尾の皮膚を傷つけないように強く拭きすぎたり、頻繁に拭いたりしないように注意する必要があります。マウスが血管塞栓で死亡するのを防ぐために、細胞懸濁液に気泡が存在しないことを確認してください。尾の血管を突き刺さないように注入角度を45°以下に維持し、針の少なくとも1/3を尾静脈に挿入して、すべての細胞を確実に注入できるようにします。注入された細胞の総量はマウスの体重に応じて調整することができますが、細胞の総数はできるだけ同じに保つ必要があります。このプロトコルにおいて、SCID/ベージュマウスは全て4〜6週齢であり、体重は15〜20gであった。体重が15 g未満のマウスの場合、注入量は100 μL未満に調整できます。それ以外の場合は、100μLを注入します。頭蓋骨から取り出した後、信号の減少と組織変性を防ぐために、実体顕微鏡によるイメージングの前に、脳全体を1x DPBSに1時間以内に保持する必要があります。免疫蛍光イメージングでは、脳組織は、高品質の画像の取得を妨げる内因性の自家蛍光を生成するため、ホルマリンに入れないでください。ルシフェラーゼイメージングは必ずしも脳転移、特に非常に小さな病変を明らかにするとは限らないことに注意してください。しかし、実体顕微鏡によるGFPイメージングは、すべての病変を可視化することができる。さらに、GFPイメージングは1つ以上の病変を示すことができますが、ルシフェラーゼイメージングは示しません。
提案された手順は、ユーザーの好みに応じてわずかに変更できます。第一に、注入された細胞の数と転移形成の持続時間は、異なる研究のために調整することができる。第二に、マウスの尾静脈は、温水を使用して静脈を拡張するか、UV光を使用して静脈を照らすことによって、より明確に視覚化できます。最後に、シリンジ内の針のサイズは30Gまたは28Gのいずれかであり得る。
脳転移の既存のマウスモデルの利点と限界は、他の場所でレビューされています3。 ここで説明した脳転移モデルには、限界と長所があります。1つの制限は、脳転移プロセスのすべてのステップを再現するわけではなく、転移プロセスの初期段階、つまり原発性乳がん細胞の循環への播種の調査を許可しないことです。また、このモデルは、脳転移の過程における腫瘍細胞と宿主免疫微小環境との間の相互作用の研究や、免疫療法の適用の評価には使用できません。ただし、このモデルには、他の脳転移モデルに比べていくつかの利点があります。第一に、ごく一部のマウスのみが可変間隔で脳転移を発症する自然発生モデルとは異なり、私たちのモデルは、通常、マウスの70%以上で一貫して脳への転移につながるという利点があります。第二に、尾静脈注射は、主に肺への細胞の播種とその後の脳への広がりを可能にしますが、頸動脈内動脈を介した接種は細胞が脳に直接播種することを可能にします。心臓内注射は、癌細胞を脳だけでなく、肺や骨などの頭蓋外部位に全身的に分布させることを可能にします。したがって、私たちのモデルは、細胞が肺毛細血管床を横断し、脳病変を生成する前に循環で生き残るため、一般的に使用される心臓内または頸動脈内注射モデルよりも脳転移性コロニー形成ステップをよりよく再現します。最後に、尾静脈を介した乳がん細胞の注射は、頸動脈内または心臓内注射よりも技術的に困難ではありません。
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Disclosures
著者は利益相反を宣言しません。
Acknowledgments
原稿の科学的編集をしてくれたMDアンダーソンの放射線腫瘍学部門のクリスティンF.ウォーガン、MS、ELS、およびヘマトキシリンとエオジン染色の支援を提供してくれたMDアンダーソンの外科組織学コアのキャロルM.ジョンストンに感謝します。MDアンダーソンの獣医学および外科コアの動物実験への支援に感謝します。この研究は、次の助成金によってサポートされました:スーザンG.コーメンキャリアカタリスト研究助成金(CCR16377813からBGD)、アメリカ癌協会研究奨学生助成金(RSG-19–126–01からBGD)、およびテキサス州のまれで積極的な乳がん研究プログラム。また、国立がん研究所、国立衛生研究所からテキサス大学MDアンダーソンがんセンターへのがんセンターサポート(コア)助成金P30 CA016672によって部分的にサポートされています。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cell Culture | |||
| 1000 µL pipette tip filtered | Genesee Scientific | 23430 | |
| 10 mL Serological Pipets | Genesee Scientific | 12-112 | |
| Antibiotic-antimycotic | Thermo Fisher Scientific | 15240062 | 1% |
| Centrifuge tubes 15 mL bulk | Genesee Scientific | 28103 | |
| Corning 500 mL Hams F-12 Medium [+] L-glutamine | GIBICO Inc. USA | MT10080CV | |
| Countess II Automated Cell Counter (Invitrogen) | Thermo Fisher Scientific | AMQAX1000 | |
| 1x DPBS | Thermo Fisher Scientific | 21-031-CV | |
| Eppendorf centufuge 5810R | Eppendorf | ||
| Fetal bovine serum (FBS) | GIBICO Inc. USA | 16000044 | 10% |
| Fisherbrand Sterile Cell Strainers (40 μm) | Thermo Fisher Scientific | 22-363-547 | |
| Hydrocortisone | Sigma-Aldrich | H0888 | 1 µg/mL |
| Insulin | Thermo Fisher Scientific | 12585014 | 5 µg/mL |
| Invitrogen Countess Cell Counting Chamber Slides | Thermo Fisher Scientific | C10228 | |
| MDA-IBC3 cell lines | MD Anderson Cancer Center | Generated by Dr. Woodward's lab24 | |
| Luciferase–green fluorescent protein (Luc–GFP) plasmid | System Biosciences | BLIV713PA-1 | |
| microtubes clear sterile 1.7 mL | Genesee Scientific | 24282S | |
| Olympus 10 µL Reach Barrier Tip, Low Binding, Racked, Sterile | Genesee Scientific | 23-401C | |
| TC Treated Flasks (T75), 250mL, Vent | Genesee Scientific | 25-209 | |
| Trypan Blue Stain (0.4%) for use with the Countess Automated Cell Counter | Thermo Fisher Scientific | T10282 | |
| Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red | Thermo Fisher Scientific | 25200114 | |
| Tail vein injection | |||
| C.B-17/IcrHsd-Prkdc scid Lyst bg-J - SCID/Beige | Envigo | SCID/beige mice | |
| BD Insulin Syringe with the BD Ultra-Fine Needle 0.5mL 30Gx1/2" (12.7mm) | BD | 328466 | |
| Plas Labs Broome-Style Rodent Restrainers | Plas Labs 551BSRR | 01-288-32A | Order fromThermo Fisher Scientific |
| Volu SolSupplier Diversity Partner Ethanol 95% SDA (190 Proof) | Thermo Fisher Scientific | 50420872 | 70 % used |
| Imaging | |||
| BD Lo-Dose U-100 Insulin Syringes | BD | 329461 | |
| Disposable PES Filter Units 0.45 µm | Fisherbrand | FB12566501 | filter system to sterilize the D-luciferin |
| D-Luciferin | Biosynth | L8220-1g | stock concentration = 47.6 mM (15.15 mg/mL); use concentration = 1.515 mg/mL |
| 1.7 mL microtube amber | Genesee Scientific | 24-282AM | |
| Isoflurane | Patterson Veterinary | NDC-14043-704-06 | Liquid anesthetic for use in anesthetic vaporizer |
| IVIS 200 | PerkinElmer | machine for luciferase imaging, up to 5 mice imaging at the same time, with anesthesia machine | |
| Plastic Containers with Lids | Fisherbrand | 02-544-127 | |
| Tissue Cassettes | Thermo Scientific | 1000957 | |
| Webcol Alcohol Prep | Covidien | 6818 | |
| Stereomicroscope Imaging | |||
| Stereomicroscope AZ100 | Nikon | model AZ-STGE | software NIS-ELEMENT |
| Formalin 10% | Fisher Chemical | SF100-4 | |
| TC treated dishes 100x20 mm | Genesee Scientific | 25202 |
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