Summary
Pour induire une encéphalomyélite auto-immune expérimentale, un modèle animal de sclérose en plaques, les souris sont immunisées avec une émulsion eau dans huile contenant un autoantigène et un adjuvant de Freund complet. Bien qu’il existe plusieurs protocoles pour la préparation de ces émulsions, un protocole d’homogénéisation rapide, simple et standardisé pour la préparation de l’émulsion est présenté ici.
Abstract
L’encéphalomyélite auto-immune expérimentale (EAE) partage des caractéristiques immunologiques et cliniques similaires à celles de la sclérose en plaques (SEP) et est donc largement utilisée comme modèle pour identifier de nouvelles cibles médicamenteuses pour un meilleur traitement des patients. La SEP se caractérise par plusieurs évolutions différentes de la maladie : la SEP cyclique (SEP-RR), la SEP progressive primaire (SPPP), la SEP progressive secondaire (SEP-SP) et une forme rare de SEP progressive-récurrente (SEP-PR). Bien que les modèles animaux n’imitent pas avec précision tous ces phénotypes de maladies humaines contrastées, il existe des modèles EAE qui reflètent certaines des différentes manifestations cliniques de la SEP. Par exemple, l’EAE induite par la glycoprotéine oligodendrocytaire de myéline (MOG) chez les souris C57BL/6J imite la SPPP humaine, tandis que l’EAE induite par la protéine protéolipide de myéline (PLP) chez les souris SJL/J ressemble à la SEP-RR. D’autres autoantigènes, tels que la protéine basique de myéline (MBP), et un certain nombre de souches de souris différentes sont également utilisés pour étudier EAE. Pour induire la maladie dans ces modèles EAE d’auto-immunisation antigène, une émulsion eau dans huile est préparée et injectée par voie sous-cutanée. La majorité des modèles EAE nécessitent également une injection de toxine de la coqueluche pour que la maladie se développe. Pour une induction EAE cohérente et reproductible, un protocole détaillé pour préparer les réactifs à produire des émulsions antigènes/adjuvants est nécessaire. La méthode décrite ici tire parti d’une méthode standardisée pour générer des émulsions eau dans huile. Il est simple et rapide et utilise un homogénéisateur à agitation au lieu de seringues pour préparer des émulsions de qualité contrôlée.
Introduction
Une rupture de la tolérance immunologique peut entraîner la génération de maladies auto-immunes, telles que la sclérose en plaques (SEP). On estime que 2,8 millions de personnes vivent avec la SEP dans le monde1. Bien que la cause exacte de la SEP soit encore largement inconnue, la dérégulation des cellules T et B autoréactives, ainsi que les défauts de la fonction Treg, jouent un rôle important dans la pathogenèse de la maladie 2,3.
Les modèles animaux de maladies auto-immunes sont des outils essentiels pour étudier les modalités thérapeutiques potentielles. Le modèle expérimental d’encéphalomyélite auto-immune (EAE) est utilisé depuis près d’un siècle par les chercheurs qui s’intéressent à la SEP4. Dans les premières expériences, l’incidence de la maladie était relativement faible. L’introduction de l’adjuvant de Freund complet (CFA), contenant Mycobacterium et la toxine de la coqueluche, a permis l’induction constante de l’EAE chez la souris4. Plus important encore, il est nécessaire de mélanger le CFA avec un antigène spécifique du système nerveux central (SNC) pour générer une émulsion homogène eau dans huile pour induire EAE. Les modèles EAE les plus courants actuellement disponibles sont basés sur l’immunisation active de souris avec des peptides encéphalitogènes. Le fond génétique des souris joue un rôle important dans la susceptibilité à la maladie, avec les peptides de la glycoprotéine oligodendrocytaire de myéline (MOG35-55) et de la protéine protéolipide de myéline (PLP139-151) utilisés pour induire EAE chez les souris C57BL / 6J et SJL, respectivement5. Cependant, d’autres souches de souris et des peptides dérivés du SNC peuvent également être utilisés.
La qualité de l’émulsion CFA/peptide est un facteur critique qui détermine la pénétrance de la maladie dans l’immunisation active EAE modèle6. Une émulsion homogène eau dans huile doit être préparée en mélangeant les peptides encéphalitogènes dissous dans un tampon aqueux avec du CFA, sinon les animaux ne développeront pas la maladie. De nombreux protocoles ont été publiés sur la préparation des émulsions CFA/peptides. Les exemples incluent l’utilisation d’un vortex7, de la sonication8, de seringues et d’un connecteur T à trois voies9, ou d’une seringue seulement5. Cependant, toutes ces méthodes sont difficiles à normaliser et sont souvent associées à des protocoles longs et compliqués.
Par rapport à toutes les méthodes ci-dessus, la méthode simple décrite ici pour la préparation de l’émulsion offre les avantages de ne pas avoir de différences de personne à personne et d’être relativement rapide. L’émulsion est générée par un homogénéisateur secouant les réactifs avec une vitesse, un temps et une température définis, assurant des résultats rapides et cohérents. En plus d’induire la maladie dans le modèle EAE, cette méthode peut également être utilisée pour étudier d’autres modèles de maladies auto-immunes telles que l’arthrite induite par le collagène (ICA) et l’arthrite induite par l’antigène (AIA)6. Par conséquent, on s’attend à ce que cette méthode puisse être utilisée pour induire systématiquement la maladie dans d’autres modèles animaux qui dépendent d’émulsions eau-dans-huile avec des autoantigènes, tels que la névrite auto-immune expérimentale (EAN)10, la thyroïdite auto-immune expérimentale (EAT)11, l’uvéite auto-immune (EAU)12 et la myasthénie grave (MG)13. Cette méthode induit également des réponses immunitaires générales telles que l’hypersensibilité de type retardé (DTH) de manière constante6, et pourrait donc être utilisée pour administrer des vaccins anticancéreux et antipaludiques (voir discussion).
Ainsi, une méthode rapide (temps de préparation total ~30 min), simple (tous les réactifs peuvent être préparés à l’avance et stockés) et standardisée (l’émulsion est réalisée à l’aide d’un homogénéisateur agité) a été développée et est présentée ici. Les émulsions CFA/antigène préparées à l’aide de ce protocole induisent systématiquement la maladie dans des modèles animaux auto-immuns.
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Protocol
Toutes les procédures sur les animaux ont été effectuées conformément aux pratiques du Conseil suédois de la recherche animale et ont été approuvées par le Comité d’éthique animale, Lund-Malmö, Suède (numéro de permis: M126-16).
Remarque : Un flux schématique de la méthode est décrit à la figure 1.
1. Préparation du matériel
NOTE: Préparer tous les réactifs de manière aseptique dans une hotte stérile, et aliquote et conserver à la température indiquée. Les réactifs peuvent être conservés jusqu’à 2 ans sans perdre leur effet.
- Préparer le CFA contenant 20 mg/mL de Mycobacterium tuberculosis comme décrit ci-dessous.
- Ajouter 100 mg de M. tuberculosis H37RA lyophilisé (voir le tableau des matières) et cinq billes d’acier de 3,2 mm dans un tube de 7 ml (voir le tableau des matières). Agiter le tube dans un homogénéisateur (voir le tableau des matériaux) pendant 60 s à la vitesse la plus élevée (5 000 tr/min).
- Ajouter 5 mL d’adjuvant de Freund incomplet (IFA) dans le tube et agiter à nouveau pendant 60 s à la vitesse la plus élevée. Transférer la suspension de M. tuberculosis homogénéisée dans l’IFA (maintenant appelé CFA) dans un tube frais à l’aide d’une pipette, en laissant les billes derrière soi, et conserver à 4 °C jusqu’à utilisation.
- Ajouter de l’eau ultrapure à la poudre lyophilisée de peptide MOG35-55 (voir le tableau des matières) pour obtenir une concentration finale de peptide de 10 mg/mL. Stérilisez la solution en la faisant passer à travers un filtre de 0,2 μm. Préparer des aliquotes de 60 μL et conserver à -20 °C jusqu’à utilisation.
REMARQUE: Le peptide MOG35-55 utilisé pour cette expérience est d’une pureté immunograde (~ 70%), est clivé par TFA, se dissout facilement dans l’eau et contient un amide C-terminal (-NH2) pour augmenter la stabilité in vivo 14. Les aliquotes peptidiques n’ont jamais été décongelées et recongelées plus de deux fois, et ont été conservées à -20 °C jusqu’à utilisation. - Préparer 100 mL de tampon de toxine anticoquelucheuse : Dissoudre 2,9 g de NaCl dans 80 mL de 1x PBS libre de Ca 2+/Mg2+ et ajouter 100 μL de Triton X-100 à 10 %. Régler le volume à 100 mL avec du PBS et stériliser la solution en la faisant passer à travers un filtre de 0,2 μm. Préparer des aliquotes de 10 mL et conserver à 4 °C jusqu’à utilisation.
2. Préparation des émulsions CFA/peptides
- Calculer la quantité d’émulsion nécessaire à l’immunisation. Dans ce protocole standard, chaque souris reçoit 50 μg de peptide MOG35-55 et 300 μg de M. tuberculosis dispersés dans l’adjuvant de Freund (CFA). La quantité de chaque réactif (peptide MOG35-55 , PBS, CFA et IFA) nécessaire à la préparation des émulsions peut être calculée à l’aide du fichier supplémentaire 1. Un supplément de 20% de tous les réactifs, pour compenser la faible perte d’émulsion, est inclus dans le calcul.
REMARQUE : La trousse d’émulsion commerciale (voir le tableau des matériaux) utilisée dans cette étude comprend un tube, un bouchon à vis et un piston dans une poche stérilisée. Chaque tube de la trousse d’émulsion contient un maximum de 9,6 mL, ce qui permet de préparer 8 seringues de 1 mL suffisantes pour immuniser 40 souris (ou 80 souris si l’on utilise 100 μL d’émulsion par animal). - Placez le tube à vis (du kit d’émulsion commerciale) et les réactifs à utiliser sur la glace.
- Ajouter les composants de l’émulsion dans l’ordre suivant dans les volumes calculés à l’étape 2.1 : PBS, puis le peptide, puis M. tuberculosis dans le CFA, et enfin l’IFA.
- Fermez fermement le tube avec le capuchon en le serrant et en le desserrant plusieurs fois. Agiter vigoureusement le tube pendant 5-10 s à la main pour prémélanger les réactifs.
- Placez le tube dans l’homogénéisateur secouant et fixez-le avec la tige. Réglez la vitesse sur le réglage le plus élevé et le temps sur 60 s. Une fois la course terminée, placez le tube sur la glace pendant 3 min. Répétez l’exécution une ou deux fois de plus avec les mêmes paramètres.
- Centrifuger le tube à 300 x g pendant 1 min pour éliminer l’air emprisonné et compacter l’émulsion.
- Retirez le capuchon du tube, insérez le piston dans le tube et poussez-le lentement jusqu’à ce qu’il atteigne le sommet de l’émulsion. Retirez la fermeture à pression au fond du tube en la tordant.
- Retirer le piston d’une seringue d’injection (1 mL; voir le tableau des matières). Ajouter une aiguille (de préférence 25-27 G) à la seringue d’injection.
- Fixez l’extrémité arrière de la seringue d’injection à la serrure dédiée au bas du tube et verrouillez-la avec une courte torsion.
- Transférer l’émulsion du tube à la seringue d’injection en poussant doucement le piston. Arrêtez-vous lorsque l’émulsion atteint la graduation de 0,15 mL de la seringue d’injection.
- Séparez la seringue d’injection du tube et insérez le piston avec précaution, en veillant à ce qu’aucun air ne pénètre dans la seringue. Poussez le piston jusqu’à ce que l’émulsion sorte de l’aiguille.
Remarque : À ce stade, une partie de l’émulsion peut être utilisée pour le contrôle qualité (voir étape 3). - Répétez les étapes 2.8-2.11 pour le reste de l’émulsion présente dans le tube.
REMARQUE: Pour minimiser le gaspillage d’émulsions CFA/antigène coûteuses, des seringues de 1 mL doivent être utilisées. D’autres seringues qui s’adaptent à la serrure dédiée au fond du tube peuvent être utilisées; Cependant, un plus grand volume d’émulsion peut devoir être préparé. L’émulsion peptidique CFA/MOG35-55 peut être conservée à 4 °C jusqu’à 15 semaines sans perdre sa capacité induisant l’EAE.
3. Contrôle de la qualité de l’émulsion
- Drop-test : Ajouter une petite goutte de l’émulsion dans un tube conique stérile de 50 mL rempli de 20 mL d’eau froide. Fermez le tube et secouez-le à la main pendant quelques secondes. L’apparition de minuscules gouttelettes distinctes confirme la formation d’une émulsion eau dans huile.
- Examiner l’émulsion à l’aide de la microscopie à contraste de phase.
- Pour analyser la taille des particules eau dans huile, ajoutez une minuscule goutte (2-3 μL) de l’émulsion à une lame de microscope, enduisez-la avec un couvercle, puis poussez fort dans un mouvement circulaire pour aplatir l’émulsion.
- Examinez l’émulsion étalée au microscope à contraste de phase (voir Tableau des matériaux) avec un grossissement de 400x et concentrez-vous sur un champ avec une monocouche de l’émulsion. S’assurer que les petites particules grises/blanches uniformes sont visibles (figure 2A).
- Analyser la taille des particules de l’émulsion à l’aide de la diffraction laser.
REMARQUE: La diffraction laser mesure les distributions granulométriques à l’aide d’un faisceau laser. Il s’agit du test de contrôle de qualité ultime pour les émulsions. Un résultat représentatif des distributions granulométriques utilisant la méthode décrite ici est présenté à la figure 2B (pour une description détaillée, voir Topping et al.6). Néanmoins, l’essai de chute et l’examen au microscope sont suffisants pour valider si une émulsion satisfaisante a été formée.- Réglez les indices de réfraction pour les lasers rouge et bleu pour le dispersant (voir le tableau des matériaux) à 1,456 et pour l’échantillon à 1,33 sur l’analyseur granulométrique (voir le tableau des matériaux). Réglez l’absorbance de l’indice de réfraction sur 0,02.
- Ajouter une goutte de la seringue contenant l’émulsion peptidique à l’unité de dispersion contenant de l’huile minérale légère. Démarrez l’acquisition des données instantanément après la dispersion de l’émulsion.
REMARQUE : Un modèle à usage général a été appliqué, et des particules sphériques ont été supposées, pour l’estimation de la distribution granulométrique.
4. Induction EAE à l’aide de l’émulsion peptidique MOG 35-55 chez des souris C57BL6/J
NOTE: Dans toutes les expériences, cinq souris femelles C57BL6 / J âgées de 8 à 12 semaines ont été utilisées.
- Avant l’immunisation, anesthésier les souris à l’aide d’isoflurane vaporisé à 2,5 % et confirmer à l’aide d’un pincement ferme des orteils.
- Injecter chaque souris par voie sous-cutanée à l’aide de seringues de 1 mL dans deux sites différents, sur les côtés droit et gauche du flanc postérieur, avec 200 μL d’émulsion contenant 50 μg de peptide MOG35-55 dans un rapport 1:1 (v/v) peptide/CFA.
- Au moins 1,5 h après l’immunisation avec l’émulsion, puis de nouveau après 24 h, administrer un total de 80 ng de toxine Bordetella pertussis dans 200 μL de tampon de toxine coqueluche à chaque souris, par injections intrapéritonéales (100 μL à gauche et 100 μL à droite du ventre).
NOTE: La localisation précise de l’injection intrapéritonéale avec la toxine de la coqueluche s’est avérée essentielle pour l’activation des lymphocytes T dans le ganglion lymphatique drainant15. - Facultatif : Injectez à nouveau le peptide MOG35-55 le jour 7 (tel qu’utilisé dans certains protocoles16) en répétant l’étape 4.2.
REMARQUE : Plus important encore, assurez-vous que les seringues et les aiguilles utilisées pour l’immunisation contenant du MOG/CFA ou de la toxine de la coqueluche sont éliminées adéquatement dans des sacs/contenants présentant un risque biologique. - Évaluer le score clinique quotidiennement, en utilisant une échelle de 0 à 6 comme décrit précédemment6.
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Representative Results
Le protocole rapide, simple et normalisé pour la préparation des émulsions CFA/MOG est illustré à la figure 1. Cette méthode a récemment été décrite ailleurs6. Les émulsions CFA/MOG peuvent également être préparées avec d’autres méthodes, telles que la méthode traditionnelle de seringue ou par vortex. Ces méthodes ont été comparées ici en évaluant la qualité des émulsions. Toutes les méthodes ont produit des émulsions eau dans huile; L’homogénéité et la qualité de ces émulsions ont été évaluées en ajoutant une petite goutte sur une lame de verre suivie d’une observation au microscope à contraste de phase. Les émulsions produites par la méthode d’homogénéisation par agitation présentaient des particules grises/blanches en forme de haricot, représentant de minuscules gouttelettes d’émulsions eau-dans-huile. En revanche, les gouttelettes d’émulsion produites à l’aide de la méthode de la seringue étaient plus grosses et plus blanches. Dans la méthode du vortex, de grosses particules grises/noires ont été observées, correspondant à des bulles d’air piégées dans l’émulsion (Figure 2A).
Pour tester la stabilité à long terme des émulsions eau dans huile, les changements dans la distribution granulométrique au fil du temps peuvent être mesurés à l’aide d’un analyseur de taille de particules par diffraction laser. Les émulsions préparées avec le protocole standardisé décrit ici n’ont montré aucun changement de taille des particules sur une période de 6 semaines (Figure 2B). Par conséquent, la possibilité que les émulsions contenant le peptide MOG35-55 puissent être stockées à 4 ° C pendant une période prolongée tout en induisant une maladie a été testée. Les émulsions contenant le peptide CFA/MOG35-55 ont été préparées avec cette méthode et utilisées immédiatement ou conservées à 4 °C pendant 3 ou 15 semaines (Figure 3A). Des souris ont été injectées avec 50 μg de peptide MOG35-55 et notées pour les signes cliniques de la maladie tels que décrits dans le protocole. Remarquablement, les émulsions fraîches, âgées de 3 semaines et de 15 semaines, ont toutes induit une maladie EAE similaire chez tous les animaux testés tout au long de l’expérience (Figure 3A). Ainsi, ces résultats ont révélé que les émulsions contenant des peptides MOG35-55 préparés à l’aide de la méthode d’homogénéisation par agitation peuvent être conservées pendant au moins 15 semaines et induisent encore des EAE avec des scores de maladie comparables à ceux obtenus avec des émulsions fraîchement préparées.
Pour simplifier et accélérer la mise en place des expériences et éviter la différence de réactifs d’un lot à l’autre, tous les composants nécessaires ont été préparés, aliquotes et stockés à la température appropriée à l’avance. Ensuite, cinq expériences ont été réalisées sur une période de 6 mois. Les souris C57BL6/J ont été immunisées avec les émulsions MOG/CFA préparées le jour de l’immunisation, à l’aide de trousses d’émulsion, et évaluées pour les symptômes cliniques. Les souris ont développé un schéma pathologique similaire dans toutes les expériences (Figure 3B), révélant que la méthode d’homogénéisation présentée ici produisait des émulsions qui induisaient l’EAE de manière cohérente et reproductible.
Le temps total de préparation, de la récupération de tous les réactifs, de leur ajout et de l’agitation du tube trois fois, et du chargement des seringues avec l’émulsion, prête pour la vaccination, ne prend pas plus de 30 minutes. De plus, seulement 20% de l’émulsion supplémentaire doit être préparée. Cela contraste fortement avec d’autres protocoles, où le temps de préparation peut aller jusqu’à 1,5-2 h et où il peut être nécessaire de préparer 50% à 100% de l’émulsion supplémentaire pour assurer une quantité suffisante de matériel pour la vaccination16.
Figure 1 : Schéma du processus de préparation de l’émulsion à l’aide d’un kit d’émulsion commercial. Cette figure a été réutilisée à partir de Topping et al6 avec permission. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Figure 2 : Caractérisation des émulsions produites à l’aide de différentes méthodes. (A) Images représentatives de trois méthodes de préparation différentes: méthode d’homogénéisation standard, méthode traditionnelle à la seringue et méthode vortex. Une petite quantité d’émulsion a été placée sur une lame de verre et observée sous un microscope à contraste de phase (400x). Barre d’échelle = 50 μm. Une préparation représentative de chaque méthode est présentée à partir de >15 expériences. La moyenne D [4, 3] (la moyenne pondérée en fonction du volume) a été mesurée avec un analyseur granulométrique à 0,7 μm pour la méthode d’homogénéisation par agitation, à 1,4 μm pour la méthode à la seringue et à 5,4 μm pour la méthode du vortex. (B) La stabilité de l’émulsion dans le temps a été mesurée à l’aide de l’analyseur granulométrique. Une émulsion de CFA/PBS a été préparée avec l’homogénéisateur agitateur et le kit d’émulsion, et la taille des particules a été déterminée, en utilisant la diffraction laser au fil du temps. Un échantillon a été analysé immédiatement, puis les émulsions ont été stockées à 4 °C. Ces échantillons ont été analysés 1, 2, 4 et 6 semaines après la préparation. La moyenne moyenne pondérée en fonction du volume D [4, 3] pour tous les échantillons était de 0,73 μm ± 0,03 μm (ET). Cette figure a été réutilisée à partir de Topping et al6 avec permission. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Figure 3 : Induction de l’EAE chez des souris immunisées avec une préparation de peptide/CFA MOG35-55 à l’aide d’une trousse d’émulsion commerciale. (A) Induction EAE de l’émulsion stockée. Des émulsions contenant du CFA et 50 μg de peptide MOG35-55/souris ont été préparées avec la méthode d’homogénéisation et conservées à 4 °C pendant 3 ou 15 semaines. Les émulsions fraîchement préparées et stockées ont été injectées le même jour à des souris C57BL/6J (n = 5 par groupe). Les souris ont reçu 80 ng de toxine de la coqueluche le même jour et 24 heures plus tard, et ont été notées pour les signes de maladie en utilisant des scores cliniques de 0 à 6. (B) Induction cohérente d’EAE avec les émulsions préparées selon la méthode d’homogénéisation. Des émulsions contenant du CFA et 50 μg de peptide MOG35-55/souris ont été préparées à différents moments et injectées à des souris C57BL/6J (n = 5 par groupe). Les souris ont reçu 80 ng de toxine de la coqueluche le même jour et 24 heures plus tard, et ont été notées pour les signes de maladie. Cette figure a été réutilisée à partir de Topping et al6 avec permission. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Fichier supplémentaire 1 : Calcul de la quantité de chaque réactif (peptide MOG35-55 , PBS, CFA et IFA) pour la préparation de l’émulsion. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
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Discussion
Les émulsions eau-dans-huile, telles que l’antigène/adjuvant de Freund, sont utilisées depuis plus d’un demi-siècle pour induire EAE17. Il n’existe actuellement aucune méthode normalisée pour préparer des émulsions d’antigènes indépendante de l’influence humaine. Le mélange manuel à l’aide de seringues est standard pour la plupart des laboratoires, mais cette méthode prend du temps, entraîne souvent une perte excessive de matériel et la qualité diffère selon le scientifique qui la prépare.
La méthode présentée dans ce manuscrit utilise une machine d’homogénéisation à agitation standard pour préparer les émulsions antigène/CFA. De plus, tous les réactifs utilisés ici peuvent être aliquotes et stockés pendant une longue période, ce qui facilite et accélère la préparation des émulsions. Le temps total de préparation des émulsions pour un maximum de 80 souris est d’environ 30 minutes. Ceci est en contraste frappant avec d’autres méthodes publiées, qui nécessitent 1-1,5 h pour préparer les émulsions MOG35-55 16,18. D’autres méthodes manuelles, telles que la méthode à une seringue, sont souvent associées à l’introduction de bulles d’air dans les seringues5. La méthode présentée ici a été conçue pour que l’émulsion soit poussée dans les seringues à partir de leur extrémité arrière, ce qui élimine l’introduction de bulles d’air et minimise la perte de matière.
Pour assurer des résultats cohérents et un gaspillage minimal d’émulsion, certaines étapes critiques de la méthode d’homogénéisation par agitation nécessitent une attention particulière. Le tube et les réactifs doivent être placés sur de la glace avant le début de l’expérience et après l’étape d’homogénéisation. Le PBS et l’antigène doivent d’abord être ajoutés au tube, suivis de l’adjuvant (CFA/IFA), afin d’éviter des concentrations locales élevées d’antigène lors du mélange avec l’adjuvant huileux. Le couvercle doit être serré fermement en l’ouvrant et en le fermant plusieurs fois pour éviter les fuites. De plus, la seringue ne doit pas être remplie complètement avec l’émulsion, seulement jusqu’à la marque de 0,15 mL sur le corps de la seringue pour éviter de gaspiller l’émulsion. Le piston doit être inséré dans la seringue très soigneusement, en utilisant les deux mains. Une fois que toutes les seringues sont remplies de l’émulsion, les seringues peuvent être conservées à température ambiante si elles doivent être utilisées le même jour; sinon, ils doivent être conservés à 4 °C jusqu’à utilisation.
Les émulsions antigène/CFA préparées par la méthode d’homogénéisation par agitation peuvent sembler moins fermes que celles préparées avec la méthode de la seringue. Une étape d’agitation supplémentaire peut être ajoutée (voir étape 2.5 dans le protocole), ce qui pourrait épaissir l’émulsion. Cependant, les émulsions qui réussissent le « test de chute » et l’examen au microscope à contraste de phase induisent EAE quel que soit l’état physique de l’émulsion.
L’investissement initial requis dans une machine d’homogénéisation à secousses est une limitation. Cependant, les étapes de préparation décrites ici garantissent un gaspillage minimal d’émulsion et de l’antigène, qui est souvent coûteux à acheter ou prend beaucoup de temps à préparer. Par conséquent, à long terme, cette méthode est moins chère à utiliser car elle permet d’économiser du temps et des réactifs. L’antigène et le tampon utilisés dans la méthode d’homogénéisation par agitation peuvent affecter la qualité de l’émulsion. Le peptide MOG35-55 dissous dans du PBS sans Ca 2+/Mg 2+ a généré de manière constante des émulsions avec de petites particules uniformes eau-dans-huile (Figure 2A). Cependant, les antigènes peptidiques dissous dans le PBS avec Ca 2+/Mg2+, ou les peptides contenant de nombreux résidus d’acides aminés chargés pourraient générer des émulsions moins visqueuses. La question de savoir si de telles émulsions sont moins susceptibles d’induire des maladies dans des modèles animaux n’a pas été testée. Une autre limite de cette méthode est que pas plus de 8 mL d’émulsion antigène/CFA peuvent être préparés à partir d’un tube. Les tubes ne doivent pas contenir plus de 9,6 mL au total (4,8 mL de PBS/antigène et 4,8 mL de CFA/IFA), ce qui sera suffisant pour charger huit seringues de 1 mL. Bien que le tube puisse contenir un plus grand volume, un peu d’air doit être présent dans le tube, sinon des émulsions parfaites ne seront pas générées. Si plus d’émulsion est nécessaire, il peut être préparé en utilisant des tubes supplémentaires.
Par rapport aux méthodes existantes, il n’y a pas de différence de personne à personne lors de la préparation des émulsions avec la méthode d’homogénéisation par agitation. La méthode la plus couramment utilisée pour préparer des émulsions pour les expériences EAE utilise des seringues qui sont poussées d’avant en arrière à la main19. La force, le temps et la température ne peuvent pas être bien contrôlés, et il est donc difficile de normaliser une méthode à base de seringue. D’autres méthodes de fabrication d’émulsions eau dans huile tirent parti des sonicateurs à bain d’eau à ultrasons. Les émulsions préparées avec une méthode de sonication sont capables d’induire EAE chez des souris BALB / c8 autrement résistantes. La méthode décrite pourrait être normalisée et donc utile. Cependant, le problème avec les bains d’eau à ultrasons et les sondes à ultrasons est qu’il est difficile de transférer l’émulsion dans les tubes aux seringues utilisées pour l’immunisation sans introduire de bulles d’air. Les tubes utilisés pour la méthode présentée ici éliminent ce problème.
Une méthode vortex pourrait être considérée comme une méthode normalisée avec une vitesse, un temps et une température définis. Cependant, l’essai de cette méthode pour préparer une émulsion en vortex de la préparation MOG/CFA pendant 10 minutes n’a entraîné aucune induction de la maladie chez les souris C57BL/6J (données non présentées). Néanmoins, l’EAE peut être induite avec un mélange antigène/CFA préparé par vortex pendant 45 min18, ce qui serait une procédure beaucoup plus longue par rapport à la méthode présentée dans ce manuscrit.
Un autre adjuvant à base d’huile (voir le tableau des matériaux), approuvé par la FDA pour être utilisé sur les humains, qui produit une émulsion eau dans l’huile, s’est avéré être un adjuvant prometteur pour les vaccins contre le cancer et le paludisme20,21,22. Par conséquent, le protocole standardisé présenté ici peut être adapté pour être utilisé en clinique. Des expériences préliminaires ont révélé que la méthode d’homogénéisation par agitation génère des émulsions avec cette huile approuvée par la FDA qui sont de meilleure qualité par rapport à la méthode de la seringue manuelle (données non présentées).
En conclusion, la méthode d’homogénéisation par agitation présentée ici offre un certain nombre d’avantages, tels que la génération plus rapide d’émulsions de qualité contrôlée, une reproductibilité élevée dans un certain nombre de modèles de maladies auto-immunes et une réduction des réactifs coûteux nécessaires à la préparation des émulsions antigène / CFA. Comme il n’y a pas de différence de personne à personne générant ces émulsions eau dans huile, il offre la possibilité de normaliser cette méthode nécessaire à la recherche biomédicale reproductible et à la découverte de médicaments dans le domaine des maladies auto-immunes et du développement de vaccins thérapeutiques.
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Disclosures
BTB Emulsions AB a déposé une demande de brevet pour l’utilisation d’un dispositif et d’un procédé de préparation d’émulsions pour l’immunisation et les animaux et humains (numéro de demande de brevet européen : EP3836884A1). BTB est le PDG et fondateur de l’entreprise, et actionnaire de BTB Emulsions. Bertin-Instruments distribue les kits d’émulsion utilisés dans cette publication dans le monde entier.
Acknowledgments
L’auteur tient à remercier les unités de logement des animaux de l’Université de Lund, Camilla Björklöv et Agnieszka Czopek, pour leur soutien, ainsi que Richard Williams, Kennedy Institute of Rheumatology, Université d’Oxford, Royaume-Uni, pour la critique constructive et le soutien linguistique qui ont produit ce manuscrit.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1 mL Injection syringe | B. Braun | 9166017V | |
| 1 mL Injection syringe | Sigma-Aldrich | Z683531 | |
| 7 ml empty tubes with caps | Bertin-Instruments | P000944LYSK0A.0 | 7 mL tube |
| 50 mL sterile centrifuge tube | Fisher Scientific | 10788561 | 50 mL tube |
| Bordetella pertussis toxin | Sigma-Aldrich | P2980 | Store at -20 °C |
| Dispersant, light mineral oil | Sigma-Aldrich | M8410 | Store at RT |
| Emulsion kit | Bertin-Instruments | D34200.10 ea | Containing a tube, cap, and plunger |
| Incomplete Freund's Adjuvant | Sigma-Aldrich | F5506 | Store at +4 °C |
| Mycobacterium tuberculosis, H37RA | Fisher Scientific | DF3114-33-8 | Store at +4 °C |
| Mastersizer 2000 | Malvern Panalytical | N/A | Particle size analyzer |
| Minilys-Personal homogenizer | Bertin-Instruments | P000673-MLYS0-A | Shaking homogenizer |
| MOG 35-55 Peptide | Innovagen | N/A | |
| Montanide ISA 51 VG | Seppic | 36362Z | FDA-approved oil adjuvant |
| Pall Acrodisc Syringe Filters 0.2 μm | Fisher Scientific | 17124381 | Sterlie filter |
| PBS, Ca2+/Mg2+ free | Thermo Fisher Scientific | 14190144 | PBS |
| Phase-Constrast Microscope | Olympus | BX40-B | |
| Steel Beads 3.2 mm | Fisher Scientific | NC0445832 | Autoclave and store at RT |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | 648463 | Store at RT |
References
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