Summary
甲醇可作为视网膜全膜制剂和长期储存的辅助固定培养基,可用于视网膜神经节细胞的研究。
Abstract
视网膜神经节细胞(RGC)是视网膜的投射神经元,将外部视觉信息传播到大脑。RGCs的病理变化与许多视网膜退行性疾病密切相关。全卡口视网膜免疫染色经常用于RGC的实验研究,以评估视网膜的发育和病理状况。在某些情况下,一些有价值的视网膜样本,例如来自转基因小鼠的样本,可能需要长期保留,而不会影响RGC的形态或数量。为了获得可信和可重复的实验结果,使用有效的保存介质至关重要。在这里,我们描述了甲醇作为辅助固定培养基的作用,用于视网膜整体安装制备和长期储存。简而言之,在分离过程中,将冷甲醇(-20°C)移液到视网膜表面以帮助固定组织并促进其通透性,然后将视网膜储存在冷甲醇(-20°C)中,然后进行免疫染色。该协议描述了视网膜分离工作流程和组织样本储存协议,这对于RGC的研究是有用和实用的。
Introduction
视网膜神经节细胞(RGC)是视网膜中唯一的投射神经元,它们整合并将外部视觉信息传递给大脑1。许多神经退行性疾病,如青光眼和创伤性视神经病变,其特征是RGCs2,3的不可逆转的损伤和丧失。分析RGCs的形态和数量变化是确定神经退行性疾病如何发展和进展的关键步骤4,5。
间接免疫荧光测定是一种广泛接受的监测蛋白质分布和细胞计数的方法。在实验室中,全卡口视网膜免疫染色通常用于RGCs的实验研究,以评估视网膜的生理和病理状况6。用于整个视网膜中RGC定量的最常见标志物包括Brn3a,具有多次剪接的RNA结合蛋白(RBPMS)等7,8。表征RGC的数量和分布需要高质量的全安装视网膜免疫染色。通常,在免疫染色方案中,视网膜在抗体中孵育之前浸入化学固定剂中。理想的固定剂不应改变细胞的形状、抗体表位的可及性或亲和力或组织的线性尺寸9,10。
由于视网膜结构复杂,在制作全贴片视网膜贴片时容易出现视网膜脆性和折叠等问题,以及细胞收缩和细胞核不清晰等一些常见困难,这对实验研究产生了负面影响。此外,并非所有视网膜都会立即进行免疫染色,特别是当涉及到价格昂贵且来源珍贵的转基因小鼠的视网膜时,需要保存额外的视网膜样本以供进一步使用。
适当的固定液可以快速固定组织,避免组织自溶,保持组织细胞的正常形态和结构,并保持蛋白质和其他物质的抗原性10。目前,基于甲醛的固定已广泛应用于各种组织,包括分离的视网膜,半切的眼罩和整个眼球10。组织收缩和细胞形态改变是浸泡在甲醛11中后遇到的两个关键挑战。此外,改良的固定配方正在越来越多地出现,以最大限度地保留视网膜和靶细胞的原始特性9,10。不同的视网膜固定治疗对视网膜结构、蛋白质免疫原性、荧光激发和衰减猝灭周期的影响可能不同12,13。与用福尔马林固定的视网膜相比,用戴维森溶液固定的视网膜在形态上更完整,但戴维森溶液与某些抗体的相容性较差,例如小胶质细胞标记电离钙结合接头分子112。考虑到视网膜的脆弱性质,研究人员自然会想知道视网膜完整性以及靶细胞的性质和形态在长期储存后是否会发生变化。然而,固定液在储存数月后对视网膜和RGC细胞形态的可能影响很少有报道。视网膜固定的优化对于RGC的评估和保存至关重要。
我们详细介绍了一种可靠且技术上简单的方法,该方法用于全安装鼠视网膜染色。我们的方法强调为RGC研究正确准备和储存视网膜,同时考虑到视网膜组织长期储存的需要以及荧光团形成或降解的特定方面。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
除非另有说明,否则所有步骤均在室温下进行。所有使用的C57BL / 6J小鼠均从武汉大学实验动物中心获得,所有相关实验均由武汉大学动物实验伦理委员会批准。尽一切努力将小鼠的痛苦降到最低。
1. 眼球摘除和固定
- 用二氧化碳窒息对小鼠实施安乐死,并使用无牙镊子轻轻地去除眼球。
- 用磷酸盐缓冲盐水(PBS)冲洗眼球一次。
- 在显微镜下用注射器针刺穿角膜处的眼球(目镜WF:10x/22;连续放大镜:0.67x-4.5x),以加速注视到眼球中并提高固定效率。
- 转移到含有4%多聚甲醛(PFA)的24孔板中。
- 将眼球固定在4%PFA中45分钟,然后将其转移到1x PBS中以立即去除多余的PFA(洗涤三次,每次5分钟)。
2. 视网膜隔离和扁平化
- 将眼球转移到载玻片上,并将其置于解剖显微镜下(目镜WF:10x/22;连续放大镜:0.67x-4.5x)。
- 一只手握住镊子,用它来夹住角膜的边缘,以防止眼球运动。用另一只手握住解剖剪刀,穿过角巩膜缘,在角膜周围切开约1毫米的深度。取下晶状体和玻璃体。
- 将视盘保持在中心,并使用解剖剪刀沿四个象限放射状切割视网膜,达到视网膜半径的大约 2/3。
- 用齿镊钳夹住巩膜边缘之一。用另一只手用无齿镊子握住巩膜的边缘,并从齿镊固定巩膜的位置向巩膜底部移动。小心地剥离视网膜。
- 使用移液管 (200 μL) 抽出 PBS 冲洗并润湿视网膜,然后用一小张吸收纸去除任何多余的 PBS。如果需要,用小刷毛刷轻轻压平视网膜。
- 将冷甲醇(在-20°C冰箱中预冷)一滴一滴地缓慢移液到视网膜内表面(只要视网膜可以被甲醇完全覆盖,甲醇的体积就不固定)。视网膜变白并发展出更强的韧性。
- 轻轻地使视网膜变平,并用小刷毛刷去除残留的色素膜和玻璃体等杂质。使用小刷毛刷倒置视网膜,然后重复上述过程。
- 将甲醇处理的视网膜转移到24孔板的孔中,并保持其浸泡在甲醇中。
- 将其储存在-20°C下1-2小时以立即免疫染色,或将视网膜留在甲醇中,并将其储存在-20°C以长期储存。
- 从24孔板中取出甲醇,并用1x PBS冲洗视网膜。
3. RGC的免疫荧光染色
- 小心地将视网膜转移到带有塑料巴斯德移液管的24孔血凝板上,并封闭在5%PBS-TX-BSA(5g牛血清白蛋白粉末溶解在100mL的1x PBST溶液中;通过将10mL的Triton X-100添加到2,000mL的1x PBS)在室温下4小时或在4°C下过夜而形成PBST。 保持神经节面朝上。
- 取出 PBS-TX-BSA,并将视网膜在 4 °C 下孵育 48-96 小时,使用 1:400 稀释液加入 100 μL 选定的一抗(豚鼠抗 RBPMS 抗体)。
- 去除一抗,用1x PBS冲洗视网膜三次(每次20分钟),在室温下振荡。
- 将视网膜在4°C下轻轻摇动过夜,与100μL相应的二抗(参见 材料表),花青Cy3 affini纯驴抗豚鼠IgG(H + L),使用1:400稀释。
- 用1x PBS冲洗视网膜三次(每次20分钟)。
- 将视网膜平放在载玻片上,神经节细胞层朝上,用移液管在视网膜周围滴适量的抗荧光猝灭剂,并用盖玻片盖住载玻片(注意不要有气泡)。
注意:要确定抗荧光淬灭剂的适当量,请确保它覆盖整个视网膜。之后,盖上载玻片,不要让视网膜漂浮和轻松移动。 - 用密封剂密封滑块四周以防止其移动。将样品储存在-20°C,并避光。
- 使用荧光/共聚焦显微镜对视网膜进行成像。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
解剖后,视网膜应该看起来像一个扁平的四叶草。在这项研究中,通过使用上述方案,添加甲醇后视网膜变白(图1)。同时,视网膜从柔软变为柔韧平坦。接下来,RGC被标记为抗RBPMS8。使用共聚焦显微镜(目镜:10x;物镜:40x)在整个安装视网膜(n = 3)中拍摄四个图像场。 图2显示了甲醇加工前和甲醇长期保存12个月后视网膜可视化RGC的代表性视图。荧光强度无明显变化。甲醇保存不影响RGC免疫染色。
图1:甲醇治疗后视网膜变化 。 (A)甲醇处理前。(二)甲醇处理后。 请点击此处查看此图的大图。
图2:甲醇对视网膜神经节细胞(RGC)免疫染色的影响 。 (A)未经甲醇处理的视网膜。(B)视网膜在甲醇中储存12个月。 请点击此处查看此图的大图。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
固定是保护视网膜的重要步骤,这可能会影响任何基于形态的后续RGC研究。成功的固定可以快速捕获视网膜在暴露于固定介质时的结构和状态,这对于进一步分析至关重要。尽管甲醛被认为是组织和细胞固定和保存中最常见的固定剂之一,但对于某些研究而言,甲醛本身并不总是作为最佳化学固定剂起作用10,14。不同种类的固定剂具有不同的沉淀氨基酸和核苷酸、稳定蛋白质和维持细胞形态的能力15.通过使用两种固定剂的混合物,可以充分利用每种固定剂的强度16,17。甲醇经常用于许多固定程序,在组织新鲜冷冻或嵌入理想的切割材料16,18之前。对于全卡口实验,使用100%冷(-20°C)甲醇来实现视网膜样品固定,这有助于样品透化,以便随后进行基于荧光的成像19。
甲醇固定的一个关键优点是它易于保存。在该协议中,在视网膜变平后,甲醇在-20°C下逐渐添加到视网膜的前后。很容易观察到,视网膜的颜色迅速从半透明变为乳白色,杂质变得更加清晰。应该注意的是,视网膜应用刷子轻轻压平,以防止在甲醇滴落过程中卷曲。甲醇处理后,视网膜的整体韧性增加,降低了去除杂质和转移视网膜的难度。用甲醇固定后更方便保存已用PFA稍微预先固定的视网膜。但是,当视网膜的韧性提高时,玻璃体和其他杂质的韧性也可能相应增加。可以在使用甲醇之前尝试轻轻去除一些容易去除的杂质,然后在滴注甲醇后去除剩余的杂质,这样更容易执行。早期去除杂质需要足够的实践和经验。建议从视盘向外轻轻刷视网膜上剩余的玻璃体。
在该方案中,在治疗后,将视网膜浸泡在甲醇中并放置在-20°C冰箱中一段时间,然后再进行随后的密封,其他治疗可以进一步增加视网膜的韧性。然而,很难说出一个精确的时间长度,对于浸没固定来说,这是普遍最佳的。如果需要,视网膜可以长时间储存在冷甲醇中。
在这项工作中,使用所提出的方法,研究了甲醇储存对RGC染色的影响 - 这是视网膜定性和定量评估的关键技术。使用甲醇时,RGC的荧光强度(会影响定性和定量测试的结果)在免疫染色过程中不会改变。视网膜可以在染色前无限期地保存在保存溶液冷(-20°C)甲醇中至少12个月。此外,我们之前的研究表明,在甲醇中长期储存后,视神经压碎小鼠模型中的RGC存活率没有显着差异,甲醇保存对氧诱导视网膜病变模型20中视网膜脉管系统和视网膜缺氧的定量分析也影响不大。我们建议依次使用4%PFA和冷(−20°C)甲醇进行样品制备,并在实验室中采用甲醇固定作为储存策略。一个限制是分析不能完全显示树突或轴突水平的细微形态变化,尽管RGC的密度和体细胞的形态似乎没有变化21,22。应该注意的是,在此协议中,我们仅测试了RGC的RBPMS。进一步验证不同的RGC蛋白(例如,Brn3a,神经元核,神经丝-L)将提供更可靠的结果。此外,该方案还有可能应用于视网膜中需要进一步研究的任何其他细胞类型。但长期吸入或直接皮肤接触甲醇可能对人体造成毒性作用。因此,在使用甲醇的过程中要做好预防措施。
我们的方法非常强调使用甲醇固定来储存用于RGC研究的视网膜,并强调了有关RGC定量和荧光强度的重要考虑因素。该协议提供了一种简单实用的方法,以满足保存视网膜样本以供进一步使用的必要性。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
作者不知道任何可能影响本研究客观性的隶属关系、成员资格、资金或金融控股。
Acknowledgments
这项工作由湖北省重点实验室开放项目(批准号:2021KFY055)、湖北省自然科学基金(批准号:2020CFB240)和中央高校基本科研业务费(批准号:2042020kf0065)资助。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
24-well cell culture cluster | Costar | Eyeball fixation | |
24-well hemagglutination plate | Labedit Company | Incubation antibody | |
Adhesion microscope slides | Citotest | Or similar | |
Anti-fluorescent quenching mountant | Servicebio | G1401 | Slow down fluorescence quenching |
BSA (bovine serum albumin) | Servicebio | GC305010 | Blocking reagent |
Confocal microscope | OLYMPUS | Apply 40x objective lens | |
Curved scissors | Jiangsu Kanghua Medical Equipment Co., Ltd. | Dissecting tools | |
Dissecting microscope | RWD Life science Co.,LTD | 77001S | Dissecting tools |
Forceps | Jiangsu Kanghua Medical Equipment Co., Ltd. | Dissecting tools | |
Methanol | Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. | 20210624 | GC≥99.5% |
Nail polish | SecheVite | Sealing agent | |
Needles | Shanghai Kindly Enterprises Development Group Co., Ltd. | Accelerate the fixation | |
Paraformaldehyde solution | Servicebio | G1101 | Eyeball fixation |
PBS (phosphate buffered saline pH 7.4) | Servicebio | G0002 | Rinse the eyeball |
Primary antibody: guinea pig anti-RNA-binding protein with multiple splicing (RBPMS) | PhosphoSolutions | Cat. #1832-RBPMS | For immunofluorescence. Used at 1:400 |
Secondary antibody: Cy3 affiniPure donkey anti-guinea pig IgG (H+L) | Jackson ImmunoResearch | 706-165-148 | For immunofluorescence. Used at 1:400 |
Straight scissors | Jiangsu Kanghua Medical Equipment Co., Ltd. | Dissecting tools |
References
- Sanes, J. R., Masland, R. H. The types of retinal ganglion cells: Current status and implications for neuronal classification. Annual Review of Neuroscience. 38, 221-246 (2015).
- Almasieh, M., Wilson, A. M., Morquette, B., Cueva Vargas, J. L., Di Polo, A. The molecular basis of retinal ganglion cell death in glaucoma. Progress in Retinal and Eye Research. 31 (2), 152-181 (2012).
- Au, N. P. B., Ma, C. H. E. Neuroinflammation, microglia and implications for retinal ganglion cell survival and axon regeneration in traumatic optic neuropathy. Frontiers in Immunology. 13, 860070 (2022).
- Pavlidis, M., Stupp, T., Naskar, R., Cengiz, C., Thanos, S. Retinal ganglion cells resistant to advanced glaucoma: A postmortem study of human retinas with the carbocyanine dye DiI. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 44 (12), 5196-5205 (2003).
- Vidal-Sanz, M., et al. Understanding glaucomatous damage: anatomical and functional data from ocular hypertensive rodent retinas. Progress in Retinal and Eye Research. 31 (1), 1-27 (2012).
- Kole, C., et al. Activating transcription factor 3 (ATF3) protects retinal ganglion cells and promotes functional preservation after optic nerve crush. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 61 (2), 31 (2020).
- Nadal-Nicolás, F. M., et al. Brn3a as a marker of retinal ganglion cells: qualitative and quantitative time course studies in naive and optic nerve-injured retinas. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50 (8), 3860-3868 (2009).
- Kwong, J. M., Caprioli, J., Piri, N. RNA binding protein with multiple splicing: A new marker for retinal ganglion cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 51 (2), 1052-1058 (2010).
- Stradleigh, T. W., Ishida, A. T. Fixation strategies for retinal immunohistochemistry. Progress in Retinal and Eye Research. 48, 181-202 (2015).
- Stradleigh, T. W., Greenberg, K. P., Partida, G. J., Pham, A., Ishida, A. T. Moniliform deformation of retinal ganglion cells by formaldehyde-based fixatives. Journal of Comparative Neurology. 523 (4), 545-564 (2015).
- Bucher, D., Scholz, M., Stetter, M., Obermayer, K., Pflüger, H. J. Correction methods for three-dimensional reconstructions from confocal images: I. Tissue shrinking and axial scaling. Journal of Neuroscience Methods. 100 (1-2), 135-143 (2000).
- Chidlow, G., Daymon, M., Wood, J. P., Casson, R. J. Localization of a wide-ranging panel of antigens in the rat retina by immunohistochemistry: Comparison of Davidson's solution and formalin as fixatives. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 59 (10), 884-898 (2011).
- Tokuda, K., et al. Optimization of fixative solution for retinal morphology: A comparison with Davidson's fixative and other fixation solutions. Japanese Journal of Ophthalmology. 62 (4), 481-490 (2018).
- Miki, M., Ohishi, N., Nakamura, E., Furumi, A., Mizuhashi, F. Improved fixation of the whole bodies of fish by a double-fixation method with formalin solution and Bouin's fluid or Davidson's fluid. Journal of Toxicologic Pathology. 31 (3), 201-206 (2018).
- Zanini, C., Gerbaudo, E., Ercole, E., Vendramin, A., Forni, M. Evaluation of two commercial and three home-made fixatives for the substitution of formalin: A formaldehyde-free laboratory is possible. Environmental Health. 11, 59 (2012).
- Tang, M., et al. An optimized method to visualize the goblet cell-associated antigen passages and identify goblet cells in the intestine, conjunctiva, and airway. Immunobiology. 227 (6), 152260 (2022).
- Brock, R., Hamelers, I. H., Jovin, T. M. Comparison of fixation protocols for adherent cultured cells applied to a GFP fusion protein of the epidermal growth factor receptor. Cytometry. 35 (4), 353-362 (1999).
- Baykal, B., Korkmaz, C., Kocabiyik, N., Ceylan, O. M. The influence of post-fixation on visualising vimentin in the retina using immunofluorescence method. Folia Morphologica. 77 (2), 246-252 (2018).
- Powner, M. B., et al. Visualization of gene expression in whole mouse retina by in situ hybridization. Nature Protocols. 7 (6), 1086-1096 (2012).
- Zhang, N., Cao, W., He, X., Xing, Y., Yang, N. Using methanol to preserve retinas for immunostaining. Clinical and Experimental Ophthalmology. 50 (3), 325-333 (2022).
- Kalesnykas, G., et al. Retinal ganglion cell morphology after optic nerve crush and experimental glaucoma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (7), 3847-3857 (2012).
- Parrilla-Reverter, G., et al. Time-course of the retinal nerve fibre layer degeneration after complete intra-orbital optic nerve transection or crush: a comparative study. Vision Research. 49 (23), 2808-2825 (2009).