Summary

Скрининг ионных каналов в раковых клетках

Published: June 16, 2023
doi:

Summary

Фармакологическое таргетирование ионных каналов является перспективным подходом к лечению солидных опухолей. Предоставлены подробные протоколы для характеристики функции ионных каналов в раковых клетках и анализа влияния модуляторов ионных каналов на жизнеспособность рака.

Abstract

Ионные каналы имеют решающее значение для развития клеток и поддержания клеточного гомеостаза. Нарушение функции ионных каналов способствует развитию широкого спектра расстройств или каналопатий. Раковые клетки используют ионные каналы, чтобы стимулировать свое собственное развитие, а также совершенствоваться как опухоль и ассимилироваться в микросреде, которая включает в себя различные нераковые клетки. Кроме того, повышение уровня факторов роста и гормонов в микроокружении опухоли может привести к усилению экспрессии ионных каналов, что способствует пролиферации и выживанию раковых клеток. Таким образом, фармакологическое воздействие на ионные каналы является потенциально перспективным подходом к лечению солидных злокачественных новообразований, включая первичный и метастатический рак головного мозга. Описаны протоколы характеристики функции ионных каналов в раковых клетках и подходы к анализу модуляторов ионных каналов для определения их влияния на жизнеспособность рака. К ним относятся окрашивание клетки (клеток) на ионный канал (каналы), тестирование поляризованного состояния митохондрий, установление функции ионных каналов с помощью электрофизиологии и проведение анализа жизнеспособности для оценки эффективности препарата.

Introduction

Мембранные транспортные белки имеют решающее значение для коммуникации между клетками, а также для поддержания клеточного гомеостаза. Среди мембранных транспортных белков ионные каналы служат для стимулирования роста и развития клеток, а также для поддержания состояния клеток в сложных и изменяющихся условиях. Кроме того, сообщалось, что ионные каналы стимулируют и поддерживают развитие солидных опухолей как системно, так и в центральной нервной системе (ЦНС)1,2. Например, каналы KCa3.1 отвечают за регулирование мембранного потенциала и контроль объема клеток, что важно для регуляции клеточного цикла. Сообщалось, что дефектные каналы KCa3.1 способствуют аномальной пролиферации опухолевых клеток3. Кроме того, ионные каналы могут способствовать метастатической диссеминации рака. Каналы транзиторного рецепторного потенциала (TRP), например, участвуют в притоке Ca2+ иMg2+; Этот приток активирует несколько киназ и белков теплового шока, которые функционируют для регуляции внеклеточного матрикса, окружающего опухоль, что, в свою очередь, важно для инициирования метастазирования рака4.

Поскольку ионные каналы могут способствовать развитию рака, они также могут быть мишенями для медикаментозного лечения рака. Например, резистентность к методам лечения, включая химиотерапию и новую иммунотерапию, связана с дисрегуляцией функции ионных каналов 5,6,7. Кроме того, ионные каналы становятся важными мишенями для лекарств, препятствующих росту и развитию рака, при этом исследуются перепрофилированные низкомолекулярные препараты (одобренные FDA), а также биополимеры, включая моноклональные антитела 1,2,8,9. Несмотря на значительный прогресс на этом фронте, разработка лекарств от рака ионных каналов остается недостаточно разработанной. Отчасти это связано с уникальными проблемами изучения ионных каналов в раковых клетках. Например, существуют технические ограничения в настройке электрофизиологических анализов для медленно действующих соединений и временные различия в активации каналов и действии лекарств. Кроме того, растворимость соединений также может препятствовать прогрессу, поскольку большинство автоматизированных электрофизиологических систем, широко используемых сегодня, используют гидрофобные субстраты, которые могут способствовать возникновению артефактов в результате адсорбции соединений. Кроме того, крупные биоорганические молекулярные терапевтические средства, такие как натуральные продукты, пептиды и моноклональные антитела, технически сложны для скрининга с помощью традиционных электрофизиологических анализов10. Наконец, биоэлектрические свойства раковых клеток остаютсямалоизученными.

Между тем, иммунофлуоресцентное окрашивание ионных каналов часто является сложной задачей. Отчасти это связано со сложностью их структур и контекстом в мембране, которые влияют на способность генерировать и использовать антитела для микроскопических исследований. Особенно важно, чтобы антитела, используемые для окрашивания ионных каналов, были проверены на специфичность, сродство и воспроизводимость. Коммерческие антитела к ионным каналам следует рассматривать на основе стратегии валидации и публикаций. Эксперименты должны включать отрицательный контроль, чтобы продемонстрировать отсутствие неспецифического связывания путем нокдауна или нокаута белка-мишени. В качестве альтернативы, клеточные линии, в которых целевой белок отсутствует или находится в низком количестве, основанные на определении мРНК или белка, могут служить отрицательным контролем. Например, это исследование показывает локализацию субъединицы рецептора (ГАМК) Gabra5 в клеточной линии медуллобластомы (D283). Клетки D283 с нокдауном миРНК и клетки Daoy, еще одна клеточная линия мозжечковой медуллобластомы, были окрашены на Gabra5 и не показали заметного окрашивания (данные не показаны).

Представлены методы анализа и анализа функции ионных каналов, а также влияния модуляторов ионных каналов на раковые клетки. Предусмотрены протоколы для (1) окрашивания клеток для ионного канала, (2) тестирования поляризованного состояния митохондрий, (3) установления функции ионных каналов с помощью электрофизиологии и (4) валидации лекарств in vitro. В этих протоколах особое внимание уделяется исследованиям рецептора гамма-аминомасляной кислоты (ГАМКА) типа А 2,12,13,14,15,16, хлорид-анионного канала и главного тормозного рецептора нейротрансмиттера. Однако методы, представленные здесь, применимы и к изучению многих других раковых клеток и ионных каналов.

Protocol

1. Иммуномечение ионных каналов в культивируемых клетках Подготовка клеток и экспериментальная установкаПоддерживают клетки как активно растущую культуру в культуральных колбах по 75см2 . Проходите клетки один раз, пока они не станут сливающимися на 50%-90%, в зависимости о…

Representative Results

Выше приведены некоторые процедуры, которые могут быть использованы для характеристики ионных каналов в раковых клетках. В первом протоколе особое внимание уделяется окрашиванию ионного канала. Как уже говорилось, при окрашивании ионного канала или, если уж на то пошло, любого белка, п…

Discussion

Изменения в функционировании ионных каналов изменяют внутриклеточные сигнальные каскады, которые могут влиять на общее функционирование клетки. За последнее десятилетие стало все более очевидным, что ионные каналы играют важную роль в росте и метастазировании раковых клеток. Важно о…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы выражают признательность Фонду семьи Томаса Э. и Памелы М. Мишель С.С. и Фонду Гарольда К. Шотта, который финансировал Медицинский колледж Калифорнийского университета.

Materials

ABS SpectraMax Plate Reader Molecular Devices ABS
Accutase Invitrogen 00-4555-56
Alexa Flor 488 Invitrogen A32723 Goat Anti-Rabbit
Antibiotic-Antimycotic Gibco 15240-062 100x
B27 Supplement Gibco 12587-010 Lacks vitamin A
Biosafety Cabinet LABCONCO 302381101 Class II, Type A2
Bovine Serum Albumin Fisher Scientific BP1606-100
CO2 Incubator Fisher Scientific 13-998-211 Heracell VIOS 160i
Calcium Chloride Fisher Scientific C7902 Dihydrate
Cell Culture Dishes, 150 mm Fisher Scientific 12-600-004 Cell culture treated
Cell Culture Flasks, 75 cm2 Fisher Scientific 430641U Cell culture treated
Cell Culture Plates, 6 well Fisher Scientific 353046 Cell culture treated
Cell Culture Plates, 96 well Fisher Scientific 353072 Cell culture treated
Centrifuge Eppendorf EP-5804R Refrigerated
Corning CoolCell Fisher Scientific 07-210-0006
Coverslips, 22 x 22 mm Fisher Scientific 12-553-450 Corning brand
D283 Med ATCC HTB-185
DABCO Mounting Media EMS 17989-97
D-Glucose Sigma Life Sciences D9434
Dimethyl Sulfoxide Sigma Aldrich D2650 Cell culture grade
DMEM/F12, base media Fisher Scientific 11330-032 With phenol red
DMEM/F12, phenol red free Fisher Scientific 21041-025
EGTA Sigma Aldrich E4378
Epidermal Growth Factor STEMCELL 78006.1
FCCP Abcam AB120081
Fetal Bovine Serum, Qualified Gibco 10437-028
Fibroblast Growth Factor, Basic Millipore GF003
GARBA5 Antibody Aviva ARP30687_P050 Rabbit Polyclonal
Glutamax Gibco 35050-061
Glycerol Mounting Medium EMS 17989-60 With DAPI+DABCO
Hemocytometer Millipore Sigma
Heparin STEMCELL 7980
HEPES HyClone SH3023701 Solution
HEPES Fisher Scientific BP310-500 Solid
ImageJ Open platform With Fiji plugins
Immuno Mount DAPI EMS 17989-97
KRM-II-08 experimental compounds not available from a commercial source
Leica Application Suite X Leica Microsystems
Leukemia Inhibitory Factor Novus N276314100U
L-Glutamine Gibco 25030-081
Magnesium Chloride Sigma Aldrich M9272 Hexahydrate
Microscope, Confocal Leica SP8
Microscope, Light VWR 76382-982 DMiL Inverted
MTS – Promega One Step Promega G3581
Multi-channel pipette, 0.5-10 µL Eppendorf Z683914
Multi-channel pipette, 10-100 µL Eppendorf Z683930
Multi-channel pipette, 30-300 µL Eppendorf Z683957
Nest-O-Patch Heka
Neurobasal-A Medium Gibco 10888022 Without vitamin A
Neurobasal-A Medium Gibco 12348-017 Phenol red free
Non-Essential Amino Acids Gibco 11140-050
NOR-QH-II-66 experimental compounds not available from a commercial source
Parafilm Fisher Scientific 50-998-944 4 inch width
Paraformaldehyde EMS RT-15710
PATHCHMASTER Heka
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122
Perfusion System Nanion 4000120
PFA EMS RT-15710
Phosphate Bufered Saline Fisher Scientific AAJ75889K2 Reagent grade
Poly-D-Lysine Fisher Scientific A3890401
Poly-L-Lysine Sigma Life Sciences P4707
Port-a-Patch Nanion 21000072
Potassium Chloride Sigma Life Sciences P5405
Primary Antibody Invitrogen MA5-34653 Rabbit Monoclonal
Prism GraphPad
Propofol Fisher Scientific NC0758676 1 mL ampule
QH-II-66 experimental compounds not available from a commercial source
Reagent Reservoirs VWR 89094-664 Sterile
Slides, 75 x 25 mm Fisher Scientific 12-544-7 Frosted one side
Sodium Bicarbonate Corning 25-035-Cl
Sodium Chloride Fisher Scientific S271-3
Sodium Pyruvate Gibco 11360-070
Synth-a-Freeze Medium Gibco R00550 Cryopreservation
TMRE Fisher Scientific 50-196-4741 Reagent
TMRE Kit Abcam AB113852 Kit
Triton X-100 Sigma Aldrich NC0704309
Trypan Blue Gibco 15-250-061 Solution, 0.4%
Trypsin/EDTA Gibco 25200-072 Solution, 0.25%
Vortex Mixer VWR 97043-562
Whatman Filter Paper Fisher Scientific 09-927-841

References

  1. Prevarskaya, N., Skryma, R., Shuba, Y. Ion channels in cancer: Are cancer hallmarks oncochannelopathies. Physiological Reviews. 98 (2), 559-621 (2018).
  2. Rao, R., et al. Ligand-gated neurotransmitter receptors as targets for treatment and management of cancers. Frontiers in Physiology. 13, 839437 (2022).
  3. Mohr, C. J., et al. Cancer-associated intermediate conductance Ca2+-activated K+ channel KCa3.1. Cancers. 11 (1), 109 (2019).
  4. Fels, B., Bulk, E., Petho, Z., Schwab, A. The role of TRP channels in the metastatic cascade. Pharmaceuticals. 11 (2), 48 (2018).
  5. Eil, R., et al. Ionic immune suppression within the tumour microenvironment limits T cell effector function. Nature. 537 (7621), 539-543 (2016).
  6. Haustrate, A., Hantute-Ghesquier, A., Prevarskaya, N., Lehen’kyi, V. Monoclonal antibodies targeting ion channels and their therapeutic potential. Frontiers in Pharmacology. 10, 606 (2019).
  7. Kischel, P., et al. Ion channels: New actors playing in chemotherapeutic resistance. Cancers. 11 (3), 376 (2019).
  8. Tuszynski, J., Tilli, T. M., Levin, M. Ion channel and neurotransmitter modulators as electroceutical approaches to the control of cancer. Current Pharmaceutical Design. 23 (32), 4827-4841 (2017).
  9. Kale, V. P., Amin, S. G., Pandey, M. K. Targeting ion channels for cancer therapy by repurposing the approved drugs. Biochimica Biophysica Acta. 1848 (10), 2747-2755 (2015).
  10. Wickenden, A., Priest, B., Erdemli, G. Ion channel drug discovery: Challenges and future directions. Future Medicinal Chemistry. 4 (5), 661-679 (2012).
  11. Rocha, P. R. F., Elghajiji, A., Tosh, D. Ultrasensitive system for electrophysiology of cancer cell populations: A review. Bioelectricity. 1 (3), 131-138 (2019).
  12. Sengupta, S., et al. α5-GABAA receptors negatively regulate MYC-amplified medulloblastoma growth. Acta Neuropathologica. 127 (4), 593-603 (2014).
  13. Jonas, O., et al. First in vivo testing of compounds targeting Group 3 medulloblastomas using an implantable microdevice as a new paradigm for drug development. Journal of Biomedical Nanotechnology. 12 (6), 1297-1302 (2016).
  14. Kallay, L., et al. Modulating native GABAA receptors in medulloblastoma with positive allosteric benzodiazepine-derivatives induces cell death. Journal of Neurooncology. 142 (3), 411-422 (2019).
  15. Pomeranz Krummel, D. A., et al. Melanoma cell intrinsic GABAA receptor enhancement potentiates radiation and immune checkpoint response by promoting direct and T cell-mediated anti-tumor activity. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 109 (4), P1040-P1053 (2021).
  16. Bhattacharya, D., et al. Therapeutically leveraging GABAA receptors in cancer. Experimental Biology and Medicine. 246 (19), 2128-2135 (2021).
  17. Mazia, D., Schatten, G., Sale, W. Adhesion of cells to surfaces coated with polylysine. Applications to electron microscopy. Journal of Cell Biology. 66 (1), 198-200 (1975).
  18. Wiatrak, B., Kubis-Kubiak, A., Piwowar, A., Barg, E. PC12 cell line: Cell types, coating of culture vessels, differentiation and other culture conditions. Cells. 9 (4), 958 (2020).
  19. Baker, J. R. Fixation in cytochemistry and electron-microscopy. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 6 (5), 303-308 (1958).
  20. Chung, J. Y., et al. Histomorphological and molecular assessments of the fixation times comparing formalin and ethanol-based fixatives. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 66 (2), 121-135 (2018).
  21. Crowley, L. C., Christensen, M. E., Waterhouse, N. J. Measuring mitochondrial transmembrane potential by TMRE staining. Cold Spring Harbor Protocols. 2016 (12), (2016).
  22. Cory, A. H., Owen, T. C., Barltrop, J. A., Cory, J. G. Use of an aqueous soluble tetrazolium/formazan assay for cell growth assays in culture. Cancer Communications. 3 (7), 207-212 (1991).
  23. Maro, B., Marty, M. C., Bornens, M. In vivo and in vitro effects of the mitochondrial uncoupler FCCP on microtubules. EMBO Journal. 1 (11), 1347-1352 (1982).
  24. Zheng, J., et al. Mechanism for regulation of melanoma cell death via activation of thermo-TRPV4 and TRPV. Journal of Oncology. 2019, 7362875 (2019).
  25. Konno, K., Watanabe, M., Luján, R., Ciruela, F. Immunohistochemistry for ion channels and their interacting molecules: Tips for improving antibody accessibility. Receptor and Ion Channel Detection in the Brain. , (2016).
  26. Mortensen, M., Smart, T. G. Single-channel recording of ligand-gated ion channels. Nature Protocols. 2 (11), 2826-2841 (2007).
  27. Franken, N. A., Rodermond, H. M., Stap, J., Haveman, J., van Bree, C. Clonogenic assay of cells in vitro. Nature Protocols. 1 (5), 2315-2319 (2006).
  28. Rafehi, H., et al. Clonogenic assay: Adherent cells. Journal of Visualized Experiments. (49), 2573 (2011).
  29. Scudiero, D. A., et al. Evaluation of a soluble tetrazolium/formazan assay for cell growth and drug sensitivity in culture using human and other tumor cell lines. Cancer Research. 48 (17), 4827-4833 (1988).
  30. Wang, P., Henning, S. M., Heber, D. Limitations of MTT and MTS-based assays for measurement of antiproliferative activity of green tea polyphenols. PLoS One. 5, e10202 (2010).
  31. Berridge, M. V., Tan, A. S. Characterization of the cellular reduction of 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT): subcellular localization, substrate dependence, and involvement of mitochondrial electron transport in MTT reduction. Archives of Biochemistry and Biophysics. 303 (2), 474-482 (1993).
  32. Plumb, J. A., Milroy, R., Kaye, S. B. Effects of the pH dependence of 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl-tetrazolium bromide-formazan absorption on chemosensitivity determined by a novel tetrazolium-based assay. Cancer Research. 49 (16), 4435-4440 (1989).
  33. Chakrabarti, R., Kundu, S., Kumar, S., Chakrabarti, R. Vitamin A as an enzyme that catalyzes the reduction of MTT to formazan by vitamin C. Journal of Cellular Biochemistry. 80 (1), 133-138 (2000).
  34. Dong, G. W., Preisler, H. D., Priore, R. Potential limitations of in vitro clonogenic drug sensitivity assays. Cancer Chemotherapy and Pharmacology. 13 (3), 206-210 (1984).
  35. Sun, J., et al. STIM1- and Orai1-Mediated Ca2+oscillation orchestrates invadopodium formation and melanoma invasion. Journal of Cell Biology. 207 (4), 535-548 (2014).

Play Video

Cite This Article
Kallay, L., Gawali, V. S., Toukam, D. K., Bhattacharya, D., Jenkins, A., Sengupta, S., Pomeranz Krummel, D. A. Screening Ion Channels in Cancer Cells. J. Vis. Exp. (196), e65427, doi:10.3791/65427 (2023).

View Video