زرع تحت القبعات الكلوية من الغدة الصعترية الجنينية Murine المعالجة 2'-ديوكسيغوانوسين في الفئران عارية

Immunology and Infection

Your institution must subscribe to JoVE's Immunology and Infection section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

نحن نقدم طريقة بسيطة وفعالة لزرع 2'-ديوكسيغوانوسين المعالجة E18.5 الغدة الصعترية في كبسولة الكلى من فأر عارية. هذه الطريقة ينبغي أن يساعد في دراسة كل من وظائف الخلايا الظهارية الثيميك ونضج الخلايا T.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Wang, J., Chen, G., Cui, Q., Song, E., Tao, W., Chen, W., Wang, C., Jia, S. Renal Subcapsular Transplantation of 2'-Deoxyguanosine-Treated Murine Embryonic Thymus in Nude Mice. J. Vis. Exp. (149), e59657, doi:10.3791/59657 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

الغدة الصعترية هو جهاز مناعي مركزي مهم، والذي يلعب دورا أساسيا في تطوير وتمايز الخلايا T. زراعة الغدة الصعترية هي طريقة هامة للتحقيق في وظيفة الخلايا الظهارية الغدية ونضج الخلايا T في الجسم الحي. هنا سوف نصف الطرق التجريبية المستخدمة في مختبرنا لزرع 2'-ديوكسيغوانوسين (لاستنفاد الخلايا الليمفاوية المانحة) علاج الغدة الصعترية الجنينية في كبسولة الكلى من فأر ة عارية الكمية. هذه الطريقة بسيطة وفعالة على حد سواء ولا تتطلب مهارات أو أجهزة خاصة. وأظهرت النتائج التي تم الحصول عليها من خلال هذه الطريقة البسيطة أن الغدة الصعترية المزروعة يمكن أن تدعم بشكل فعال إنتاج الخلايا T المتلقي. وبالإضافة إلى ذلك، سيتم زيادة توضيح عدة نقاط رئيسية فيما يتعلق بالبروتوكول.

Introduction

الغدة الصعترية هو الجهاز المناعي المركزي ، داخل الغدة الصعترية تخضع لاختيار إيجابي وسلبي ، وتصبح ناضجة الخلايا T1،2. نتائج اختيار إيجابية أو سلبية غير طبيعية في نقص المناعة أو أمراض المناعة الذاتية على التوالي3،4. لذلك، زرع الأعضاء الغدة الصعترية هو نهج مهم لدراسة عملية اختيار الخلايا T في الغدة الصعترية المانحة. هذه الطريقة حاسمة بشكل خاص عند تحليل وظيفة الظهارية الثيميك بوساطة الطفرات الجينية التي تسبب النمط الظاهري القاتل الجنيني عند تغيير5.

من أجل دراسة نضج الخلايا T المتلقي في الغدة الصعترية المزروعة، استنفاد الخلايا الليمفاوية المانحة داخل الغدة الصعترية أمر ضروري. ولهذا الغرض، عادة ما يتم اختيار الغدة الصعترية الجنينية 14-، 15- أو 16 يوما (E14، E15، E16) الغدة الصعترية6،7. الغدة الصعترية من مراحل أكثر نضجا يمكن أيضا أن تستنفد بنجاح من الخلايا الليمفاوية المانحة عن طريق علاج مع 2'-ديوكسيغوانوسين. ومع ذلك، لم يتم وصف بروتوكول مفصل لاستنفاد الخلايا الليمفاوية واستخدام ثقافة الغدة الصعترية القديمة من قبل8،9. في حين تم إدخال بروتوكولات زرع من قبل العديد من الدراسات10،11، ومن الضروري إجراء مزيد من التعديل وتحسين هذه البروتوكولات.

يتم فصل بروتوكولنا إلى جزأين: '1' استنفاد الخلايا الليمفاوية T من مرحلة النمو المتأخرة E18.5 الغدة الصعترية من قبل الثقافة في 2'-deoxyguanosine التي تحتوي على وسائل الإعلام. '2' زرع الغدة الصعترية المثقفة في المتلقين. في هذا الإجراء، قمنا بتطوير طريقة بسيطة لتسليم الأنسجة الكبيرة (E18.5 thymus) في كبسولة الكلى مع انخفاض فرصة الإصابة في الكلى. في حين تركز على الغدة الصعترية في مرحلة لاحقة، يمكن أيضا أن تستخدم بروتوكولنا مباشرة أو مع تعديلات لزرع الغدة الصعترية في مختلف مراحل النمو أو غيرها من الأنسجة ذات الحجم المماثل.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

ويلتزم البروتوكول المقدم بالمبادئ التوجيهية للجنة الأخلاقيات بجامعة جينان فيما يتعلق برعاية الحيوانات.

ملاحظة: المواد المستخدمة مدرجة في جدول المواد.

1. عزل الغدة الصعترية الجنينية

  1. الأوتوكلاف جميع الأدوات الجراحية قبل التجربة، وتعقيم مقاعد البدلاء / هود مع الإيثانول 70٪.
  2. باستخدام ثاني أكسيد الكربون، والتخدير والرحيم الماوس الإناث الحوامل (18.5 يوما بعد التزاوج الناجح). ثم مسح منطقة البطن مع الإيثانول 70٪.
    ملاحظة: هنا نحن التزاوج Insm1+/lacZ الإناث وInsm1+/lacZ الذكور. وقد تم حقن البنتوباربيتال داخل المشيمة قبل عزل الأجنة عن الرحم، وتم قطع الرأس لكل جنين.
  3. باستخدام مقص، وجعل "V" على شكل قطع على البطن بدءا من المثانة وتشغيل حتى كل قرن من الرحم.
  4. باستخدام المقص، وقطع mesometrium وعنق الرحم / المهبل، وجمع الرحم. ضع الرحم في طبق بيتري يحتوي على ملح بارد بالفوسفات (PBS) على الجليد. بعد ذلك، فضح الأجنة التي هي في decidua المغلفة، عن طريق قطع جدار الرحم الأمامي من قرن الرحم واحد إلى الآخر. باستخدام ملاقط غرامة، قشر مرة أخرى الأنسجة المغلفات المغلفة وقطع الحبل السري للإفراج عن الأجنة. ضع جميع الأجنة في طبق بيتري جديد على الجليد حتى عزل الغدة الصعترية.
  5. مسح الجنين مع الكحول 70٪ ووضعها في طبق بيتري جديد. من هذه الخطوة على، تأكد من الحفاظ على الظروف العقيمة.
  6. عن طريق قطع قريبة من الفك السفلي مع مقص، وإزالة رأس الجنين واستنزاف الدم مع منشفة ورقية. بعد ذلك، إصلاح الجنين على نفس طبق بيتري في موقف supine.
    ملاحظة: قطعنا قطعة من ذيل كل جنين لInsm1 وlacZ علم الوراثة.
  7. باستخدام مقص، وقطع جدار الصدر الجانبي أفقيا على طول الجبهة الإبطية، ومن ثم قطع الحجاب الحاجز لفتح الصدر. يجب أن يكون الغدة الصعترية الآن مرئية كفصوص بيضاء تقع أمام القصبة الهوائية والمتاخمة للقلب.
  8. ضع ملقط عازمة طرف وراء الغدة الصعترية ومن ثم سحب قبالة الغدة الصعترية بلطف. تأكد من التحقق من سلامة الغدة الصعترية للتأكد من أنه يحتوي على فصوص مشتركة اثنين.
  9. غسل الغدة الصعترية مع 1X PBS وتقليم قبالة الأنسجة الضامة والأوعية الدموية تحت مجهر مجسم.

2- ثقافة الغدة الصعترية الجنينية المعزولة

  1. إضافة 500 درجة مئوية من وسط الثقافة (RPMI1640 + 15٪ مصل البقر الجنيني (FBS) + 100 U / مل البنسلين و 100 ميكروغرام / مل ستربيوميسين) إلى كل بئر من لوحة 24 جيدا. نقل الثيمي نظيفة في الآبار مع واحد الغدة الصعترية لكل بئر. يعرض الشكل 1 الغدة الصعترية المعزولة في وسائل الإعلام الثقافية.
  2. إلى كل الغدة الصعترية التي تحتوي على جيدا إضافة 2'-ديوكسيجرانوسين إلى تركيز نهائي من 1.25 mM.
  3. ثقافة الغدة الصعترية المعزولة لمدة ثمانية أيام، ومنعش كل من وسائل الإعلام الثقافة و2'-ديوكسيجرانوسين كل يومين.

3. إنشاء الفضاء تحت القبعات في كبسولة الكلى

  1. لإعداد الإبرة وأنبوب التسريبالمقطوع (الشكل 2)، وقطع إبرة الوريد فروة الرأس على جزء الأنبوب في زاوية 45 درجة باستخدام مقص.
  2. وزن الماوس عارية ومن ثم التخدير مع pentobarbital (1.5٪) حقن (75 ميكروغرام / ز وزن الجسم).
  3. عندما لا يتم ملاحظة أي رد فعل بعد قرصة اصبع القدم، ضع الماوس على طاولة التشغيل في وضع جانبي الحق.
  4. مع مسحة اليود البوفيدون 0.5٪، تطهير الجلد مرتين في المنطقة الجراحية من الداخل إلى خارج الجسم.
  5. باستخدام مقص، جعل شق الجلد 5-9 ملم موازية للعمود الفقري في منطقة الكلى اليسرى (بين الضلع الأخير وقمة الحرقفي). بعد ذلك، افتح تجويف البطن عن طريق قطع الأنسجة والعضلات تحت الجلد وفضح الكلى.
  6. مع تعرض الكلى، استخدم زوجًا من الملقط في يد واحدة لرفع العضلات والأنسجة الدهنية من حافة الشق على جانب العمود الفقري. مع اليد الأخرى، اضغط بلطف على الكلى خارج (بدلا من ذلك، يمكن الضغط على الكلى باستخدام أصابع كلتا اليدين).
  7. للتأكد من أن كبسولة الكلى رطبة أثناء الجراحة، بلل سطح الكلى مع محلول ملحي (0.9٪ حمض الكلى).
  8. إنشاء شق في كبسولة الكلى، وخدش بلطف كبسولة الكلى على الجانب الأيمن السفلي باستخدام طرف إبرة أعدت في الخطوة 3.1. يجب أن يكون حجم النك 1/2-2/3 عرض الكلى; لا خدش على الكلى.
  9. حرك أنبوب التسريب المعد في الخطوة 3.1 إلى شق على كبسولة الكلى. فكّن الكبسولة الكلوية بلطف مع الكلى على طول الجانب الطويل للكلية حتى تصل إلى 3-4 ملم داخل كبسولة الكلى. سحب مرة أخرى أنبوب التسريب. يتم تأسيس المساحة تحت القبعات الكلى.

4. زرع الغدة الصعترية المورين الجنينية

  1. غسل الغدة الصعترية المستزرعة في الخطوة 2.3 مرتين في المالحة لاستنزاف وسائل الإعلام الثقافية.
  2. قم بتوصيل أنبوب التسريب المقطوع المعد في الخطوة 3.1 بحقنة في واجهة توصيل الحقنة الخاصة به. يستنشق الغدة الصعترية المعدة في أنبوب التسريب ببطء.
  3. أدخل أنبوب التسريب المقطوع برفق في كبسولة الكلى ووصل إلى القطب العلوي. تسليم الغدة الصعترية في كبسولة الكلى. سحب الأنبوب ببطء في حين دفع في وقت واحد الغطاس من الحقنة بلطف.
  4. باستخدام مصباح الكحول، تسخين قليلا الإبرة المعدة في الخطوة 3.1. بعد التأكد من أن الغدة الصعترية كلها داخل الفضاء تحت القبعات، استخدم الإبرة ساخنة لكي النك.
  5. بعد الكي ، استعادة الكلى في تجويف البطن. خياطة الصبغة والعضلات.
  6. باستخدام خياطة فراش عمودي ة معدلة توقف، أغلق شق الجلد (ربط ما لا يقل عن ثلاثة عقدة وقطع أي خيط الزائدة).
  7. باستخدام مسحة اليود البوفيدون، تطهير الشق. لتخفيف الألم، تم إجراء حقن تحت الجلد من الفلونيكسين (2 ميكروغرام / غرام من وزن الجسم) خلال الجراحة ثم لمدة 3 أيام بعد الجراحة.
  8. حتى يتعافى تماما من التخدير، والحفاظ على الماوس الحارة تحت مصباح الأشعة تحت الحمراء.
  9. الحفاظ على الغدة الصعترية في كبسولة الكلى المتلقي لمدة 8 أسابيع قبل تشريح الغدة الصعترية المزروعة وإجراء تحليل الفينوتيبيك كما سبق وصفه5،8،9.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

هنا نُظهر الغدة الصعترية E18.5 المعزولة التي تحتوي على فصوص كاملة (الشكل1). بالإضافة إلى ذلك، نعرض إبرة الوريد فروة الرأس التي تمقصها لتشكيل شطبة على أنبوب التسريب (الشكل 2). بعد ذلك، نعرض أيضًا صورة تمثيلية عن موضع الغدة الصعترية التي تم زرعها في كبسولة الكلى (الشكل3A)والغدة الصعترية بعد 8 أسابيع من النمو داخل الفئران المتلقية (الشكل3B). لتحديد ما إذا كانت الخلايا T قد تم إنتاجها في الفئران عارية المزروعة مع الغدة الصعترية، في كل من الغدة الصعترية المزروعة والدم المحيطي، اكتشفنا مجموعات الخلايا باستخدام CD4 و CD8 تلطيخ الأجسام المضادة وتدفق تحليل قياس الخلايا. تم جمع الدم المحيطي من الجيوب الأنفية الرجعية المدارية كما سبق وصفها12. وجدنا أن الخلايا التائية تم إنتاجها في كل من الغدة الصعترية المزروعة والدم المحيطي للفئران العارية المزروعة بالغدة الصعترية. ومع ذلك، لم يتم الكشف عن أي خلايا Tفي الدم المحيطي للفئران عارية غير المزروعة (الشكل 4). لتحديد مصدر الخلايا T، راجعنا Insm1 وlacZ الجينات في خلايا الدم البيضاء الطرفية باستخدام أساليب النمط الجيني المستخدمة بشكل روتيني في مختبرنا ووصف سابقا13،14. منذ تم استبدال الجنين المانح Insm1 الجين من قبل الجين lacZ في واحد أو كليهما، عندما تم زرع الخلايا T مع الغدة الصعترية من المانح، يمكننا الكشف عن جين اللاكز في جينوم الخلايا T التي تم جمعها من الطرفية دم المتلقي ، مما يشير إلى أنها تم إنتاجها من قبل الغدة الصعترية المانحة. بالإضافة إلى ذلك، كما لم يكن هناك جين lacZ، لن يتم الكشف عن lacZ عندما يتم إنشاء الخلايا T من الخلايا المكونة للدم المتلقي. لم نكشف عن جين اللاكز في الخلايا الطرفية T ممايشير إلى أن الخلايا T تم إنشاؤها من المتلقي (الشكل 5).

Figure 1
الشكل 1: الغدة الصعترية معزولة عن الأجنة E18.5. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 2
الشكل 2: الغدة الصعترية تقديم الأدوات المصنوعة من إبرة الوريد فروة الرأس. تم قطع إبرة الوريد فروة الرأس في جزء أنبوب التسريب بالقرب من الإبرة في زاوية 45 درجة لإنشاء شطبة. تم استخدام كل من الإبرة وأنبوب التسريب في الإجراء. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 3
الشكل 3: الغدة الصعترية المزروعة في كبسولة الكلى. (أ) تم زرع هالة E18.5 الطازجة في كبسولة الكلى. (ب) الغدة الصعترية في كبسولة الكلى بعد 8 أسابيع من النمو في المتلقي. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 4
الشكل 4: تحليل قياس التدفق للخلايا T المعزولة عن الغدة الصعترية المزروعة، دم الفئران العارية المزروعة بالغدة الصعترية وغير المزروعة. تم استخدام الأجسام المضادة CD4 و CD8α لتلطيخ الخلايا T. CD4+CD8+ الخلايا الإيجابية المزدوجة، CD4+ إيجابي واحد، CD8+ إيجابي واحد وCD4-CD8- يتم عرض الخلايا السلبية المزدوجة في كل من الأرباع كما هو مبين. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 5
الشكل 5: تحديد مصدر خلايا الدم الطرفية T في الفئران العارية المزروعة في الغدة الصعترية. يظهر الكتابة الجينية لجين اللاكز وجين Insm1 في خلايا الدم البيضاء الطرفية. سلم: علامة الحمض النووي، + : الحمض النووي السيطرة الإيجابية، -: الحمض النووي السيطرة السلبية، Anim1: الحمض النووي من خلايا الدم البيضاء الطرفية من الماوس عارية المزروعة مع Insm1lacZ / lacZ thymus، Anim2: الحمض النووي من خلايا الدم البيضاء الطرفية من الماوس عارية زرعها مع Insm1+/lacZ الغدة الصعترية. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

زرع الكُبسة الكلوية للمُدَدَدَيّة الجنينية هو طريقة هامة لدراسة وظيفة الخلايا الظهارية الثيميك وعملية نضج الخلايا التائية في الجسم الحي. على الرغم من أن هناك العديد من الدراسات التجريبية على زراعة الأعضاء الغدة الصعترية الجنينية وزرع6،7، بروتوكولنا يوفر إجراء بديل بسيط على ثقافة الغدة الصعترية الجنينية وsubcapsular الكلى زرع لأنسجة الغدة الصعترية القديمة.

بروتوكولنا يحسن على البروتوكولات السابقة من خلال دمج العديد من التعديلات المختلفة 6،10،11. أولاً، بدلاً من الغدة الصعترية E14-E16، استخدمنا الغدة الصعترية المعزولة عن E18.5 للزرع. والميزة هي أن الغدة الصعترية في هذه المرحلة التنموية في وقت لاحق يحتوي على هياكل الغدة الصعترية ناضجة نسبيا وتجمعات الخلايا الظهارية. على الرغم من أن الفئران الوليدة أو البالغة هي مصدر بديل للمقديد الناضج، إذا حدث النمط الظاهري القاتل في الفترة المحيط بالولادة نتيجة للتلاعب بالجينات، مثل الطفرات في تكوين Jmjd6 أو Insm1 الجينات5و13، هذه الطريقة يوفر بديلا ً قابلاً للتطبيق لدراسة الغدة الصعترية الناضجة. والتعديل الثاني هو تنقيح طريقة ثقافة الغدة الصعترية E18 قبل زرعها. بالإضافة إلى ذلك، يحدث تعديل ثالث في إجراء زرع، الذي استخدمنا طرف إبرة لخلق شق على كبسولة الكلى بدلا من التقاط وقطع كبسولة الكلى مع ملاقط ومقص. هذا التعديل خفض كل من تلف كبسولة الكلى وإصابة الكلى. تعديل نهائي واحد هو في خطوة خياطة. الخياطة مرتبة عمودية توقف المعدلة يلغي خط خياطة خارج على الجلد، وبالتالي يمنع فتح شق بسبب العض.

في حين يتم استخدام هذا البروتوكول لزرع الغدة الصعترية E18.5 في كبسولة الكلى، فإنه يمكن تعديله لزرع الغدة الصعترية في مراحل النمو الأخرى أو للأنسجة الأخرى ذات الأحجام المماثلة. بالإضافة إلى ذلك، يمكن تعديل المواد المستخدمة وفقا لذلك من قبل مستخدمين مختلفين من مناطق مختلفة، وخاصة فيما يتعلق الكواشف التخدير التي قد تكون مقيدة بموجب القوانين المحلية. جرعة البنتوباربيتال المستخدمة في بروتوكولنا هو 75 ميكروغرام / ز وزن الجسم. ومع ذلك, الجرعة القصوى يجب أن لا يزيد عن 100 ميكروغرام / ز وزن الجسم لمنع وفاة الحيوانات التخدير. على الرغم من أن زرع الغدة الصعترية في الكبسولة الكلوية هو طريقة فعالة للدراسة الوظيفية للقصعبين في الجسم الحي، توجد بعض القيود في الطريقة المذكورة أعلاه. وتشمل هذه القيود خطر تسرب الغدة الصعترية من كبسولة الكلى خلال 8 أسابيع في فترة نمو الجسم الحي (1 في 12). ثانيا آخر قيد هو وفاة الفئران بعد الجراحة (6 في 30). ومع ذلك ، فإن سبب هذه الوفاة هو أساسا جرعة زائدة من البنتوباربيتال. وعلى هذا النحو، يمكن استخدام طرق أخرى مسموح بها للتخدير.

وباختصار، نحن نقدم بروتوكول بسيط وفعال لعزل وثقافة الغدة الصعترية E18.5 ثم بعد ذلك زرع الغدة الصعترية في كبسولة الكلى. وهذا يسمح بعد ذلك لتحليل وظيفة الخلايا الظهارية الثيميك وعملية نضج الخلايا T.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

لم يعلن أي تضارب في المصالح.

Acknowledgments

وقد تم دعم هذا العمل من قبل حزمة البداية من جامعة جينان إلى S.J. وبرنامج العلوم والتكنولوجيا في قوانغتشو الصين (منحة رقم 201704020209 إلى S.J.). نشكر إيمي بوتا (قسم البيولوجيا، جامعة يورك، تورنتو، ON M3J 1P3، كندا) على التدقيق والتحرير للمخطوطة.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.5% Povidone iodine Shanghai Likang Distinfectant Hi-Tech Co.Ltd 20171113
0.9% Sodium Chloride Injection Shandong Qilu Pharmaceuyical Co.Ltd 2C17112101
1 mL Sterile syringe Solarbio YA1090
2’-Deoxyguanosine MEC HY-17563 1M in DMSO, 1:800 using (final 1.25mM)
24 Well Plate Corning Incorporated Costar 3524
4-0 Surgical suture needles with thread NingBo Cheng-He Microsurgical Instruments Factory China YY0166-2002
60mm Cell Culture Dish Corning Incorporated 430166
70% ETOH LIRCON 20181221
APC anti-mouse CD8a antibodies Biolegend 100711 1:100
Bent-tip fine forceps, JZ 10 cm Shanghai Medical Devices Group Co.,Ltd. JD1060 To sterilize before use
Cefmetazole Sodium for Injection Sichuan Hexin Pharmaceutical co,Ltd 17062111 079 6mg in 0.5ml 0.9% NaCl solution, 7.5ul/g body weight
Dissecting scissors, JZ 10 cm Shanghai Medical Devices Group Co.,Ltd. JC2303 To sterilize before use
Fetal bovine serum (FBS? GIBCO 10270-106
Fine forceps, JZ 10 cm Shanghai Medical Devices Group Co.,Ltd. JD1050 To sterilize before use
Flow cytometry BD FACSCanto II
Flunixin meglumine MACLIN F810147 1mg in 1ml 0.9% NaCl solution,2ul/g body weight
Forceps, Dumont#5 World Precision Instruments 14098 To sterilize before use
Infrared lamp OTLAN MT-810
Needle holder, JZ 14 cm Shanghai Medical Devices Group Co.,Ltd. J32010 To sterilize before use
PE anti-mouse CD4 Biolegend 100511 1:100
Penicillin-Streptomycin mixture GIBCO 15140122 1:100
Pentobarbital sodium salt Sigma P3761 1.5% solution in PBS, 75ug/g body weight
RPMI1640 Medium GIBCO C14-11875-093
Scalp vein needle Shanghai Kindly Medical Instruments Co., Ltd XC001
Spring scissors VANNAS S11014-12 To sterilize before use
stereomicroscope OLYMPUS SZ61
Sterile 15cm cotton swab Guangzhou Haozheng 20150014
Sterile gauze 5 cm x 7 cm-8P Guangzhou Haozheng 20172640868
Sterile PBS (1x) GENOM GNM20012
Tissue forceps, JZ 12.5 cm Shanghai Medical Devices Group Co.,Ltd. J41010 To sterilize before use

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Klein, L., Kyewski, B., Allen, P. M., Hogquist, K. A. Positive and negative selection of the T cell repertoire: what thymocytes see (and don't see). Nature Reviews Immunology. 14, 377-391 (2014).
  2. Hogquist, K. A., Baldwin, T. A., Jameson, S. C. Central tolerance: learning self-control in the thymus. Nature Reviews Immunology. 5, 772-782 (2005).
  3. Spits, H., Touraine, J. L., Yssel, H., de Vries, J. E., Roncarolo, M. G. Presence of host-reactive and MHC-restricted T cells in a transplanted severe combined immunodeficient (SCID) patient suggest positive selection and absence of clonal deletion. Immunological Reviews. 116, 101-116 (1990).
  4. Nagamine, K., et al. Positional cloning of the APECED gene. Nature Genetics. 17, 393-398 (1997).
  5. Yanagihara, T., et al. Intronic regulation of Aire expression by Jmjd6 for self-tolerance induction in the thymus. Nature Communications. 6, (8820), (2015).
  6. Jenkinson, W., Jenkinson, E., Anderson, G. Preparation of 2-dGuo-Treated Thymus Organ Cultures. Journal of Visualized Experiments. (18), (2008).
  7. T-Cell Development: Methods and Protocols. Bosselut, R., Vacchio, M. S. Methods in Molecular Biology, vol. 1323 (2016).
  8. Anderson, M. S., et al. Projection of an immunological self shadow within the thymus by the aire protein. Science. 298, (5597), 1395-1401 (2002).
  9. Takaba, H., et al. Fezf2 Orchestrates a Thymic Program of Self-Antigen Expression for Immune Tolerance. Cell. 163, (4), 975-987 (2015).
  10. Morillon, Y. M. 2nd, Manzoor, F., Wang, B., Tisch, R. Isolation and transplantation of different aged murine thymic grafts. Journal of Visualized Experiments. (99), e52709 (2015).
  11. Caetano, S. S., Teixeira, T., Tadokoro, C. E. Intravital imaging of the mouse thymus using 2-photon Microscopy. Journal of Visualized Experiments. (59), e3504 (2012).
  12. JoVE Science Education Database. Blood Withdrawal I. Lab Animal Research. JoVE. Cambridge, MA. (2019).
  13. Gierl, M. S., Karoulias, N., Wende, H., Strehle, M., Birchmeier, C. The zinc-finger factor Insm1 (IA-1) is essential for the development of pancreatic beta cells and intestinal endocrine cells. Genes & Development. 20, (17), 2465-2478 (2006).
  14. Tao, W., et al. Haploinsufficiency of Insm1 Impairs Postnatal Baseline β-Cell Mass. Diabetes. 67, (12), 2615-2625 (2018).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics