Caenorhabditis elegans (ver)

Dans cette vidéo, nous montrons une méthode de production d’une population de C. elegans adultes stériles synchronisés sur le plan du développement. L’exemple de protocole synchronise les vers pour étudier les taux de consommation d’oxygène chez les animaux vivants.

Cette vidéo décrit une technique permettant de dépister rapidement un seul nématode pour un marqueur génétique par dépistage par PCR. Dans l’exemple de protocole, nous recherchons l’édition du génome basée sur CRISPR.

Cette vidéo décrit une méthode traditionnelle de mesure de la durée de vie de C. elegans, basée sur des plaques. L’exemple de protocole mesure la durée de vie des vers traités avec de l’ARNi.

Le comportement de ponte de C. elegans peut fournir des informations importantes dans les études de développement, de reproduction et d’anatomie. Cette vidéo présente les étapes importantes d’un test de ponte d’œufs et montre un exemple d’expérience dans lequel un médicament est testé pour sa toxicité pour la reproduction.

Cette vidéo décrit la microinjection, une méthode courante de création de souches transgéniques de C. elegans. Dans l’exemple, nous verrons la micro-injection utilisée pour introduire un complexe ribonucléoprotéique (RNP) pour l’édition de gènes basés sur CRISPR.

Cette vidéo décrit le fissurage par congélation, une méthode permettant de rendre les tissus de C. elegans accessibles pour la coloration des anticorps en perturbant la cuticule.

Lors de l’imagerie en direct de C. elegans, un tampon d’agarose peut être utilisé pour maintenir le nématode immobile sans l’endommager ni le dessécher. Cette vidéo décrit comment préparer un tampon de montage simple pour la microscopie.

Cette vidéo présente les concepts derrière l’imagerie calcique et comprend un exemple de protocole pour l’imagerie en accéléré des vers contenus dans des puits d’agarose moulés.

Ici, nous introduisons un test pour mesurer SWIP, un phénotype comportemental de C. elegans qui se produit lors de mouvements vigoureux comme la natation. L’exemple de protocole traite à la fois des approches d’analyse manuelles et automatisées.

Cette vidéo présente le test d’habituation au toucher, une méthode comportementale de C. elegans permettant d’évaluer la mécanosensation et de quantifier le temps d’accoutumance.

Cette vidéo présente la chimiotaxie chez le nématode C. elegans et montre un exemple de protocole testant l’aversion chimiotactique pour le sulfate de cuivre.

Les chercheurs peuvent déclencher un mouvement à la demande chez C. elegans en appliquant un champ électrique que les vers détectent et auquel ils répondent. Cette vidéo présente le comportement électrotaxique et montre un exemple de protocole réalisé dans un dispositif microfluidique.

Cette vidéo décrit l’utilisation d’un logiciel de vidéo et de suivi pour enregistrer le mouvement des vers dans une arène. L’exemple de protocole mesure l’effet de l’exposition à l’éthanol sur la locomotion des vers.

Cette vidéo décrit une méthode pour disséquer les gonades des hermaphrodites adultes de C. elegans, ce qui permet d’obtenir des tissus adaptés à l’immunocoloration et à l’imagerie fluorescente.

Cette vidéo présente un test de survie à court terme qui teste un traitement pour la toxicité aiguë ou teste une souche génétique pour la résistance à une condition toxique. L’exemple de protocole montre un exemple de test de survie dans lequel les vers sont testés pour leur capacité à résister au stress oxydatif induit par le paraquat (PQ).

C. elegans a deux types de muscles, le sarcomère simple et le sarcomère multiple, ou muscles striés. Cette vidéo décrit l’arrangement des muscles de la paroi corporelle striée, qui sont responsables de la locomotion d’un ver et comprend un protocole d’échantillonnage pour mesurer la morphologie musculaire à l’aide d’un logiciel d’analyse d’images.

Cette vidéo présente une méthode de blessure au laser, qui est utilisée pour causer des blessures très précises dans l’épiderme du ver. L’exemple de protocole est issu d’une étude de la réponse et de la réparation des plaies.

Cette vidéo présente une méthode permettant de visualiser et de mesurer l’intégrité de la lumière intestinale de C. elegans en nourrissant les vers avec du dextrane marqué au FITC. L’exemple de protocole montre le test effectué avec des vers traités au 3,3'-diindolylméthane (DIM) et nourris à des agents pathogènes.

Cette vidéo décrit un protocole pour colorer les lipides de vers entiers et fixés à l’aide d’un colorant rouge du Nil. Pour visualiser spécifiquement les lipides neutres au cœur des gouttelettes lipidiques, imaginez les spectres d’émission verts de C. elegans colorés.

Cette vidéo décrit une méthode pour dissocier des vers entiers en une suspension unicellulaire adaptée à la FACS ou à l’immunoprécipitation de cellules intactes.

Ici, nous décrivons une technique utilisée pour visualiser l’ADN génomique chez des nématodes fixes et intacts. La vidéo comprend un exemple de protocole pour compter la chromatine dans les ovocytes de C. elegans non fécondés.

Cette vidéo présente une méthode permettant d’isoler les blastomères de C. elegans des embryons précoces. Les cellules résultantes conviennent à la culture cellulaire ou aux expériences ex vivo.

Cette vidéo présente une méthode permettant d’isoler et de cultiver stérilement des cellules embryonnaires de C. elegans in vitro.

Cette vidéo décrit les principes du traitement par ARNi chez C. elegans et démontre un protocole pour neutraliser lin-35 dans une souche de ver transgénique.

ARNi est un outil génétique puissant à la disposition des chercheurs de C. elegans. Cette vidéo présente une méthode pour traiter plus de vers avec de l’ARNi que l’alimentation en plaque en utilisant des conditions de culture liquide.

Les nématodes peuvent être multipliés facilement en laboratoire, en partie parce que les hermaphrodites peuvent se reproduire par autofécondation. Cependant, les croisements génétiques et autres expériences peuvent nécessiter un grand nombre de mâles. Cette vidéo décrit une méthode d’enrichissement pour C. elegans mâle.

La micro-injection de transgènes aboutit généralement à des souches de C. elegans avec de grandes puces extrachromosomiques, ce qui entraîne une expression et une transmission variables du transgène. L’irradiation UV peut induire une intégration chromosomique de la puce et une transmission plus stable des transgènes.