Summary

编制果蝇实时成像的胚胎使用悬滴协议

Published: March 13, 2009
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Summary

一个简单,廉价,​​有效的方法是准备住成像分析果蝇胚胎。我们的协议提供湿度和气体交换,不压缩的果蝇胚胎。这种方法适用于基于GFP的使用立体显微镜或直立复式显微镜的果蝇胚胎的实时成像。

Abstract

绿荧光蛋白质(GFP)为基础的timelapse生活成像的动态进程,如组织形态发生,细胞与细胞间的粘附,或细胞死亡的基因调控研究的一个强大的技术。果蝇胚胎表达GFP很容易使用以立体或共聚焦显微镜成像。任何带电成像协议的目标是尽量减少不利影响,如脱水和缺氧。前准备活成像分析果蝇胚胎的协议涉及dechorionated胚胎放置在卤烃油和夹层之间的卤烃气体渗透膜和盖玻片<sup> 1-3</sup>。通过引进安装胚胎的压缩,以这种方式为基础的生物力学分析任何形态发生不良并发症。我们的方法,我们称之为悬滴协议,在实时成像优秀的胚胎活力的结果,不需要胚胎被压缩。简单地说,悬滴协议涉及的胚胎在下降的卤烃油是从盖玻片,这是在潮湿室位置固定,暂停的位置。除了提供气体交换,防止脱水,这样的安排利用胚胎在卤烃油的浮力,以防止他们漂流timelapse收购期间的立场。本视频介绍了如何收集和准备现场使用悬滴协议成像果蝇胚胎细节。该协议是适合使用立体显微镜或任何正直的复合荧光显微镜成像dechorionated胚胎。

Protocol

制备收集胚胎标准的葡萄汁琼脂平板 4 。它方便地使用一个自动化的果蝇卵收集器(Flymax科学器材有限公司)。使用同步上演胚胎集合将减少必须执行,以获得足够数量的胚胎在发育阶段所需的数量dechorionations。 准备一个dechorionation幻灯片,附加了一块双面胶带载玻片;删除从磁带的支持。 准备切割一块组织,以适应在香港总商会以及实时成像室。在精心组织和湿用?…

Discussion

我们描述了一种实时成像分析,我们称之为悬滴协议的准备果蝇胚胎的新方法。不幸的是,它是不可能的使用悬滴协议,如果倒置显微镜工作。在这种情况下,夹层技术(抽象以上所述),必须使用压缩的胚胎仍然令人担忧。

在细胞的形状和大小进行测量,以计算力量与形态运动相关的实验,使用一个堂堂正正的显微镜和悬滴协议是可取的,因为胚胎压缩减少。此外,减少?…

Acknowledgements

我们非常感谢支持的BHR通过发现格兰特以及来自自然科学和加拿大工程研究理事会(NSERC)的一个研究工具和仪器格兰特。我们也承认H.小田和布卢明顿果蝇中心提供,例如实时成像序列的遗传股股票。

Materials

Standard equipment and materials required to prepare embryos for live-imaging using the hanging drop protocol include the following items: microscope slides, coverslips (22 x 40 mm, No. 2), double-sided tape, jeweller’s forceps (Dumont style No. 5), halocarbon oil series 56 and series 700 (Halocarbon Products Corp.), a utility knife or single edge razor blade, tissue paper, scissors, distilled water, general purpose tape, and a pipet suitable for delivering 20-40 μl. The live imaging protocol also requires a custom-made live imaging chamber. This is prepared by cutting a 5 mm think polycarbonate plastic sheet to the dimensions of a standard microscope slide (75 X 25 mm) and using a rotor to create a 3mm deep depression in the slide (20 X 55 mm). Access to a stereomicroscope (dissecting microscope) and a fiber-optic illumination source is also required.

References

  1. Kiehart, D. P., Galbraith, C. G., Edwards, K. A., Rickoll, W. L., Montague, R. A. Multiple forces contribute to cell sheet morphogenesis for dorsal closure in Drosophila. J. Cell Biol. 149, 471-490 (2000).
  2. Schock, F., Perrimon, N. Cellular processes associated with germ band retraction in. , 248-2429 (2002).
  3. Reed, B. H., Wilk, R., Schock, F., Lipshitz, H. D. Integrin-dependent apposition of Drosophila extraembryonic membranes promotes morphogenesis and prevents anoikis. Curr. Biol. 14, 372-380 (2004).
  4. Wieschaus, E. p., Nusslein-Volhard, C., Roberts, D. B. . Drosophila: a practical approach. , 199-227 (1986).
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Cite This Article
Reed, B. H., McMillan, S. C., Chaudhary, R. The Preparation of Drosophila Embryos for Live-Imaging Using the Hanging Drop Protocol. J. Vis. Exp. (25), e1206, doi:10.3791/1206 (2009).

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