Summary

Elaboração de Drosophila Os embriões para Live-Imaging Usando o protocolo gota suspensa

Published: March 13, 2009
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Summary

Um método simples, barato e eficaz de preparação de embriões de Drosophila live-imaging análise é apresentada. Nosso protocolo fornece umidade e as trocas gasosas e não comprimir o embrião de Drosophila. Este método é adequado para GFP baseada em imagens ao vivo de embriões Drosophila usando um estereomicroscópio ou microscópio composto vertical.

Abstract

Proteína fluorescente verde (GFP) baseado em timelapse ao vivo de imagens é uma técnica poderosa para estudar a regulação genética de processos dinâmicos como a morfogênese do tecido, célula-adesão, ou morte celular. Embriões Drosophila expressando GFP são prontamente fotografada usando um microscópio estereoscópico ou confocal. A meta de qualquer protocolo de live-imaging é minimizar efeitos negativos como a desidratação e hipóxia. Protocolos anteriores para preparar os embriões de Drosophila live-imaging análise envolveram a colocação de embriões dechorionated em óleo halocarbonos e imprensando-los entre um halocarbono gás-permeáveis ​​membrana e uma lamela<sup> 03/01</sup>. A introdução de compressão através de embriões de montagem desta forma representa uma complicação indesejável para qualquer análise biomecânica da morfogênese baseado. Nosso método, que chamamos de o protocolo gotas de suspensão, resulta em excelente viabilidade de embriões durante a imagens ao vivo e não exige que os embriões ser compactado. Resumidamente, o protocolo de gota em suspensão envolve a colocação de embriões em uma gota de óleo halocarbono que está suspensa a partir de uma lamela, que é, por sua vez, fixados em posição através de uma câmara úmida. Além de proporcionar a troca gasosa e impedindo a desidratação, esse arranjo aproveita o empuxo de embriões em óleo halocarbono para impedi-los de drifting fora de posição durante a aquisição timelapse. Este vídeo descreve em detalhes como coletar e preparar Drosophila embriões para geração de imagens ao vivo usando o protocolo de gota em suspensão. Este protocolo é adequado para embriões de imagem dechorionated usando estereomicroscopia ou qualquer microscópio de fluorescência vertical composto.

Protocol

Preparação Coletar embriões em placas padrão suco de uva-agar 4. É conveniente usar um sistema automatizado de Drosophila Egg Collector (Flymax Scientific Equipment Ltd.). Usando síncrona encenado coleções embrião irá reduzir o número de dechorionations que devem ser executadas de modo a obter um número suficiente de embriões no estágio de desenvolvimento desejado. Prepare um slide dechorionation anexando um pedaço de fita dupla face a uma lâmina de microscópio; remover a…

Discussion

Descrevemos um novo método de preparação de embriões Drosophila para análise de imagens ao vivo, que chamamos de protocolo de gota em suspensão. Infelizmente, não é possível usar o protocolo de gota em suspensão se trabalhar com um microscópio invertido. Neste caso, a técnica de sanduíche (como descrito acima no abstract) deve ser utilizado e compressão dos embriões permanece uma preocupação.

Em experimentos onde a forma da célula e tamanho são medidos para calcular força…

Acknowledgements

Agradecemos o apoio de HB através de um Grant Descoberta, bem como um instrumentos de pesquisa e Grant Instrumento das Ciências Naturais e Engenharia pesquisas Council of Canada (NSERC). Reconhecemos também H. Oda eo Bloomington Drosophila ações Centro para a prestação de estoques genéticos que foram usadas no exemplo sequências de imagens ao vivo.

Materials

Standard equipment and materials required to prepare embryos for live-imaging using the hanging drop protocol include the following items: microscope slides, coverslips (22 x 40 mm, No. 2), double-sided tape, jeweller’s forceps (Dumont style No. 5), halocarbon oil series 56 and series 700 (Halocarbon Products Corp.), a utility knife or single edge razor blade, tissue paper, scissors, distilled water, general purpose tape, and a pipet suitable for delivering 20-40 μl. The live imaging protocol also requires a custom-made live imaging chamber. This is prepared by cutting a 5 mm think polycarbonate plastic sheet to the dimensions of a standard microscope slide (75 X 25 mm) and using a rotor to create a 3mm deep depression in the slide (20 X 55 mm). Access to a stereomicroscope (dissecting microscope) and a fiber-optic illumination source is also required.

References

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Cite This Article
Reed, B. H., McMillan, S. C., Chaudhary, R. The Preparation of Drosophila Embryos for Live-Imaging Using the Hanging Drop Protocol. J. Vis. Exp. (25), e1206, doi:10.3791/1206 (2009).

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