Summary

La préparation des Drosophile Les embryons destinés à Live-imagerie utilisant le protocole goutte suspendue

Published: March 13, 2009
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Summary

Une méthode simple, peu coûteux et efficace de préparer les embryons de drosophile pour live-imagerie analyse est présentée. Notre protocole prévoit l'échange d'humidité et de gaz et ne compresse pas l'embryon de drosophile. Cette méthode est adaptée pour la GFP imagerie basée sur des embryons de drosophile direct en utilisant un stéréomicroscope ou microscope composé debout.

Abstract

Protéine fluorescente verte (GFP) basé timelapse vivons-imagerie est une technique puissante pour étudier la régulation génétique de processus dynamiques tels que la morphogenèse des tissus, adhérence cellule-cellule, ou la mort cellulaire. Embryons de drosophile exprimant la GFP sont facilement imagée en utilisant la microscopie soit stéréoscopique ou confocale. Un but de tout protocole vivons-imagerie est de minimiser les effets néfastes tels que la déshydratation et l'hypoxie. Protocoles antérieurs pour préparer des embryons de drosophile pour live-analyse de l'imagerie ont impliqué plaçant embryons dechorionated dans l'huile d'halocarbures et de les intercaler entre un halocarbure perméables au gaz de membrane et une lamelle<sup> 1-3</sup>. L'introduction de la compression à travers embryons de montage de cette manière représente une complication indésirable pour toute analyse biomécanique basée sur la morphogenèse. Notre méthode, que nous appelons le protocole goutte suspendue, résultats dans une excellente viabilité des embryons lors de l'imagerie en direct et ne nécessite pas que les embryons soient compressées. Brièvement, le protocole goutte suspendue implique le placement d'embryons dans une goutte d'huile sur les halocarbures qui est suspendu à partir d'une lamelle, qui est, à son tour, en position fixe sur une chambre humide. En plus d'offrir l'échange de gaz et prévenir la déshydratation, cet arrangement profite de la flottabilité de l'embryon dans l'huile d'halocarbures pour les empêcher de dériver hors de position lors de l'acquisition timelapse. Cette vidéo décrit en détail la façon de recueillir et de préparer des embryons de drosophile pour l'imagerie en direct en utilisant le protocole goutte suspendue. Ce protocole est adapté pour les embryons d'imagerie utilisant dechorionated stéréomicroscopie ou microscope composé debout fluorescence.

Protocol

Préparation Recueillir des embryons sur le standard des plaques d'agar jus de raisin 4. Il est commode d'utiliser un système automatisé de drosophile Egg Collector (flymax scientifique Equipment Ltd.) Utiliser synchrones en scène des collections embryon réduire le nombre de dechorionations qui doivent être effectuées afin d'obtenir un nombre suffisant d'embryons au stade désiré de développement. Préparer une diapositive dechorionation en attachant un morceau de …

Discussion

Nous décrivons une nouvelle méthode de préparation des embryons de drosophile pour l'analyse de l'imagerie en direct, que nous appelons le protocole goutte suspendue. Malheureusement, il n'est pas possible d'utiliser le protocole goutte suspendue si l'on travaille avec un microscope inversé. Dans ce cas, la technique sandwich (comme décrit ci-dessus dans le résumé) doivent être utilisées et la compression des embryons reste un sujet de préoccupation.

Dans les ex…

Acknowledgements

Nous remercions le soutien à la BHR à travers une subvention à la découverte ainsi que d'un outils de recherche et Grant Instrument de recherches en sciences naturelles et en génie du Canada (CRSNG). Nous reconnaissons également H. Oda et le stock de Bloomington drosophile Centre de fournir des stocks génétiques qui ont été utilisés dans des séquences d'imagerie par exemple la vivre.

Materials

Standard equipment and materials required to prepare embryos for live-imaging using the hanging drop protocol include the following items: microscope slides, coverslips (22 x 40 mm, No. 2), double-sided tape, jeweller’s forceps (Dumont style No. 5), halocarbon oil series 56 and series 700 (Halocarbon Products Corp.), a utility knife or single edge razor blade, tissue paper, scissors, distilled water, general purpose tape, and a pipet suitable for delivering 20-40 μl. The live imaging protocol also requires a custom-made live imaging chamber. This is prepared by cutting a 5 mm think polycarbonate plastic sheet to the dimensions of a standard microscope slide (75 X 25 mm) and using a rotor to create a 3mm deep depression in the slide (20 X 55 mm). Access to a stereomicroscope (dissecting microscope) and a fiber-optic illumination source is also required.

References

  1. Kiehart, D. P., Galbraith, C. G., Edwards, K. A., Rickoll, W. L., Montague, R. A. Multiple forces contribute to cell sheet morphogenesis for dorsal closure in Drosophila. J. Cell Biol. 149, 471-490 (2000).
  2. Schock, F., Perrimon, N. Cellular processes associated with germ band retraction in. , 248-2429 (2002).
  3. Reed, B. H., Wilk, R., Schock, F., Lipshitz, H. D. Integrin-dependent apposition of Drosophila extraembryonic membranes promotes morphogenesis and prevents anoikis. Curr. Biol. 14, 372-380 (2004).
  4. Wieschaus, E. p., Nusslein-Volhard, C., Roberts, D. B. . Drosophila: a practical approach. , 199-227 (1986).
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Cite This Article
Reed, B. H., McMillan, S. C., Chaudhary, R. The Preparation of Drosophila Embryos for Live-Imaging Using the Hanging Drop Protocol. J. Vis. Exp. (25), e1206, doi:10.3791/1206 (2009).

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