Overview
Este vídeo introduz um método para isolar e estéril cultura células C. elegans embrionárias in vitro.
Protocol
1. Dissociação de células embrionárias
- Conduzir os próximos passos do procedimento em condições estéreis usando uma capa de fluxo laminar. Enquanto os animais estão vestidos em placas de bactérias, as lavagens e o tratamento com a solução de lise contendo alvejante devem eliminar a maioria, se não todas as bactérias. Assim, o uso de um capô laminar neste ponto do procedimento evita uma nova contaminação da suspensão do ovo.
- Resuspend ovos pelleted em 1 ml de 2 mg/ml chitinase (estoque em pH tampão de ovo 6.5) e transferi-los para um novo tubo cônico estéril de 15 ml. Balance o tubo por 10-30 min em temperatura ambiente. O tempo exato de incubação muda de acordo com o frescor da enzima e da temperatura da sala e, portanto, deve ser determinado para cada preparação. Recomenda-se começar a monitorar os ovos sob um microscópio de cultura celular invertida após 10 minutos de incubação. Nota: em nossa experiência, o pH baixo aumenta a atividade enzimática chitinase. Por esta razão usamos tampão de ovo no pH 6.5 para dissolver chitinase (receita relatada acima, onde o pH é ajustado para 6,5 utilizando NaOH).
- Quando ~ 80% das cascas de ovos são digeridas pelo tratamento de chitinase(Figuras 1 A-B), pelota os ovos por centrifugação a 900 x g (~2.500 rpm) por 3 min. Usando um pipettor P1000 e pontas estéreis, remova cuidadosamente o supernascente e adicione 3 ml de meio L-15.
- Transfira os ovos para uma placa de 6 cm de diâmetro e dissociar suavemente as células usando uma seringa estéril de 10 ml equipada com uma agulha de 18 G. Monitore o grau de dissociação colocando uma gota de suspensão em uma placa de Petri de plástico fresco e visualizando sob o microscópio. Não aspire o ar na seringa durante este procedimento para evitar danificar as células. Continue a dissociação até que ~ 80% das células sejam dissociadas.
- Filtre a suspensão usando um filtro millipore estéril de 5 μm. As suspensões celulares devem ser filtradas para remover aglomerados celulares, ovos não digeridos e larvas eclodidas. Filtre 4-5 ml adicionais de mídia L-15 fresca através do filtro para recuperar todas as células. Não use força excessiva durante a etapa de filtragem para evitar danificar o filtro e/ou as células.
2. Células de cultivo
- Pelota as células dissociadas por centrifugação a 900 x g (~2.500 rpm) por 3 min. Usando um pipettor P1000 e pontas estéreis remova cuidadosamente todo o supernante. Resuspenque as células pelotas em média L-15 completa e placa 1 ml/poço. A quantidade do meio adicionado depende do número de placas 8P utilizadas, da confluência dos vermes nas placas e do tipo de experimentos que serão realizados nas células. A densidade celular pode ser determinada usando um hemótmetro. Para gravações de grampos de remendo a densidade de revestimento de ~ 230.000 células/cm2 é ótima.
- Mantenha a placa de 24 poços em um recipiente de tupperware plástico contendo toalhas de papel molhadas para evitar a evaporação do meio de cultura. Armazene o recipiente em uma incubadora umidificada a 20 °C e ar ambiente.
- As células geralmente estão prontas para os experimentos dentro de 24 horas quando a diferenciação morfológica e a expressão dos marcadores GFP estão completas. As células podem ser mantidas na cultura por até 2 semanas, mas geralmente são mais saudáveis até 7-9 dias após o revestimento. O meio precisa ser substituído uma vez por dia para manter células saudáveis.
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Representative Results
Figura 1. C. elegans embriões antes e depois do tratamento de chitinase. (A) Fotografia de ovos antes da exposição à chitinase. A seta aponta para a casca de ovo transparente e intacta em torno de um embrião. (B) Ovos tratados com chitinase por 10 min. As cascas de ovos foram digeridas e não são mais visíveis ao redor dos embriões. As flechas apontam para embriões triplos liberados da casca de ovo. A caixa azul envolve um grupo de células que ainda estão presas umas às outras.
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Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
REAGENTS | |||
Leibovitz's L-15 Medium (1x) Liquid | Invitrogen | 11415-064 | |
Fetal Bovine Serum | Invitrogen | 16140-063 | |
Penicillin-streptomycin | Sigma | P4333-100ML | |
Chitinase from Streptomyces Griseus | Sigma | C6137-25UN | |
Peanut Lectin | Sigma | L0881-10MG | |
EQUIPMENT | |||
101-1000 μl Blue Graduated Pipet Tips | USA Scentific | 1111-2821 | |
10 ml Sterilized Pipet Individually Wrapped | USA Scentific | 1071-0810 | |
Ergonomic Variable Volume (100-1000 μl) Pipettor with tip ejector | VWR International Inc. | 89079-974 | |
Portable Pipet Aid, Drummond | VWR International Inc. | 53498-103 | |
Transfer Plastic Pipet Sterile | VWR International Inc. | 14670-114 | |
15 ml Conical Tube | USA Scentific | 1475-1611 | |
Sterile 18 gauge Needles | Becton, Dickinson and Co. | 305196 | |
Sterile 10 ml Syringes | Becton, Dickinson and Co. | 305482 | |
Plastic Syringe Filters Corning 0,20 μm pore size | Corning | 431224 | |
Acrodic 25 mm Syringe filter w/5 μm versapor Membrane | VWR International Inc. | 28144-095 | |
60x15 mm Petri Dish Sterile | VWR International Inc. | 82050-548 | |
100x15 mm Petri Dish Sterile | VWR International Inc. | 82050-912 | |
12 mm Diameter Glass Coverslips | VWR International Inc. | 48300-560 | |
Clear Cell Culture Plates 24 Well Flat Bottom w/lid | Thomas scientific | 6902A09 | |
Dumont #5- Fine Forceps | Fine Science Tools | 11254-20 | |
Centrifuge 5702 | Eppendorf | 22629883 | |
Laminar Flow Hood | |||
Inverted Microscope with x10 objective | |||
Ambient air humidified Incubator |