Summary
肝疾患は、線維症や肝硬変を促進する多くの原因によって誘発される。移植は健康回復のための唯一の選択肢です。しかし、移植可能な臓器の不足を考えると、代替案を検討する必要があります。我々の研究は、動物モデルからの肝臓組織におけるコラーゲン足場の移植を提案する。
Abstract
肝臓病は世界中の主要な死因です。過度のアルコール摂取、高脂肪食、C型肝炎ウイルス感染は、線維症、肝硬変、および/または肝細胞癌を促進します。肝臓移植は、進行した疾患段階における患者の寿命を改善し、延長するための臨床的に推奨される手順である。しかし、移植の10%だけが成功し、臓器の入手可能性、術前および術後の処置、および上昇したコストはその結果と直接相関している。細胞外マトリックス(ECM)足場は、組織修復の代替手段として登場しました。生体適合性および移植片の受容は、これらの生体材料の主な有益な特性である。肝臓の大きさと正しい機能を回復する能力は肝臓肝切除モデルで評価されているが、押し出された肝臓質量の体積を置き換える足場または何らかの支持の使用は評価されていない。
部分的な肝切除術は、ウシのコンダイルからのコラーゲンマトリックス足場(CMS)の異種移植を伴うラット肝臓で行った。左肝葉組織を取り除き(約40%)、同じ割合のCMSを外科的に移植した。肝機能検査は、外科的処置の前後に評価された。3日目、14日、21日後、動物を安楽死させ、巨視的および組織学的評価を行った。3日目と14日目には、21日目に血管の新形化およびCMS再吸収と同様に、拒絶反応または感染の臨床的証拠を伴って、CMSを取り巻く脂肪組織が観察された。ヘマトキシリンとエオシン(H&E)とマッソンのトリクローム染色で観察されたCMSへの微小な炎症プロセスと隣接する細胞の移行の組織学的証拠があった。CMSは肝臓組織で良好なパフォーマンスを示し、慢性肝疾患における組織再生および修復を研究するための有用な代替手段となり得る。
Introduction
肝臓は、ホメオスタシスおよびタンパク質産生の維持に関与する最も重要な器官の1つである。残念ながら、肝臓病は世界的に主要な死因です。肝硬変や肝細胞癌を含む肝臓損傷の進行段階では、肝臓移植が臨床的に推奨される手順です。しかし、ドナーの不足と移植の成功率が低いため、組織工学(TE)および再生医療(RM)における新しい技術が2,3に開発された。
TEは、炎症、線維性、および浮腫性の器官および組織1、5、6の回復を促進するために幹細胞、足場、および成長因子4を使用することを含む。足場に使用される生体材料は、ネイティブECMを模倣し、誘導細胞リモデリング7のための物理的、化学的、生物学的手掛かりを提供する。コラーゲンは、真皮、腱、腸、心膜8、9から得られる最も豊富なタンパク質の一つです。さらに、コラーゲンは、バイオプリンティングまたはエレクトロスピニング10、11を介して二次元および3次元足場を生成するバイオポリマーとして得ることができる。このグループは、肝臓組織の再生のための骨源からのコラーゲンの使用を報告する最初のグループです。別の研究は、皮膚から得られたウシコラーゲンから合成された足場の使用を、均質で密接に位置する細孔で、それらの間に何の通信もせずに12を報告する。
脱細胞化は、ネイティブECMを保存し、幹細胞電位13、14を有する細胞のその後の組み込みを可能にする。しかし、この手順は、マウスから肝臓、心臓、腎臓、小腸、および尿膀胱の実験段階にまだあるが、ラット、ウサギ、豚、羊、牛、および馬3、14。現在、切除された肝臓質量容積は、いずれの動物肝切除モデルにも置き換えられない。しかし、細胞増殖や血管新生を可能にする追加の支援またはネットワーク(生体材料)の使用は、肝臓の小葉機能の迅速な回復に不可欠である可能性があります。したがって、足場は慢性肝疾患の組織を再生または修復するための代替アプローチとして採用することができ、ひいては寄付や肝臓移植の臨床合併症による制限を排除する。
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Protocol
本研究は、国立大学オートノマ・デ・メヒコ(UNAM)医学部の倫理委員会(DI/115/2015)とメキシコ病院総合倫理委員会(CI/314/15)によって承認されました。この機関は、実験動物の生産、ケア、使用に関するすべての技術仕様を満たしており、国内法(NOM-062-ZOO-1999)によって法的に認定されています。この研究のために、150〜250g(生後6〜8週齢)の雄のウィスターラットを医学部の実験動物施設から得た。
1. 牛の大腿骨からコラーゲンマトリックス足場を得る
- メキシコの保健・農業当局によって認定された食肉処理場から牛の大腿骨からコンディレを入手してください。
- 手術器具でコンディレの脂肪、筋肉、軟骨を慎重に解剖する。鋸カッターを使用してコンディレの断片を3cm x3 cmの断片に切り、タオルで脂肪と血液をきれいにします。コンディレの破片を水で洗います。
- 1Lのアニオン性洗剤(10g/L)で30分間沸騰させます( 92°C)。顆片を2回洗い、アニオン性洗剤の残骸を取り除きます。
- フィルターペーパー(0.5mm)を使用して、コンディレフラグメントを3時間乾燥させます。
- ステップ 1.1 で述べた断片から厚さ 0.5 cm の三角形 (1 cm x 1 cm x1 cm) の CMS を準備します (図 1A)。
- 0.5 M HClの100 mLで一定の撹拌で10分間、断片を脱塩します。HCl を削除します。
メモ:水酸化ナトリウム(10 M)でHClを中和します。 - 断片を100mLの蒸留水で3回、毎回15分、一定の攪拌ですすります。CMSを濾紙(0.5mm)で1時間乾燥させます。
- 立体顕微鏡15を用いて、CMSの構造特性(細孔の大きさ、細孔形成、多孔性相互接続)を解析する(図1B)。
- 走査型電子顕微鏡16を用いて、CMSの荒い表面を解析する(図1C)。
- CMSの機械的変化(可塑性と柔軟性)を評価するために、ブレンドとストレッチのための解剖器を使用してください(図1D)。
- CMSを殺菌パウチに詰め込み、過酸化水素プラズマで38分間殺菌します。滅菌されたCMSを使用するまで20〜25°Cの乾燥した場所に元のパックに保管してください。
- 0.5 M HClの100 mLで一定の撹拌で10分間、断片を脱塩します。HCl を削除します。
2. 手術領域の準備と動物モデルの取り扱いと準備
- 手術領域、作業台、マイクロサージャスト顕微鏡、および2%クロルヘキシジン溶液でシートを消毒します。すべての手術器具、手術用スポンジ、綿棒、および使い捨て手術用ドレープを熱殺菌(121 °C/30分/100kPa)で殺菌する
- ラット(n=5)を1群あたり5匹のラット(1.シャム、2.肝切除術、3.肝切除術とCMS)の3つのグループに割り当て、3日目、14日、21日目にすべてのグループに従ってください。
- 後肢にケタミン(35mg/kg)およびキシラジン(2.5mg/kg)を筋肉内投与する。
注:鎮静期間は通常30〜40分間持続します。 - 外科用石鹸と両刃を用いて腹部皮膚(5cm×2cm)を剃り、3ラウンド17で局所10%ポビドネヨウ素溶液を使用して皮膚を消毒する。
- 動物を褥瘡の後部位置の暖かいプレートの上に置き、頸部が透過性の気道を維持するために伸長した状態で(図2)。
- 呼吸パターンを通して麻酔の深さを評価し、手足の離脱反射の損失を評価する。
- 剃った皮膚の周りに使い捨ての外科用カーテンを置き、xiphoidプロセスを基準点として使用して、メスでアルボウラインに切開(2.5cm)を作ります。出血を防ぐために腹壁の血管を避けてください。
- 腹部リトラクタを所定の位置に置き、腹腔を観察します。解剖鉗子を用いて、左肝葉を抽出し、金属板の上に置く(図3A)。
注:シャムグループでは、左肝葉を抽出し、肝臓を腹腔に戻すだけです。3-0ナイロン縫合糸で腹壁と皮膚を縫合します。 - CMSの有無にかかわらず実験群では、2つの切り傷でヘパテ切除術(約40%)を行うためにメスの刃および無菌のメスの刃(#15)を使用する。ヘパテクトミーを実行するには、三角形の金属テンプレート(1 cm x 1 cm x 1 cm)を使用します(図3B)。
- 肝臓の出血を防ぐために、5分間、肝臓の端に綿棒で外科的圧迫を維持する。
- 手術の前に20分間、生殖不能生理食塩水でCMSを水和する。肝切除部位に、生体材料の変位を防ぐために、肝臓組織とCMSの間の4つの縫合糸を移植する。7-0非吸収性ポリプロピレン縫合糸を使用する(図3C)。
注意:2回目の手術で縫合糸を取り除かないでください。縫合糸は、CMS移植部位を特定するための基準として使用することができる。 - 肝臓を腹腔に戻し、3-0ナイロン縫合糸で腹壁と皮膚を縫合する。手術用ヨウ素浸しスポンジで外科的切開を2ラウンドで洗浄します。動物の生命徴候を観察し、監視する。
- 後肢にケタミン(35mg/kg)およびキシラジン(2.5mg/kg)を筋肉内投与する。
3. 術後ケア
- 後肢に筋肉内でメグルミン・フリンチン(2.5mg/kg)を投与する。施設の動物のケアと使用委員会によって承認された鎮痛薬を管理します。
- 麻酔回復のために、温度制御(23°C)と騒音のない区域の実験室の動物の寝具が付いている個々のポリカーボネート箱に動物を置く。
- 動物の回復を観察し、2時間の水と食物の消費量を監視します。動物を監視は、機関の動物のケアと使用委員会によって承認されたように作動的に投稿します。
4. 血清中肝機能の評価
- 外科的処置の前に麻酔動物の横尾静脈(ベースライン値)および評価日3、14、および21で血液サンプル(500 μL)を採取する。
- 室温(23°C)で850 ×g/10分で血液サンプルを遠心分離します。血清を分離し、使用するまで-80°Cで保存してください。
- 肝機能検査のパネルを行う:血清アルブミン(ALB)、アルカリホスファターゼ(ALP)、アラニンアミノトランスビセラーゼ(ALT)、アスパラギンアミノトランスビラーゼ(AST)、総ビリルビン(TB)、および直接ビリルビン(DB)(表1)。
5. 安楽死と組織管理
- 上記のプロトコルに従って、評価(3日目、14日、21日)ごとに動物を麻酔する。
- 制度的な動物のケアと使用委員会によって承認される方法を介して安楽死させる。
- 頭皮を持つ アルボウスライン の切開(5〜6cm)を行い、腹腔の器官を観察し、CMSの有無にかかわらず、シャムと実験群の肝切除領域の写真を撮ります。
- すべての研究グループ動物から肝臓サンプル(2cm x 2 cm;0.40-0.45 g)を採取し、その後の組織学的評価のために24時間4%ホルムアルデヒド溶液に入れます。
6. 組織学的分析
- 肝臓組織を4%ホルムアルデヒドで保存し、アルコール濃度のシリーズ(60%、70%、80%、90%、100%)を使用して組織を脱水します。それらをキシレン(1h)に入れ、パラフィン16に埋め込む。
- 8枚のスライドを作成するために、ミクロトームでパラフィンブロックを4μmの厚さのセクションに切ります。
- H&Eとマッソンのトリクローム染色16を実行します。
- 染色された切片を光顕微鏡で観察し、CMSの有無にかかわらず肝臓の代表的な領域を選択します。4倍、10倍、40倍の倍率で顕微鏡写真を取得し、適切なソフトウェア18を使用して画像を処理します( 資料表を参照)。
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Representative Results
骨脱塩は、元の形状や毛穴の相互接続を変更することなく、CMSの機械的特性に影響を与えます。CMSは任意の形状を有することができ、したがって、選択された器官または組織19の大きさおよび形状に調整することができる。本プロトコルでは、三角形のCMSを使用しました(図1A-D)。ラットモデルを用いて、肝臓におけるCMSゼノインプラントの再生能力を評価した。肝臓は、取りやすくて柔らかい器官ですが、このプロトコルで行う外科的処置により、CMSが所定の位置に残っていることを確認しました(図2および図3A-C)。左葉の40%の部分肝切除術は、臓器の一部を評価することを可能にし、肝臓の残りの部分をそのまま維持し、インプラントと天然のパレンチマの変化を比較することができた。また、CMS移植前後の肝機能を評価する血液サンプルを取得しました。
3日と14日でのCMS移植の有無にかかわらず、偽群と実験群の間に生化学的パラメータのベースライン濃度に違いはなかった。参照値内に残った値(ALB: 0.43-2.41 g/dL;ALP: 134-357.3 U/L;ALT: 41-83.1 UI/L;AST: 61.4-276.2 UI/L;TB: 0.01-0.43 mg/dL;DB: 0.1 mg/dL)20.また、21日目のシャム群と実験群の間にはアルブミン、ALP、ALT、AST、TB、およびDBレベルに違いはなく、CMSが肝機能を妨げないことを示す(表1)。
安楽死の間に、探索的開腹術は肝臓の典型的な色と正しいサイズおよび形を明らかにした。いずれの症例においても、移植部位で炎症や感染は認められなかった。3日目には、腹腔に関する臓器の変化はなかった(図4A)。肝組織およびCMSを含む部分では、血液がCMSに浸潤し、インシピエント付着性のオメンタル脂肪を有することが観察された(図4B)。14日目には、脂肪の量が増加しました。血管の新形化とレシピエント肝臓組織へのCMSの統合があったが、小腸や腹腔の器官に変化はなかった(図5A)。前部領域(図5B)では、前部脂肪が、CMS移植部位の内臓ゾーン(図5C)と比較して高かった。評価21日目に、CMSが肝臓に組み込まれる方が明らかであった(図6A)。間葉系幹細胞21の供給源であるため、軟体脂肪の増加は再生の進行の指標として用いることができる。また、21日目に、肝臓は劣化と吸収に対応する緻密な領域を提示し、サイズや元の形状を変化させる(図6B)。
CMSインプラントを用いて肝臓の微細構造を解析するために、移植部位からの組織の代表的な断片の組織学的解析を行い、これは右肝葉からの組織と比較した(対照)3日目、14日目、21日目に行われた生検は処理され、H&Eとマッソンのトリクローム染色を行った。肝パレンチマの正常構造は、21日目のシャム群で観察された(図7Aおよび図7E)。3日目に、組織学的分析は、肝臓におけるCMSの存在が異物反応を促進しなかったこと、および緩い結合組織の顕著な存在が観察されたことを示した(図7Bおよび図7F)。14日目と21日目には、緩い結合組織がより豊富で、CMSの線維柱が肝細胞に囲まれ、肝細胞がCMSに移行したことを示唆した(図7Cおよび図7G;図 7D および図 7H)。結果はまた、血管によって灌漑された肝細胞の領域を示した(図8A)。綿密な検査により、CMS線維柱に付着していた肝細胞が、時には緩い結合組織に囲まれていることが明らかになった(図8B-D)。二重盲検独立病理医は、組織病理学的分析を行った。肝再生過程に関連する異なるタンパク質や遺伝子を評価するために、免疫細胞化学とポリメラーゼ連鎖反応ベースのアッセイが進行中です。
したがって、巨視的および顕微鏡的な観察と生化学的価値は、CMSが肝臓再生を支援し促進するための理想的な生体物質であるという我々の命題を支持する。それにもかかわらず、CMS移植は、その吸収時間および完全な肝臓組織修復を決定するために21日以上評価されなければならない。また、CMSの存在下で肝再生に関連する異なるタンパク質や遺伝子を評価する研究を行う必要があります。
図1:骨標本及びCMS(A)骨標本の三角試料を利用してCMSを調製した。(B) 電子顕微鏡で観察されるCMSの細孔および相互接続または三角形の接続の詳細図。(C) ステレオ顕微鏡下で見た CMS。(D)器具によるCMS操作を行い、機械的特性の改変を検証した。略語: CMS = コラーゲンマトリックス足場.この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図2:動物の手術準備 動物は褥瘡の位置にあり、剃った腹部領域を示し、肝切除術およびCMS移植のために調製した。略語: CMS = コラーゲンマトリックス足場. この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図3: 肝臓の左葉の肝切除術(A)左葉を抽出し、金属板の上に置いて肝切除術を行った。(B)左葉の40%の肝切除術をCMSのような三角形の形状で行った。(C)肝切除術の領域はCMSに置き換えられます。略語: CMS = コラーゲンマトリックス足場.この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図4:評価の3日目(A)評価3日目の移植部位のマクロスコープ観察。(充填された星)を移植した肝臓は、CMS(点線)の色や大きさに変化しなかった。小腸(空の星)および腹部の残りの部分は変化を示さなかった。(B) 肝臓のサンプル (満たされた星) と CMS (白い矢印) は、オメンタル脂肪 (赤い矢印) で覆われています。略語: CMS = コラーゲンマトリックス足場.この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図5:評価の14日目(A)評価14日目の移植部位のマクロ顕微鏡観察。CMSを有する肝臓組織(充填された星)は、色や大きさが変化しなかった。小腸(空の星)と腹腔の残りの構造および器官は変化を示さなかった。移植されたCMSを有する肝臓のサンプル: (B) 前観;(C) 後部/内臓ビュー。領域を覆うオメンタル脂肪(赤い矢印)。CMSは肝臓組織に統合された。オメンタル脂肪(赤い矢印)は、主に前視で領域をカバーしています。点線はCMS移植部位を示す;縫合糸(青い糸)。略語: CMS = コラーゲンマトリックス足場.この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図6:評価21日目(A)評価21日目における移植部位のマクロ顕微鏡観察。CMS(点線)を埋め込んだレシピエント肝臓(充填星)は、色や大きさを変化しなかった。小腸(空の星)および腹部の残りの部分は変化を示さなかった。(B)移植されたCMSを有する肝臓のサンプル(点線)は、サイズおよび形状の変化を示す。略語: CMS = コラーゲンマトリックス足場.この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図7: CMSを用いた肝臓と肝臓のヒストロジー(A)特徴的な組織アーキテクチャを示す正常肝臓(SHAM)(B) CMSの線維性の接線組織(破線の楕円形)に緩い結合組織を示すCMS移植の3日目。(C)ネイティブ肝臓(右側)とCMS(左側)の間の遷移ゾーン、CMSのトラベキュラ(矢印)を有する。(D) 21日目にCMS(点線)に接触するネイティブ肝臓。(E) マソンのトリクロム染色を有する正常な肝臓。(F) 肝臓に移植されたCMS;3日目に緩い結合組織の侵入(破線楕円形)。(G)14日目、CMS線維柱管を有する在来肝臓は、ネイティブ肝臓外の肝細胞(充填星)の領域を示し、ネイティブ肝細胞がCMSを介して移行したことを示す。(H) 21日目に、ネイティブ肝細胞がCMS(矢印)に移行した。AとE:スケールバー=200 μm:4x、B -DおよびF-H:スケールバー=100 μm:10x. A-D:H&E染色;E-H:マッソンのトリクローム染色。略語: CMS = コラーゲンマトリックス足場;H&E = ヘマトキシリンおよびエオシン。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図8: 肝臓の病変とCMSのヒストロジー (A)CMSの柱内に存在する肝細胞(白矢印)のプール(黒矢印)。肝細胞は、容器(充填された星)によって灌漑される。(B) 肝細胞 (白い矢印) が移行し、CMS の柱(黒矢印)に付着した。(C) CMSの2つの柱状(黒い矢印)の間に肝細胞群(破線円)が認められる。(D) 肝細胞は、緩い結合組織(破線楕円形)の存在下でCMSのトラベキュラ(黒い矢印)に付着している。AおよびC:スケールバー= 100 μm:10x BおよびD:スケールバー= 20 μm:40x。略語: CMS = コラーゲンマトリックス足場.この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
| 日 | 真似事 | 切除 | 移植 CMS | |
| ALB (g/dL) | 3 | 1.4±0 | 1.25±0.07 | 1.4±0 |
| 14 | 1.3±0.5 | 1.85±0.07 | 1.8±0.14 | |
| 21 | 1.3±05 | 1.6±0.1 | 1.7± 0 | |
| ALT (IU/L) | 3 | 73±1.4 | 3.5±0.7 | 54.6±6.4 |
| 14 | 84±0 | 59.5±4.9 | 57±4.2 | |
| 21 | 57±0 | 73.5±14.8 | 73.5±14.8 | |
| AST (IU/L) | 3 | 106±1.4 | 80±6.6 | 90±1.4 |
| 14 | 127±5.5 | 94±21.2 | 83.5±17.6 | |
| 21 | 123.7±27.3 | 92.5±24.7 | 101±31.1 | |
| 結核 (mg/dL) | 3 | 0.33±0.05 | 0.25±0.07 | 0.3±0 |
| 14 | 0.5±0 | 0.2±0 | 0.15±0 | |
| 21 | 0.3±0 | 0.4±0 | 0.4±0.14 | |
| DB (mg/dL) | 3 | 0.1±0 | 0.05±0.07 | 0.1±0 |
| 14 | 0.1±0 | 0.1±0 | 0.1±0 | |
| 21 | 0.1±0 | 0.1±0 | 0.1±0 |
表1: 肝機能. 肝機能検査は、3日、14日、21日にCMSの有無にかかわらず、恥と実験群に対して実施された。略語: CMS = コラーゲンマトリックス足場;ALB = アルブミン;ALP = アルカリホスファターゼ;ALT= アラニンアミノトランスフェリン酵素;AST = アスパラギン酸アミノトランスフェーゼ;TB = 総ビリルビン;DB = 直接ビリルビン。
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Discussion
臓器移植は、肝線維症または肝硬変患者における治療の主力である。いくつかの患者がこの処置の恩恵を受け、待機リストの患者に治療的代替手段を提供する必要がある。組織工学は、再生電位2、4、13を有する足場と細胞を採用する有望な戦略である。肝臓の一部の除去は、この血管化された器官の多量の出血のために、この手順の重要なステップです。したがって、手術用ベッドの止止めは、この合併症を防ぐために行われなければならない。さらに、組織生体物質相互作用を保証するために不可欠なCMSへの肝臓組織の結合は、縫合糸の使用を通じて容易である。しかし、肝臓を引き裂いて後で出血を引き起こすのを避けるために慎重に行う必要があります。
本明細書で提案される生体材料はウシ起源(異種性)であるが、ラットの生体物質反応のデータはなく、選択的肝切除術を可能にする。これに対して、2/3肝切除モデルは、大量の肝組織14の除去のために動物の死を引き起こすことが示されている。また、肝切除術やCMSでのサイズの標準化が困難なため、ステンレス鋼の金属テンプレートを開発しました。既存の技術がコラーゲンの構造とその生化学的性質を改変したため、CMSの滅菌は困難でした。したがって、過酸化水素のプラズマが最適な手法13であると判断する前に、熱、ガンマ放射、およびエチレンオキシドによる殺菌法を殺菌方法として検討した。
肝臓に移植できるCMSの最大サイズを決定し、全身レベルで生物学的応答を評価することが不可欠です。また、より大きな動物種においてこの技術の有効性を最適化し、調査する必要がある。さらに、より長い期間(>30日間)肝臓におけるCMS移植の影響を調査することが重要であり、CMSのバイオソルプの程度および肝組織の再生を評価することが可能になる。さらに、CMS移植の効果は、肝臓損傷を有する動物モデルにおいて調べなければならない。この移植方法は、切除された組織の形状および体積の回復を探求する戦略への扉を開き、それによって麻酔、外科的持続時間、および回復時間4、13を減少させる。
CMSは自然源から得られ、生体適合性または生体吸収性ではないバイオプリンティングやエレクトロスピニングなどの複雑な方法論を用いて作られた合成バイオマテリアルと比較して、その物理的および化学的特性を保存した。このCMSの主成分は、細胞接着および増殖を可能にするECMの主なタンパク質であるコラーゲンタイプIである22.さらに、CMSの細孔のばまがえは細胞の移動および成長因子、血液および再生プロセスの他のメディエーターの連続的な流れを可能にする。修復する組織によると、この研究グループは、3D構造を維持し、異なる形状でCMSを設計した経験があります。例えば、円筒形のCMSは、ブタの犬の尿道および胆管に移植され、組織再生23,24において有望な結果をもたらした。
このCMSの移植は、組織の再生を刺激し、異なる病因(例えば、ウイルス、アルコール、代謝因子)による肝硬変における線維形成線維化バランスを回復させる代替治療となり得る。CMSによって引き起こされる分子および細胞メカニズムを特定するために、増殖、移動、および炎症アッセイを行う必要があります。結論として、この論文は、肝切除術の再現性のある手順と、生体材料の異種移植による再生プロセスの検討について述べる。
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Disclosures
著者らは、競合する財政的利益はないと宣言している。ベンハミン・レオン=マンシラは、プログラム・デ・ドクマド・エン・シエンシアス・バイオメディカ、ナシオナル・エトノマ・デ・メヒコ大学(UNAM)の博士課程の学生で、DGAPA-UNAMフェローシップを受けました。
Acknowledgments
著者らは、実験医学ユニットの実験動物施設、技術的および外科的支援のための看護師カロライナ・バニョスG.、マイクロ写真のサポートのためのマルコ・E・グディーニョ・Z、肝臓のヒストロジーのサポートのためのエリック・アポの人員に感謝したいと考えています。国家評議会は、科学技術のためのこの研究を支援しました(CONACyT),助成金番号SALUD-2016-272579とPAPIIT-UNAM TA200515.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anionic detergent | Alconox | Z273228 | |
| Biopsy cassettes | Leica | 3802453 | |
| Camera DMX | Nikon | DXM1200F | |
| Centrifuge | Eppendorf | 5424 | |
| Chlorhexidine gluconate 4% | BD | 372412 | |
| Cover glasses 25 mm x 40 mm | Corning | 2980-224 | |
| Eosin | Sigma-Aldrich | 200-M | CAS 17372-87-1 |
| Ethyl alcohol, pure | Sigma-Aldrich | 459836 | CAS 64-17-5 |
| Flunixine meglumide | MSD | Q-0273-035 | |
| Glass slides 75 mm x 25 mm | Corning | 101081022 | |
| Hematoxylin | Merck | H9627 | CAS 571-28-2 |
| Hydrochloric acid 37% | Merck | 339253 | CAS 7647-01-0 |
| Ketamine | Pisa agropecuaria | Q-7833-028 | |
| Light microscope | Nikon | Microphoto-FXA | |
| Microsurgery stereomicroscope | Zeiss | OPMI F170 | |
| Microtainer yellow cape | Beckton Dickinson | 365967 | |
| Microtome | Leica | RM2125 | |
| Model animal: Wistar rats | Universidad Nacional Autónoma de México | ||
| Nylon 3-0 (Dermalon) | Covidien | 1750-41 | |
| Polypropylene 7-0 | Atramat | SE867/2-60 | |
| Povidone-iodine10% cutaneous solution | Diafra SA de CV | 1.37E+86 | |
| Scanning electronic microscope | Zeiss | DSM-950 | |
| Sodium hydroxide, pellets | J. T. Baker | 3722-01 | CAS 1310-73-2 |
| Software ACT-1 | Nikon | Ver 2.70 | |
| Stereomicroscope | Leica | EZ4Stereo 8X-35X | |
| Sterrad 100S | Johnson and Johnson | 99970 | |
| Surgipath paraplast | Leica | 39601006 | |
| Synringe of 1 mL with needle (27G x 13 mm) | SensiMedical | LAN-078-077 | |
| Tissue Processor (Histokinette) | Leica | TP1020 | |
| Tissue-Tek TEC 5 (Tissue embedder) | Sakura Finetek USA | 5229 | |
| Trichrome stain kit | Sigma-Aldrich | HT15 | |
| Unicell DxC600 Analyzer | Beckman Coulter | BC 200-10 | |
| Xylazine | Pisa agropecuaria | Q-7833-099 | |
| Xylene | Sigma-Aldrich | 534056 | CAS 1330-20-7 |
References
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