Summary
本稿では、全血から無細胞DNAや循環腫瘍細胞などの物質を簡便かつ効率的に分離・回収するための自動化装置の適用について述べる。
Abstract
最近、リキッドバイオプシーは癌を含む様々な疾患の診断に使用されている。体液には、正常組織に由来する細胞、タンパク質、核酸など、多くの物質が含まれていますが、これらの物質の中には患部に由来するものもあります。体液中のこれらの物質の調査と分析は、さまざまな病気の診断において極めて重要な役割を果たします。したがって、必要な物質を正確に分離することが重要であり、この目的に使用するためにいくつかの技術が開発されています。
私たちは、CD-PRIMEという名前のディスク上のラボタイプのデバイスとプラットフォームを開発しました。この装置は自動化されており、サンプルの汚染とサンプルの安定性に良好な結果が得られます。また、取得収率が良く、操作時間が短く、再現性が高いという利点があります。さらに、装着する椎間板の種類に応じて、無細胞DNAを含む血漿、循環腫瘍細胞、末梢血単核球、またはバフィーコートを分離することができます。したがって、体液中に存在する様々な材料の取得は、オミクスの研究を含む様々な下流用途のために行うことができる。
Introduction
がんを含む様々な疾患を早期かつ正確に発見することは、治療戦略を確立する上で最も重要な要素です1,2,3,4。特に、癌の早期発見は、患者の生存率の増加と密接に関連している5、6、7、8。近年、がんの早期発見のためにリキッドバイオプシーが脚光を浴びています。固形腫瘍は血管新生を受け、さまざまな物質を血中に放出します。特に、循環DNA(ctDNA)、循環RNA(ctRNA)、タンパク質、エクソソームなどの小胞、および循環腫瘍細胞(CTC)が癌患者の血液中に見出されている2,9。これらの物質の量には違いがありますが、初期段階だけでなく後期段階でも一貫して観察されます6,10。ただし、これらの個人差は非常に高いです。例えば、ctDNAを含む無細胞DNA(cfDNA)の量は1,000ng未満であり、CTCの数は癌患者11,12,13の全血10mLで100未満である。多くの研究は、より少ない量で存在するこれらの物質(すなわち、cfDNA、ctDNA、およびCTC)を使用して癌を特徴付けています。正確な結果を得るためには、少量の物質を高純度で正確に分離することが重要です13,14。従来の遠心分離法が一般的であるが、取り扱いが難しく、ユーザーの熟練度によっては純度が低い。CTCの発見以来、遠心分離や密度グレード分離、イムノビーズ、マイクロ流体法など、いくつかの分離技術が開発されてきました。CTCの発見以来、いくつかの封じ込め技術が開発されてきました。しかしながら、これらの技術は、それらを単離するために使用される様々なチップおよび膜から細胞を単離する必要がある場合にしばしば制限される15。また、タグ付け方法はFACSなどの設備を必要とし、タグ付け汚染による下流工程に限界があります。
近年、リキッドバイオプシーの利用が増加しており、がんの早期発見に向けて様々な研究が行われています。この方法は単純ですが、ダウンストリーム分析にはまだ困難があり、さまざまな研究がこれらの困難を克服しようとしています16,17。さらに、病院を含む多くの施設では、使いやすく、自動化された再現性のある高純度の方法が必要です。ここでは、リキッドバイオプシー後の血液サンプルからの物質の自動分離のためのラボオンディスクを開発しました。これらのデバイスは、遠心分離、マイクロフルイディクス、およびポアサイズの細胞捕捉の原理に基づいています。ディスクには3つのタイプがあります:LBx-1は血漿とバフィーコートを獲得でき、LBx-2は10mL未満の容量の全血から血漿とPBMCを取得できます。FAST-autoは、ディスクから取り外し可能なメンブレンを使用してCTCを取得することもできます。1回の実行で最大4枚のディスクを使用できます。とりわけ、この装置及び方法の利点は、少量の血液を用いて、同一の試料から様々な癌由来物質を得ることができることである。これは、患者の血液を一度だけ採取する必要があることを意味します。また、採血期間の違いによる誤差を排除できるという利点もある。このプラットフォームは使いやすく、リキッドバイオプシーやダウンストリームアプリケーションに正確な結果を提供します。このプロトコルでは、デバイスとカートリッジの使用法が導入されています。
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Protocol
すべての全血サンプルは肺がん患者から得られた。クライノミクスでの研究・解析はがんゲノミクス研究所が行い、政府によるIRB研究承認は峨山医療センター治験審査委員会(IRB NO. 2021-0802)が主導し、IRB番号がクライノミクスで研究登録されています。
1. サンプル調製
- 9 mLの全血をEDTAまたはcfDNAで安定した採血管に採取します。
- チューブを約10回上下にひっくり返してよく混ぜます。
- サンプルは室温(RT、短期保存の場合)または4°C(長期保存の場合)で保存してください。凍結解凍しないでください。
2.デバイスの準備
- 電源スイッチを押して機器の電源を入れます。
注意: タッチパッドにロード画面が表示され、機器が初期化されます。初期化中は、機器から手を離してください。機器の初期化が完了すると、カートリッジ選択画面が表示されます。 - 使用するサンプルモードを選択します。矢印を押してサンプル数を変更します。
3.デバイスの操作とサンプル収集
- LBx-1カートリッジの装填
- 機器のタッチスクリーンパネルでカートリッジタイプを選択します。矢印ボタンを押してサンプル数を変更します。
- 機器のドアを開き、使用するすべてのカートリッジをカートリッジホルダーの番号順に挿入します。カートリッジとカートリッジホルダーを正しく挿入してください。カートリッジが正しく挿入されていないと、機器にかなりの損傷を与える可能性があります。
- 合計 4 つのカートリッジの場合は、カートリッジホルダーの空きスペースにダミーカートリッジを置きます。
- サポートホイールを使用してカートリッジを取り付け、ロックナットを締めて固定します。
- ドアを閉め、タッチパッド画面の RUN ボタンを押します。機器はカートリッジのバルブを閉じますが、これには約30秒かかります。
- メッセージに従ってドアを開き、サポートホイールを取り外し、バルブクローズカートリッジをカートリッジホルダーから取り外します。
- カートリッジをテーブルに置き、全血サンプルを注入する準備をします。血清学的ピペットを使用して、最大10 mLの全血サンプルをピペットでピペットします。
注意: 血液を取り扱う危険性があります。血液サンプルと試薬を取り扱う手順全体を通して、白衣と実験用手袋を着用することが重要です。提供されたMSDSは、実験室の労働者によって徹底的に研究されるべきです。 - ピペットチップをカートリッジのサンプル入口の奥深くに挿入し、全血サンプルをゆっくりと注入します。
注 9 mL以上の全血サンプルを使用する場合、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)の添加は必要ありません。9 mL未満の全血サンプルを使用する場合は、PBSを追加して総容量を9 mLにします。例えば、7.2mLの全血を使用する場合は、サンプル注入口に1.8mLのPBSを追加してください。血清学的ピペットまたはピペットチップは、全血およびPBSの注射に使用することができる。8mL未満の全血サンプルを使用する場合、1mLのPBSを添加してもバフィーコートが回復しない場合があります。gDNA調製には、このステップの前に分離した200 μLの全血を使用します。 - 使用するカートリッジをカートリッジホルダーの番号順に挿入します。サポートホイールを使用してカートリッジを取り付け、ロックナットを締めて固定します。ドアを閉め、 OK ボタンを押します。
注:血漿とバフィーコートは全血から自動的に分離され、約30分かかります。
注意 操作中の危険。高速回転操作中にドアを開けたり、機器に触れたりすると、重傷を負う可能性があります。ローターの非対称荷重による怪我のリスクもあります。アシストセルエンリッチメントまたはエキスパートモードで機器を起動したときに異常な振動やノイズが発生した場合、カートリッジの配置が非対称である可能性があります。すぐに電源キーを押して停止し、カートリッジを正しく取り付けます。 - プラズマとバフィーコートの分離が完了すると表示されるアラーム音を伴う画面上のメッセージを探します。
- ドアを開けるか、 STOP ボタンを押してアラームを停止します。ドアを開け、カートリッジを取り出し、テーブルに置きます。
- 1 mL ピペットチップを使用して、血漿出口から 3 mL の血漿を回収します。1 mL ピペットチップを使用して、バフィーコート出口から 3 mL のバフィーコートを回収します。
- LBx-2カートリッジのロード
- 機器のタッチスクリーンパネルでカートリッジ名を選択します。矢印ボタンを押してサンプル数を変更します。
- ドアを開けて、使用するカートリッジをカートリッジホルダーの番号順に挿入します。
- 合計 4 つのカートリッジの場合は、カートリッジホルダーの空きスペースにダミーカートリッジを置きます。
- サポートホイールを使用してカートリッジを取り付け、ロックナットを締めて固定します。カートリッジをカートリッジホルダーに正しく挿入してください。カートリッジが正しく挿入されていないと、機器にかなりの損傷を与える可能性があります。
- ドアを閉め、タッチパッド画面の RUN ボタンを押します。機器はカートリッジのバルブを閉じますが、これには約30秒かかります。
- メッセージに従ってドアを開き、サポートホイールを取り外し、バルブクローズカートリッジをカートリッジホルダーから取り外してテーブルに置きます。
- カートリッジをテーブルに置き、密度勾配溶液と全血サンプルを注入する準備をします。全血試料の量に応じて注入する密度勾配溶液とPBSの容量を確認する(補足表1)。
- 密度勾配溶液を血清学的ピペットを用いてピペットする。ピペットチップをカートリッジの入口の奥深くに挿入し、密度勾配溶液をゆっくりと注入します。
- 密度勾配溶液を注入した後、血清学的ピペットを用いて全血試料をピペットする。ピペットチップをカートリッジのサンプル入口の奥深くに挿入し、全血サンプルをゆっくりと注入します。
注:全血サンプルを9mL未満使用する場合は、この表を参照してPBSを追加してください(補足表1)。 - 使用するカートリッジをカートリッジホルダーの番号に従って順番に挿入します。サポートホイールを使用してカートリッジを取り付け、ロックナットを締めて固定します。ドアを閉め、 OK ボタンを押します。
- 血漿とPBMCは全血から自動的に分離され、約30分かかります。プラズマとPBMCの分離が完了すると、アラーム音とともに表示されるメッセージを探します。
- ドアを開けるか、 STOP ボタンを押してアラームを停止します。ドアを開け、カートリッジを取り出し、テーブルに置きます。
- 1 mL ピペットチップを使用して、血漿出口から 3 mL の血漿を回収します。1 mL ピペットチップを使用して、PBMC 出口から 3 mL の PBMC を回収します。
- FAST-AUTO カートリッジのロード
- 機器のタッチスクリーンパネルでカートリッジを選択します。矢印ボタンを押してサンプル数を変更します。
- ドアを開けて、使用するカートリッジをカートリッジホルダーの番号順に挿入します。合計 4 つのカートリッジの場合は、カートリッジホルダーの空きスペースにダミーカートリッジを置きます。
- サポートホイールを使用してカートリッジを取り付け、ロックナットを締めて固定します。
- ドアを閉め、タッチパッド画面の RUN ボタンを押します。機器はカートリッジのバルブを閉じますが、これには約30秒かかります。
- メッセージに従ってドアを開き、サポートホイールを取り外し、バルブクローズカートリッジをカートリッジホルダーから取り外します。
- カートリッジをテーブルに置き、PBS溶液と全血サンプルを注入する準備をします。6mLのPBS溶液を血清学的ピペットを用いてピペットする。ピペットチップをカートリッジのPBSインレットの奥深くに挿入し、6 mLのPBS溶液をゆっくりと注入します。
- PBS溶液を注入した後、LBx−2から得られた全血またはPBMCサンプル3mLを血清学的ピペットを用いてピペットし、これを予め1%BSAですすいで残渣の付着を防止した。ピペットチップをカートリッジのサンプル入口の奥深くに挿入し、全血サンプルをゆっくりと注入します。
- 使用するカートリッジをカートリッジホルダーの番号順に挿入します。サポートホイールを使用してカートリッジを取り付け、ロックナットを締めて固定します。ドアを閉め、 OK ボタンを押します。
- CTCは全血から自動的に濃縮され、約15分かかります。CTC のエンリッチメントが完了したときにアラーム音とともに表示されるメッセージを探します。ドアを開けるか、 STOP ボタンを押してアラームを停止します。
- ドアを開け、カートリッジを取り出し、テーブルに置きます。バックプレートリムーバー(BPR)をカートリッジ前面の4つの穴に挿入します。両手の親指で紺色の翼を押し、カチッと音がするまで水色の体を押します。
- カートリッジ本体を持ち上げて慎重に取り外します。ピンセットを使用して、フィルター膜の端を非常に静かに持ち上げます。必ずフィルターメンブレンの外縁(幅1mmのエッジ部分)を使用して、フィルターメンブレンをつまんで保持してください。
- フィルターメンブレン(濃縮CTCが存在する)を核酸調製用の1.5 mLチューブに慎重に入れます。必要に応じて、1 mLピペットチップを使用してろ過した血液を血液出口に回収します。
4. システムのメンテナンス
- 機器の洗浄と消毒の準備
- エタノールと乾燥ティッシュを使用して、機器とアクセサリのすべてのアクセス可能な表面を週に一度清掃し、汚染された場合はすぐに清掃します。
- アルコール(エタノールとイソプロパノール)またはアルコールベースの消毒剤を使用して、ボウルとローターシャフトを定期的に清掃してください。
- 機器の洗浄と消毒
メモ: マシンの一般的なトラブルシューティングおよびその他の注意事項については、 補足表 2 を参照してください。- 主電源スイッチを使用して機器の電源を切ります。電源プラグを電源装置から外します。
- ドアを開け、広告を使用して、電源ケーブルを含む機器のアクセス可能なすべての表面を清掃および消毒しますamp 布と推奨される洗浄剤。
- ローターシャフトに損傷がないか確認してください。機器に腐食や損傷がないか調べます。
- 機器は、内側と外側が完全に乾いている場合にのみ、電源に接続してください。
- 主電源プラグを外し、ヒューズホルダーを取り外します。ヒューズホルダーは電源ソケットの上にあります。使用済みのヒューズをコンテナの予備のヒューズと交換します。
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Representative Results
この技術の目標は、全血から癌関連物質を簡単かつ自動的に分離することです。特に、誰でもこの手法をすべての適切な研究および分析分野で使用できます。単一の血液サンプル中の複数の物質の同時かつ再現性のある分離は、リキッドバイオプシーにおいて重要です。LBx-1およびLBx-2ディスクは、全血から血漿およびバフィーコートまたはPBMCを分離するために使用されます。 図1 は、このデバイスのアプリケーションによって分離された材料を示しています。まず、LBx-1を用いて10mLの血液から血漿を採取するか、LBx-2を用いてPBMCを取得した。次に、分離したバフィーコート3mLをPBSとともにFAST-autoに再注入し、CTCをメンブレンを通して濾過した。第三に、膜を保存緩衝液で満たされたチューブに移すか、または直ちに染色に使用した。他の用途や長期保存の場合、CTCはボルテックスによって膜から簡単に除去できます。
cfDNAは、ビーズ濃縮によるDNAのサイズごとのキャプチャが可能な磁気ビーズベースのDNA分離を使用して血漿から抽出されました。cfDNAの濃度および純度は、バイオアナライザーを用いて測定した。ctDNAを含むcfDNAの濃度は、がんの種類や病期によって異なることはよく知られています18。さらに、ほとんどのcfDNAは166 bpの長さを持ち、中には約2倍または3倍の長さのものもあります。8.47 ng/mLと5.2 ng/mLなど、個々のサンプルから得られた量には違いがありますが、cfDNA抽出の結果は、すべてのケースで濃度とサイズ分布の両方で良好でした(図2)。これらの結果は、LBx-1法がcfDNAを含む血漿を正確に分離することを示しています。
FAST-autoでは、膜を除去し、CTCおよび白血球(WBC)を検出するための蛍光抗体で染色した。スライドガラス上に染色膜を置き、蛍光顕微鏡下で観察した。染色および顕微鏡研究は、以前の研究19に続いて実施した。EpCAM/サイトケラチン(CTC陽性マーカー)およびCD45(WBC陽性マーカー)抗体を用いて特異的に区別できるのはCTCのみです。各膜は、それぞれ合計310細胞と998細胞を捕捉した。そのうち、サンプル1と2でそれぞれ合計3と43のCTCをカウントしました(図3)。この研究で使用された方法は、CTCの存在と数を簡単に判断できるようにします。さらに、cfDNA濃度とCTC数の変化を使用して、現場での癌の存在と再発を容易に監視できます。特に、これらの方法は結果に影響を与える可能性のある他の試薬を使用しないため、得られた材料を用いて下流の実験が可能です。
図1:全血からの物質同時分離のためのディスク混合法のワークフロー 。 (a)cfDNAを含む血漿が得られる。(B)CTCはバフィーコートから取り除かれます。(C,D)渦の後、CTCは膜から剥離し、少量のCTCが膜に残ります。得られた細胞および膜の両方が、保存バッファー中のサンプルを凍結することによって長期保存を受けることができる。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図2:抽出されたcfDNAの純度と量。 抽出したcfDNAをバイオアナライザーを用いて評価し、cfDNAスクリーンテープを電子ラダーと併用した。緑色の線は、はしご(左)とサンプル(右)の間の位置合わせに使用されました。三角形のマークはDNAバンドを示します。cfDNAの大部分は166 bpであり、一部は整数倍の長さで存在します。通常、cfDNAの濃度は50 bpから700 bpのサイズまで測定 されます。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図3:膜染色を用いたCTCの計数。 膜免疫細胞化学染色後、細胞はDAPI(核陽性)シグナルを青色で示し、EpCAM/CK(CTC陽性)およびCD45(WBC陽性)はそれぞれ緑色および赤色で強調表示されます。蛍光シグナルは、蛍光顕微鏡を用いて測定した。スケールバーは10μmを示しています。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
補足表1:密度勾配溶液使用の最終体積の組成。このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足表2:一般的な問題とメンテナンスに関する注意。このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
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Discussion
cfDNAとCTCの量と濃度は、がんの個人、病期、および種類によって異なります。また、患者2、4、5、10、20の状態にも依存します。特にがんの早期・前がん期では、がん関連物質の濃度が非常に低いため、検出できない可能性が高いです。それにもかかわらず、早期発見は患者の生存と治療戦略の確立に非常に良い効果をもたらします。cfDNAとCTCは血液中の半減期が短いため、がんに関するリアルタイムの情報を反映しています21、22、23、24、25。そのため、様々ながん関連物質を同時に取得するためには、同じ条件で大量の血液が必要となります。ここに示すシステムは、ユーザーに簡単な方法を提供します。ユーザーは、全血から必要な材料に対応するディスクを選択して使用できます。与えられたカートリッジの1つを使用して、cfDNAを含む血漿を得ることができ、同じ血液サンプル、無駄なバフィーコート、またはPBMCからCTCをFAST-autoディスクに再注入することによって収集できます(図1)。
サイズベースのCTCキャプチャは簡単ですが、純度には制限があります。血液中の細胞にはさまざまな形や大きさがあります26。白血球は8〜16μmのサイズが異なります27。別の研究では、測定されたWBCの平均サイズは9μmでした。一方、孤立したCTCの最小サイズは16μmであり、平均サイズは30μmです28。さらに、CTCは他の血球と比較して患者の血液中に非常に少量存在します。WBC汚染を最小限に抑えることは、下流の分析にとって重要です。抗体ベースの検出ではCTCを捕捉できますが、NGSなどの高分解能解析には、追加のシングルセルピッキング技術または高レベルのバイオインフォマティクス解析が必要です。
近年、様々な捕捉技術を用いて高解像度解析の前にCTCの存在を直感的に観察する方法が実施されている29。結果に示すように、FAST-autoカートリッジから取得したメンブレンは、CTC検出のために直接染色することができます。捕捉されたCTCは、保存や細胞培養などのさらなる用途のためにボルテックスすることによって膜から容易に再懸濁することもできます(図1)。
この方法は、遠心分離とマイクロフルイディクスの原理を使用します。そのため、機器とディスクのバランスが重要であり、ディスクホルダーで固定することも重要です。初期の不十分な総量をPBSで満たすことが重要です。初期量が不足すると、次のスペースへの移動が困難になる問題が生じる可能性があります。ディスクホルダーを卓上に取り出して、機器の汚染を防ぎ、液体をディスクに出し入れします。FAST-AUTディスクの場合は、メンブレン内のCTCへの損傷を減らすために、サンプルを迅速に処理してください。特に、メンブレンを取り扱うときは汚染を防ぎ、長期保管のために確立されたプロトコルに従うように注意してください。
それにもかかわらず、この方法は使いやすく、1〜4つのサンプルを同時に処理できます。また、ディスクを交換するだけで様々な液体の基質を得ることができる。さらに、PBMCを得るために密度勾配溶液を使用する以外に、追加の試薬は必要ありません。したがって、得られた材料は下流での使用に適しています。
この方法にはまだいくつかの制限があります。ユーザーはディスクを任意に変更することはできず、異なる種類のディスクを同時に使用することはできません。また、最大容量には制限があるため、大量の血液には複数のディスクを使用する必要があります。cfDNAを取得するには、追加の方法が必要です。メンブレンを使用すると、ポアサイズキャプチャー法を使用してCTCのみを取得することは困難です。したがって、CTC特異的なアプリケーション実験には細胞の選択または選別が必要です。
体内にはさまざまな体液があり、特定の体液の産生は病気に関連しています30。現在、血液体液の使用は分析のためにのみ行われています。将来的には、尿、腹水、胸水、髄液など様々な体液での性能を確認することで、最適なプロトコルを確立することができます。より簡便な方法を提供するために、ディスクからcfDNAを自動的に抽出する装置が現在開発されています。さらに、抽出後の椎間板内で直接定量PCRを行うことができる装置が開発中である。
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Disclosures
著者には、この作業に関連する利益相反はありません。
Acknowledgments
この原稿の一部は、韓国医療機器開発基金(KMDF、助成金番号。 RS-2020-KD000019)および韓国保健産業開発研究院(KHIDI、助成金番号。 HI19C0521020020)。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1% BSA (Bovine Serum Albumin) | Sigma-Aldrich | A3059 | |
| 1.5 mL Microcentrifuge Tube | Axygen | MCT-150-C-S | |
| 15 mL Conical Tube | SPL | 50015 | |
| 4150 TapeStation System | Agilent | G2992AA | Cell-free DNA Screen Tape (Agilent, 5067-5630), Cell-free DNA Sample Buffer (Agilent, 5067-5633) |
| Apostle MiniMax High Efficiency Cell-Free DNA Isolation Kit | Apostle | A17622-250 | 5 mL X 50 preps version |
| BD Vacutainer blood collection tubes | BD | 367525 | EDTA Blood Collection Tube (10 mL) |
| BioViewCCBS | Clinomics | BioView Clinomics-Customized Bioview System. Allegro Plus microscope-based customization equipment | |
| CD45 Monoclonal Antibody (HI30), PE-Alexa Fluor 610 | Invitrogen | MHCD4522 | |
| FAST Auto cartridge | Clinomics | CLX-M3001 | |
| LBx-1 cartridge | Clinomics | CLX-M4101 | |
| LBx-2 cartridge | Clinomics | CLX-M4201 | |
| OPR-2000 instrument | Clinomics | CLX-I2001 | |
| Cover Glass | Marienfeld Superior | HSU-0101040 | |
| DynaMag 2 Magnet Stand | Thermo Fisher Scientific | 12321D | |
| Ficoll Paque Solution | GE healthcare | 17-1440-03 | density gradient solution |
| Filter Tip, 10 µL | Axygen | AX-TF-10 | Pipette tips with aerosol barriers are recommended to help prevent cross contamination. |
| Filter Tip, 200 µL | Axygen | AX-TF-200 | Pipette tips with aerosol barriers are recommended to help prevent cross contamination. |
| Filter Tip, 100 µL | Axygen | AX-TF-100 | Pipette tips with aerosol barriers are recommended to help prevent cross contamination. |
| Filter Tip, 1000 µL | Axygen | AX-TF-1000 | Pipette tips with aerosol barriers are recommended to help prevent cross contamination. |
| FITC anti-human CD326 (EpCAM) Antibody | BioLegend | 324204 | |
| FITC Mouse Anti-Human Cytokeratin | BD Biosciences | 347653 | |
| Formaldehyde solution (35 wt. % in H2O) | Sigma Aldrich | 433284 | |
| Kimtech Science Wipers | Yuhan-Kimberly | 41117 | |
| Latex glove | Microflex | 63-754 | |
| Magnetic Bead Separation Rack | V&P Scientific | VP 772F2M-2 | |
| Manual Pipetting (0.5-10 µL) | Eppendorf | 3120000020 | |
| Manual Pipetting (2-20 µL) | Eppendorf | 3120000038 | |
| Manual Pipetting (10-100 µL) | Eppendorf | 3120000046 | |
| Manual Pipetting (20-200 µL) | Eppendorf | 3120000054 | |
| Manual Pipetting (100-1000 µL) | Eppendorf | 3120000062 | |
| Mounting Medium With DAPI - Aqueous, Fluoroshield | abcam | ab104139 | |
| Normal Human IgG Control | R&D Systems | 1-001-A | |
| OLYMPUS BX-UCB | Olympus | 9217316 | |
| Pan Cytokeratin Monoclonal Antibody (AE1/AE3), Alexa Fluor 488 | Invitrogen | 53-9003-82 | |
| PBS (Phosphate Buffered Saline Solution) | Corning | 21-040CVC | |
| Portable Pipet Aid | Drummond | 4-000-201 | |
| Slide Glass | Marienfeld Superior | HSU-1000612 | |
| StainTray Staining box | Simport | M920 | |
| Sterile Serological Pipette (10 mL) | SPL | 91010 | |
| Triton X-100 solution | Sigma Aldrich | 93443 | |
| TWEEN 20 | Sigma Aldrich | P7949 | |
| Whole Blood | Stored at 4-8 °C by collecting in EDTA or cfDNA stable tube : If the whole blood is insufficient in 9 mL, add PBS (phosphate buffered saline) as much as necessary. | ||
| X-Cite 120Q (Fluorescence Lamp Illuminator) | Excelitas | 010-00157 |
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