Dieses Video beschreibt, wie man das erwachsene Drosophila Gehirn sezieren und isolieren – ein Verfahren, das für die Visualisierung des Organs notwendig ist, das ansonsten durch das Nagelhaut-, Augen- und Trachealgewebe verdeckt wird. Das Beispielprotokoll zeigt eine detaillierte Demonstration, die hochwertige Präparate liefert, die für Immunfärbungs- und Bildgebungsmethoden in der Drosophila Neurobiologie verwendet werden können.
Protocol
Dieses Protokoll ist ein Auszug aus Kelly et al., Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains, J. Vis. Exp. (2017). 1. Dissektionsstation Vorbereitung Positionieren Sie das Stereomikroskop und die Lichtquelle mit angeschlossenem Fiberoptik-Schwanenhals auf einer großen Tischplatte. Um stetige Handbewegungen zu fördern und das “Schütteln” der Hand beim Sezieren zu reduzieren…
Materials
Microdissection forceps/tweezers
Ted Pella
505-NM
Sylgard dishes
Living Systems Instrumentation
DD-50-S-BLK
Available from amazon.com
Na Phosphate Buffer monobasic
Sigma
S3139
Triton X 100
Sigma
X100-100ml
stereomicroscope
Leica S6D with KL300 LED light source
9-well dish (spot plate)
VWR
89090-482
35mm dish
Genesee Scientific
32-103
Sylgard
Fisher
50-366-794
Kimwipe
Fisher
06-666
PTN Buffer
0.1M NaPhosphate, pH 7.2, 0.1% Triton-X-100, Typically make up 0.5 L of 0.1M NaPhosphate buffer and aliquote 50ml at a time as needed