Overview
RNAi is een krachtig genetisch hulpmiddel dat beschikbaar is voor onderzoekers van C. elegans. Deze video introduceert een methode om meer wormen met RNAi te behandelen dan plaatvoeding door gebruik te maken van vloeibare kweekomstandigheden.
Protocol
Dit protocol is een uittreksel uit Groh et al, Methods to Study Changes in Inherent Protein Aggregation with Age in Caenorhabditis elegans, J. Vis. Exp. (2017).
1. Vloeibare cultuur van geslachtsloze dieren om jonge en oudere dieren te verzamelen die onderworpen zijn aan RNAi gericht op een interessant gen
OPMERKING: De reactie van sommige genen op RNAi kan temperatuurafhankelijk zijn zoals eerder beschreven. Als alternatief voor RNAi kan een mutant gen worden opgenomen in de gon-2(-) achtergrond.
- Bereiding van bacteriën voor vloeibare cultuur
- Bereid OP50- en RNAi-bacteriën (bacteriën die het gewenste dsRNA produceren en bacteriën met de lege vector als controle) door 4 L LB-medium met 12 ml van de respectieve bacteriecultuur te enten (voeg een eindconcentratie van 50 μg/ml carbenicilline en 1 mM IPTG toe aan de RNAi-bacterieculturen) en incubeer ze 's nachts bij 37 °C bij 180 tpm.
- Oogst de volgende dag de culturen op 6.700 x g gedurende 10 minuten bij 4 °C. Verwijder de supernatanten en resuspend elke pellet in 60 ml ijskoude S basale media (100 mM NaCl, 50 mM kaliumfosfaat pH 6, op ijs gehouden). Houd de drie geresuspendeerde pellets (OP50, controle RNAi-bacteriën en RNAi-bacteriën voor het gen van belang) op 4 °C tot stap 1.2.
OPMERKING: Wormen kunnen vanaf het L1-stadium op RNAi worden gekweekt of om ontwikkelingsdefecten van het laatste larvale stadium L4 te voorkomen (zie stap 1.2).
- Vloeibare kweek voor behandeling met RNAi vanaf laatste larvale fase L4
- Voeg 200 ml S basale media toe in een Fernbach kweekkolf (inhoud 2.800 ml). Voeg voor een eindkweekvolume van 300 ml (zie 1.2.2.4) 10 ml kaliumcitraat toe, pH 6, 3 ml Spoormetalenoplossing (5 mM ethyleendiaminetetraazijnzuur (EDTA), 2,5 mM FeSO4,1 mM MnCl2,1 mM ZnSO4,0,1 mM CuSO4),3 mM MgSO4,3 mM CaCl2,100 ng/ml carbendazim en 5 mL carbendazim). Sluit de kolf met een membraanschroefdop. Raadpleeg tabel 1 voor recepten van buffers.
- Neem de L1's van 25 °C en breng ze over op buizen van 15 ml. Centrifugeer gedurende 3 minuten op 1.900 x g, verwijder het supernatant en tel de L1's per 2 μL. Voeg 500.000 L1's toe aan de Fernbach kweekkolf die in de vorige stap is bereid.
- Voeg OP50 (vanaf stap 1.1) proportioneel toe aan het aantal wormen. Voor 500.000 wormen voegt u bijvoorbeeld 60 ml OP50 toe.
- Complete wormkweek met S-basaal om het totale volume op 300 ml te brengen. Incubeer de wormkweek tot het L4-stadium bij 25 °C in een schuddende incubator met 150 tpm.
- De volgende dag moeten de wormen zo groot zijn als L4's van het wilde type. Om van OP50 naar RNAi-bacteriën te veranderen, verzamelt u dieren in zes 50 ml-buizen, laat u ze bezinken en verwijdert u het supernatant. Was de L4's met M9 om de resterende OP50-bacteriën te verwijderen: centrifugeer gedurende 3 minuten op 1900 x g, verwijder het supernatant en breng alle L4's over in één 50 ml-buis. Tel de L4's per 5 μL (minstens negen keer). Twee keer 50.000 L4's zijn nodig voor de jonge wormcollectie en twee keer 100.000 L4's voor de oude wormcollectie.
- Bereid vier Fernbach kweekkolven zoals beschreven in 1.2.2.1. Voeg ook een eindconcentratie van 50 μg/ml carbenicilline en 1 mM IPTG toe aan elke kolf.
- Voeg controle RNAi-bacteriën en RNAi-bacteriën voor het interessegen (vanaf stap 1.1) proportioneel toe aan het aantal wormen: Voeg 7 ml van de respectieve bacteriën per kolf toe voor jonge wormen en 14 ml per kolf voor de oude wormen.
- Voeg 50.000 wormen per kolf toe voor de jonge wormenverzameling en 100.000 wormen per kolf voor de oude wormenverzameling en voltooi de culturen met S-basaal om tot 300 ml te vullen. Incubeer de wormculturen (vier in totaal) bij 25 °C en 150 tpm.
2. Onderhoud van C. elegans vloeibare culturen
- Verzamel periodiek een aliquot van elke vloeibare cultuur en plaats deze op een glazen glijbaan (als alternatief op een agarplaat) om te controleren of er geen verontreinigingen zijn. Controleer met behulp van een dissectiemicroscoop de bacteriële voedselniveaus in de cultuur, vooral tijdens de groeifase. Bereid vooraf 2 L-culturen van controle RNAi-bacteriën en RNAi-bacteriën voor op het gen van belang zoals beschreven in stap 1.1. Voeg deze indien nodig toe aan C. elegans vloeibare culturen en houd de rest op 4 °C.
- Controleer regelmatig of de dieren steriel zijn. De meerderheid van de dieren zal geen geslachtsklier hebben. Afhankelijk van de penetrantie van de gon-2-mutatie, kunnen sommige gonadale structuren hebben afgebroken, maar er mogen geen dieren met eieren worden waargenomen.
Voorraadoplossing | Bedrag | Eindconcentratie | Opmerkingen/Beschrijving |
S basaal (Voor 500 ml: 5,9 g NaCl, 50 ml 1 M Kaliumfosfaat pH 6) |
200 ml | 1 M Kaliumfosfaat pH 6: Voor 1 L: 129 g KH2PO4 monobasisch, 52 g K2HPO4 dibasisch watervrij |
|
1 M Kaliumcitraat pH 6 (Voor 400 ml: 13,1 g citroenzuurmonohydraat, 134,4 g trikaliumcitraatmonohydraat) |
3 ml | 10 mM | |
Oplossing voor sporenmetalen (Voor 1 L: 1,86 g Ethyleendiaminetetraazijnzuur (EDTA), 0.69 g FeSO4 · 7 H2O, 0,2 g MnCl2 · 4 H2O, 0.29 g ZnSO4 · 7 H2O, 0.025 g CuSO4 · 5 H2O) |
3 ml | Bewaar voorraadoplossing in het donker bij 4 °C | |
1 M MgSO4 (Voor 500 ml: 123,3 g) | 900 μL | 3 mM | |
1 M CaCl2 (Voor 500 ml: 73,5 g) | 900 μL | 3 mM | |
200 μg/ml Carbendazim (Voor 50 ml: 10 mg in Methanol) |
150 μL | 100 ng/ml | |
5 mg/ml cholesterol (Voor 100 ml: 0,5 g ethanol) |
300 μL | 5 μg/ml |
Tabel 1.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Fernbach culture flask | Corning | 4425-2XL | Pyrex, Capacity 2,800 ml, with 3 baffle indents |
Membrane Screw Cap | Schott | 1E+06 | GL45 |
Nutating Mixer | VWR | 444-0148 | yes |
Separatory funnel | Nalgene | 4300-1000 | Capacity 1,000 ml |
1 ml syringe | BD Plastipak | 3E+05 | |
Gray needle, 27 G x ½ ", 0.4 mm x 13 mm | BD Microlance 3 | 3E+05 | |
Membrane filters 0.025 µM | Millipore | VSWP04700 | no |
pH strip | Machery-Nagel | 92110 | pH-Fix 0-14 |
Protease Inhibitor Cocktail | Roche | 5E+09 | Complete Mini EDTA-free tablets |
Octoxynol-9 | Applichem | A1388 | Triton X-100 |
4-Morpholineethanesulfonic acid (MES) | Sigma-Aldrich | M1317 | |
Nonylphenylpolyethylenglycol | Applichem | A1694 | Nonidet P40 (NP40) |
DNaseI | Roche | 5E+09 | recombinant, RNase free |
RNaseA | Promega | A7973 | solution |
Total protein blot staining | Thermofisher | S11791 | Sypro Ruby protein blot stain |
Total protein gel staining | Thermofisher | S12001 | Sypro Ruby protein gel stain |
TCEP (tris (2-carboxyethyl) phosphine hydrochloride) | Serva | 36970 | |
Iodoacetamide | Serva | 26710 | |
Ammoniumbicarbonate | Sigma-Aldrich | 9830 | |
Sequencing Grade Modified Trypsin | Promega | V5111 | |
Isobaric tags for relative and absolute quantitation | Sciex | 4E+06 | iTRAQ Reagents Multiplex Kit |
Centrifuge Avanti J-26XP | Beckmann Coulter | 4E+05 | |
Ultracentrifuge Optima Max-XP | Beckmann Coulter | 4E+05 | |
Centrifuge 5424R | Eppendorf | 5E+09 | |
Centrifuge 5702 | Eppendorf | 6E+09 | |
Centrifuge Megafuge 40R | Thermo Scientific | 8E+07 | |
Concentrator Plus | Eppendorf | 5E+09 | Centrifugal evaporator |
Fluorescent stereo-microscope M165 FC | Leica | With Planapo 2.0x objective | |
Dissection microscope | Leica | Leica S6E | |
High magnification microscope Zeiss Axio Observer Z1 | Zeiss | With PlanAPOCHROMAT 20x objective and Zeiss Axio Cam MRm | |
Software | |||
Image analysis software | ImageJ | ||
Analysis of mass spectrometry data | Protein Prospector | http://prospector.ucsf.edu/prospector/mshome.htm | no |
E.coli strains | |||
OP50 | CGC | ||
RNAi bacteria | |||
L4440 | Julie Ahringer RNAi library | ||
C. elegans mutants | |||
CF2253 | CGC, strain name: EJ1158 | Genotype: gon-2(q388) | |
C. elegans transgenics | |||
DCD214 | Della David's lab at DZNE Tübingen | Genotype: N2; uqIs24[Pmyo-2::tagrfp::pab-1] | |
DCD215 | Della David's lab at DZNE Tübingen | Genotype: daf-2(e1370) III; uqIs24[Pmyo-2::tagrfp::pab-1] |